Various methods exist for introducing ototoxic agents to the cochleae of animal models. Presented is a surgical protocol for delivery of ototoxic agents to the round window niche. The procedure is reliable, creates targeted intra-cochlear lesions, and avoids mechanical damage to the microarchitecture. Examination of cochlear self-repair/regeneration is possible.
Investigators have utilized a wide array of animal models and investigative techniques to study the mammalian auditory system. Much of the basic research involving the cochlea and its associated neural pathways entails exposure of model cochleae to a variety of ototoxic agents. This allows investigators to study the effects of targeted damage to cochlear structures, and in some cases, the self-repair or regeneration of those structures. Various techniques exist for delivery of ototoxic agents to the cochlea. When selecting a particular technique, investigators must consider a number of factors, including the induction of inadvertent systemic toxicity, the amount of cochlear damage produced by the surgical procedure itself, the type of lesion desired, animal survivability, and reproducibility/reliability of results. Currently established techniques include parenteral injection, intra-peritoneal injection, trans-tympanic injection, endolymphatic sac injection, and cochleostomy with perilymphatic perfusion. Each of these methods has been successfully utilized and is well described in the literature; yet, each has various shortcomings. Here, we present a technique for topical application of ototoxic agents directly to the round window niche. This technique is non-invasive to inner ear structures, produces rapid onset of reliably targeted lesions, avoids systemic toxicity, and allows for an intra-animal control (the contra-lateral ear). Results stemming from this approach have helped deeper understanding of auditory pathophysiology, cochlear cell degeneration, and regenerative capacity in response to an acute injury. Future investigations may use this method to conduct interventional studies involving gene therapy and stem cell transplantation to combat hearing loss.
調べでは、聴覚系の正常な機能だけでなく、難聴の病態生理学を研究するための動物モデルの広い配列を使用しています。これらのモデルは、様々な病理学的過程に対する介入研究を実施するために非常に有用であり、ヒト対象における翻訳アプリケーションのための基盤となります。蝸牛とそれに関連する聴覚経路に関わるほとんどの研究では、損傷や混乱のある程度は、システムに導入されなければなりません。多くの場合、被害は意図的に研究者が正常な機能上の病変だけでなく、そこから回復するための蝸牛能力の効果を研究することができ、特定の病変を作成することを目的としています。損傷を導入するための特定の動物モデルおよび/または技法(複数可)を選択する場合、要素の数は、可能な限り最高の結果を達成するために考慮しなければなりません。技術の直接的および間接的な影響がかもしれないが、様々な動物モデルは、介入に対して異なる応答することができます望ましい結果に完全に有害。ほとんどの場合、理想的な内耳損傷プロトコルは、全身毒性を回避し、迅速かつ確実に損傷を生じさせる、正確で一貫性のある病変を作成し、かつ、機能的な細胞及び分子の変化のさらなる研究を可能にするために存続することになります。理想的には、これらの方法も可能な限り繊細なマイクロアーキテクチャと蝸牛の電気化学的勾配を維持することになります。
現在までに、研究者らは、内耳損傷を誘導するために多くの技術を確立することに成功しました。これらのほとんどは、いずれかの全身または外科的アプローチを経て耳毒性薬に蝸牛をさらす伴います。テクニックは、非経口注射、腹腔内注射、経鼓膜注射、内リンパ嚢の注入、および外リンパ灌流と蝸牛が含まれています。これらの技術は、フロセミド、ゲンタマイシン、ウアバイン、およびヘプタノールなどの耳毒性剤、種々のを導入するために使用されてきた。1-5特定の蝸牛病変の作成に成功したが、上記の技術にも制限を認めています。全身注射は動物に対して非常に毒性であることができ、意図しない蝸牛侮辱と一貫性のない結果に関連付けられてもよいです。後者の欠点はまた、トランス鼓膜注射と関連しています。そのような蝸牛及び外リンパ灌流などの技術は、迅速かつ信頼性の高い病変を誘発することができる一方で、内耳の構造と機能に直接侵襲的です。外科的アプローチの多くは、技術的難易度の高いに関連付けられており、このようなマイクロポンプの注入器のような動物で異物を残す必要があります。2-4,6-8単一の技術は欠点のないではない、と研究者らは、選択する必要があります彼らの実験のニーズに合わせて慎重にする方法。ここでは、詳細には、成体マウスにおける耳毒性薬剤の局所送達のために、丸い窓の隙間(RWN)アプリケーション技術を説明します。
Fiの最初以来9。鳥類モデルにおける感覚有毛細胞の変性にゲンタマイシンの影響を研究しながら、関連する毒性を回避しながら、この技術は、全身ゲンタマイシンアプリケーションよりも著しく信頼性病変を産生することができることが見出された1998年Husmannら、A我々の研究室を含む他の研究者の数は、大成功にこの技術を利用してきました。 2004年には、ハイトら。マウスモデルに適応し、ゲンタマイシンの様々な濃度に浸した吸収性ゼラチンスポンジでRWNを充填することにより、病変の大きさを制御する能力の増強を説明。10パルムグレンら、2010年には、ベータ-ブンガロトキシンの耳毒性の効果を研究し、強力台湾の毒の要素が成体ラットのRWNにその水性形態を適用することにより、クレートをバンド11に加えて、我々の研究室から以前の研究の数は、フロセミドの耳毒性の影響を研究するための円窓のアプローチを利用していますE、ウアバイン、およびヘプタノール。これらの研究の5,6,12-15結果が蝸牛流体と健聴のイオン恒常性の重要性を実証した、らせん状神経節と蝸牛外側壁における細胞増殖能力を発見し、私たちの理解をさらに促進年齢関連の聴力損失。
次のアプローチは、外科的に耳介後部切開や骨鼓膜のブラの部分unroofing経由で中耳にアクセスすることが含まれます。これは、選択された耳毒性剤を直接適用することができるRWN、膜の優れた露光が可能になります。液剤その後RWNのカップ状の中空内のプール(またはゆっくりRWNに詰め飽和吸収性ゼラチンスポンジ担体から排出)とは、蝸牛前庭の外リンパ腔への円窓膜を介して拡散します。直接的な蝸牛は、このアプローチでは行われません。この技術の利点は、内耳のマイクロアーキテクチャの保存、回避が含まれます全身毒性の内、動物管理の耳、効果の迅速な開始、特定の蝸牛細胞型において選択的変性の手当( 例えば 、I型ヘプタノールの処理によって誘導さウアバイン露出と蝸牛II型線維細胞と神経節ニューロンスパイラル)かつ再現性/信頼性の高い結果。この技術は、ラット、モルモットおよびスナネズミを含む他のげっ歯類、の間にいくつかの変更にも適用することができます。欠点は、急な技術的な学習曲線と時間で一点に制限され、耳毒性侮辱の相対的な制限があります。
上記のプロトコルと代表的な結果は、男女両方を含むCBA / CAJのマウスモデルにおいて得られました。この近交系はよく研究を聞い中で「良い公聴会」標準と「正常な加齢」モデルとして確立されています。他の哺乳類のモデルでは、このプロトコルの使用の16-23説明このテキストの範囲を超えています。読者はRWNアプリケーション技術は、哺乳類の内耳を研究するいくつかの利点を提供すること、しかし、注意してください。これらのうち、最も注目すべきは、繊細な解剖学的構造の直接の破壊および耳のカプセルの壁内に存在する生化学的勾配を回避することです。このような輸液ポンプの蝸牛および注入などの手順が直接永久閾値シフトにつながる内耳構造に違反する傾向を持っています。結果を分析する際に考慮しなければならないという事実。侵襲メトによって蝸牛側壁構造の破壊DSはまた、特定のゾーン効果のその場所に制限されている。このようなトランス鼓膜注射と注射剤として15,24代替の非侵襲的なアプローチを信頼できない結果とに悩まされているフロセミドまたはヘプタノール、などの耳毒性剤の使用を制限することができます/または動物モデルへの全身毒性。この塗布方法は、上述のより侵襲的な方法とを近づいて一貫性のレベルを達成し、これらの欠点の両方を回避するために証明されています。
この技術の他の利点は、動物モデル及び既存の実験室インフラストラクチャに組み込む可能性の数とその広い適用性である含みます。後者に関しては、何も特殊な試薬や化学物質は、選択された耳毒性薬、麻酔薬、鎮痛薬とは別に必要ありません。耳毒性剤は、典型的に考える、長期間持続する溶液(5 ml)を十分に大きな容量で固定濃度で利用と混合され各アプリケーションをると、(マウスで)約10μLを使用しています。したがって、消耗品や機器の初期調達した後、研究者らは、時間のかかる溶液調製や材料の頻繁な交換から比較的自由です。この技術は、外リンパ輸液ポンプやcochleostomiesの注入を含む手順と比較したときに大きくなる可能性があり手術時間の短縮を提供しています。技術的な熟練のレベルに達すると、最初の切開から閉鎖に私たちの平均完了時間は、耳毒性薬剤について所望の露光の長さに応じて、1.5時間、典型的には20分でした。 3つまたは4つの手術は、容易に高い効率及び良好な結果を得るために増加した可能性を考慮して、一日で完了することができます。上述したように、この技術はまた、容易に、マウス、ラット、モルモットおよびスナネズミを含む齧歯類モデルの多様に適用することができます。
この方法の制限事項を中心にしています適度に急な学習曲線がそれをマスターするために必要と技術的習熟度に達するまで、期待される結果を減少させました。以下でより詳細に説明するように、外科的アプローチまたは手術野の不十分な視覚化の間に小さな誤差はほとんど常に予後不良につながります。このような丸い窓膜または希釈剤を間質液への薬剤のアクセスをブロックするサブミリメートルの厚さの気泡として初心者が認識に失敗することがあります微妙な所見は、それらを修正するために必要な精神運動能力を高く評価し、開発に時間がかかります。しかし、この手順を繰り返しパフォーマンスでこれらの障害は、簡単に前述の侵襲的な方法のいくつかの研究者により少なく困難な技術的な課題を克服し、構成しています。最後に、この手法は、蝸牛の損傷しか外科的露出時間中に一点で誘導することができる相対的な制限と関連しています。これは、ある程度克服することができます、ハイトらによって記載されたような薬剤に浸した吸収性ゼラチンスポンジでRWNを充填して10吸収性ゼラチンスポンジは時間とともに再吸収されますが、単独の水溶液の適用によって達成可能であるよりも長い露光時間を可能にすることができます。
この技術の完全な利点を実現し、任意の落とし穴を回避する研究者のためのためには、この技術の2つの重要な要素を認識することが重要である:1)一貫して中耳空間とRWNの可視化を維持します。 2)能力間質液および/または血液の自由な手術野を維持します。これらの元を達成するために、適切なヘッドホルダの重要性が強調オーバーすることはできません。動物の頭の確実な固定は、顕微鏡下で安定ビューを確保。微妙な計測機器が大幅に拡大した構造の配置を変更したときの重要性は容易に明らかになります。良い時間動物の吻側 – 尾側軸を中心に回転することができますEADホルダーは、サイトの研究者のラインで重要な動的な変更を容易にします。多くの場合、この軸の周りの回転の数ミリしか耳のカプセル骨のRWNと可視化の可視化の違いを意味することができます。常にビューを変更する機能も適切にニッチのと深さから削除される間質液を確保するために最も重要であるにも我々の経験、血液、結露、または間質液で第5部で説明したように耳毒性剤は、完全にアプリケーション間で削除されていることそれは、中耳空間が実験全体を妨害する能力を持って入ります。耳毒性薬剤の小さな量は簡単に余分な流体の小さな容積に接触することによって希釈することができる丸い窓(〜10μL)に適用し、これは驚くべきことではありません。このため、細心の外科的切開、鼓膜水疱と慎重preservatの断片的な脱キャップあぶみ骨動脈のイオンは、成功した実験結果に等しいです。
上記の重要なステップが観察され、期待される成果はまだ達成されていない場合は、トラブルシューティングが開始すべきです。我々の経験では、それは、多くの場合、2つの手順要素の試用バリエーションを実行すると便利です。最初は耳毒性薬は円窓に補充される頻度を変更することです。使用される薬剤に応じて、全露光時間は、完全なウィッキング剤とのその後の交換毎に10分で、30分、1時間の間です。短い持続時間の露光した場合、全体的な露出を増やすと、エージェントより多くの時間は、円窓膜を横切って拡散することを可能にします。追加の暴露と補充も、上述のように血液、結露、または間質によって耳毒性物質の不必要な希釈を避けるために役立つことがあります。このアプローチを使用するときに不注意の危険性を増加させる傾向があるように注意が、しかし、維持されるべきですLYあぶみ骨動脈を傷つけ、および/またはRWNに間質液を導入します。
この技術は蝸牛生理学および病態生理学の研究に提供するもので重要です。この低侵襲的手法は、微妙な生化学的プロセスの詳細な研究を可能にし、蝸牛再生能力を評価することを目的とし研究を進めるに等しいされている。12,24この外科的アプローチと露出は、他の派生技術の様々な全体に再生し、成功した結果がこれを使用して、この方法は、蝸牛幹細胞移植の研究で報告されている。14大きな取引が蝸牛について不明のまま、しかし、この技術は、研究者に利用できる広い装備一式と一緒に、この知識のギャップを狭めることに役立ちます。
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by National Institutes of Health (NIH) Grant number: NIH P50DC00422 (H.L.); NIH R01DC12058 (H.L.). This work also benefitted from the South Carolina Clinical and Translational Research Institution (SCTR) Clinical and Translational Science Award (NIH/NCRR UL1RR029882). The funders had no role in study design, data collection, and/or analysis. The authors would like to thank Lonnie E. Brown Jr. for his artistic and graphic contributions.
1-Heptanol 98% | Sigma-Aldrich | H2805 | PubChem Substance ID 24895536 |
250ML | |||
Ketaset Injectable | Patterson Veterinary | 07-803-6637 | Concentrate 100mg/ml |
(Ketamine HCl) | 10ml | Schedule CIII controlled substance | |
Anased Injectable | Lloyd Laboratories | NADA# 139-236 | Concentrate 20mg/ml |
(Xylazine) | |||
Buprenex Injectable | Patterson Veterinary | 07-850-2280 | Concentrate 0.3mg/ml |
(Buprenorphine HCl) | 5 ampules per box | Schedule CIII controlled substance | |
Betadine Skin Prep Solution | Medline | MDS093941 | 1 Quart screw top bottle |
(Povidone-Iodine) | |||
0.9% Sterile Saline | Variable | N/A | For mixing solutions and injections |
Table of Equipment, Surgical Instruments, and Specific Techniques | |||
Material Name | Company | Catalogue Number | Comments (optional) |
Operating Microscope | Carl Zeiss | 32192 | |
Controlled Acoustics Environment Sound Booth | Industrial Acoustics Company | N/A | |
Surgical Head Holder | Custom Made – | Please see Figure 3 | |
Medical University of South Carolina | |||
Neck Soft-Tissue Retractor (Wire Speculum, Titanium) 1.75inch | World Precision Instruments | 555801L | Maximum spread 20mm |
Embedded in disposable putty to affix dynamically to head holder | |||
90N Dental Belt Driven Hand Drill | Emesco | N/A (Vintage Item) | |
Scalpel Handle Size6 | Bard-Parker | MEDC-011990 | |
#15c Stainless Steel Surgical Scalpel Blade | Bard-Parker | SKU: 097-7215 | 50 Blades/Box |
Via ACE Surgical Supply Code | |||
Straight Tip Jewelers Forceps | Bernell | MIL17304 | |
Iris Scissors Curved | Medline | DYND04026 | |
Iris Scissors Straight | Medline | DYND04025 | |
Stevens Tenotomy Scissors Straight | Medline | MDG3222111 | |
Rosen Ear Needle Straight Shaft, Lightly Curved Tip | MytaMed | Item# 6.56.00 | Figure 1 demonstrates angled shaft picks. This was later substituted for the Rosen picks |
Rosen Ear Needle Straight Shaft, Strongly Curved Tip | MytaMed | Item# 6.56.01 | |
Kimwipes Delicate Task Wipers | Kimtech Science | CODE 34155 | White, Size 4.4×8.4 Inch. Cut to triangles and rolled into fine tip wicks. |
House Ear Curette, 6” shaft, light angle | Medline | MDG0396486 | |
Gelfoam (absorbable gelatin sponge) Size 100 | Medline | IIS34201 | Substitutions may be made |
Cotton pellets #3 4mm | Richmond | Manufacturer Code 100108 | |
ElectroSurgical Unit 100 E M/M | Elmed | List No. 52-5770 | Bipolar and Monopolar Capable |
1cc U-100 Insulin Syringe 28G, 0.5” length needle | BD | Product Number: 329410 | Optional for delivery of Ototoxic agent |
23G, blunt tip, 1” length needle | Kendall | Product Code 8881202397 | For controlled delivery of Ototoxic agent with less risk of damaging stapedial artery |
Surgical Mask | U-line | S-10478 | |
Exam Grade Nitrile Surgical Gloves | U-line | S-12549 | |
Precision Hair Clippers | Wahl | N/A | Multiple models may be substituted |
5-0 Nylon black monofilament suture on PC-1 13mm 3/8 circle needle | Ethilon | 1855G | Substitutions may be made. |
Instant Sealing Sterilization Pouch | Fisher | 01-812054 | |
Dry Sterilizer | ROBOZ | Germinator TM 500 | |