Summary

胆道主導の肝臓の再生を研究するためにゼブラフィッシュにおける肝細胞特異的アブレーション

Published: May 20, 2015
doi:

Summary

To help assess the molecular mechanisms underlying zebrafish biliary-driven liver regeneration, we established a liver injury model in which the nitroreductase-expressing hepatocytes are genetically ablated upon metronidazole treatment. In this protocol, we describe how to adeptly manipulate, monitor and analyze hepatocyte ablation and biliary-driven liver regeneration.

Abstract

肝臓は再生する素晴らしい能力を持っています。 hepatocyte-または胆管駆動の肝再生:肝細胞、肝臓の実質細胞は、次のいずれかの方法で再生することができます。胆管駆動の再生に、再生肝細胞は、胆管上皮細胞(BECS)から誘導され、一方、肝細胞主導の肝再生においては、再生肝細胞は、既存の肝細胞に由来します。肝細胞主導の肝臓再生のために、大幅に肝再生の現在の理解に貢献した優れたげっ歯類モデルがあります。しかし、そのようなげっ歯類モデルは胆汁駆動型肝再生のために存在しません。私たちは最近、BECSが広く重度の肝細胞の喪失時の肝細胞を生じさせているゼブラフィッシュの肝障害モデルについて報告しました。このモデルでは、肝細胞を特異的薬理遺伝学的手段によって切除されています。ここでは、肝細胞を切除するとBEC主導の肝再生過程を分析するために、詳細に方法を提示します。この肝細胞特異的切除モデルは、さらに胆汁ドリブン肝再生の基礎となる分子及び細胞メカニズムを発見するために使用することができます。さらに、これらの方法は、肝再生を増強または抑制する小分子を同定するために、化学的スクリーニングに適用することができます。

Introduction

肝臓は非常に再生器官です。肝臓再生中に、肝細胞の再生、肝臓の実質細胞は、既存の肝細胞(肝細胞ドリブン肝再生)またはBECS(胆汁ドリブン肝再生)1,2から誘導されます。肝臓損傷は、通常、既存の肝細胞の増殖を誘発します。肝細胞増殖が損なわれたときただし、BECS 2-4を肝細胞に寄与することができます。肝再生のこれらの2つのモードは、臨床的に重要です。 (理由肝腫瘍やライブ肝ドナーの例えば )ヒト肝臓の一部を外科的に除去すると、残りの肝臓における肝細胞は、失われた肝臓塊を回復するために増殖します。 BECSまたは肝臓前駆細胞(たLPC)は、肝細胞の再生5,6に寄与するように見えるように対照的に、重篤な肝疾患を有する患者において、肝細胞増殖が大きく損なわれる。げっ歯類2/3部分肝切除モデル、中肝細胞は有意に肝細胞主導の肝再生7,8の現在の理解に貢献してきました、失われた肝臓塊を回復するために増殖します。しかし、再生肝細胞は、主にBECSに由来する有効なげっ歯類モデルはありません。いくつかのげっ歯類の肝臓毒素モデルは胆道駆動型肝再生2-4の同定をもたらしたが、マウスにおける最近の系譜トレースの研究では、これらのモデル9,10に肝細胞の再生にBECSの最小の寄与を示しています。部分肝切除11-13とアセトアミノフェン誘発性肝障害14,15を含むげっ歯類の肝障害モデルのいくつかは、ゼブラフィッシュに適用され、肝臓再生に関与する新規遺伝子または経路の同定につながってきました。しかし、肝細胞主導型ではなく、BECドリブン、肝再生は、これらのゼブラフィッシュの肝障害モデルで発生します。したがって、新規な肝臓損傷モデルとは、BECSは広くregeneratに寄与します肝細胞をるがBEC主導の肝再生のよりよい理解のために必要とされます。

ここで説明肝切除モデルの全体的な目標は、(1)BECSは広範囲の肝細胞の再生に寄与し、そして(2)BECドリブン肝再生の基礎となる分子及び細胞メカニズムを解明した肝損傷モデルを生成することです。私たちは、損傷の重症度は、肝臓再生のモードを決定するという仮説を立てました。このように、我々は、胆管駆動の肝再生が厳しい肝細胞傷害の際に開始するだろうと予測しました。この仮説を検証するため、我々はトランスジェニック系統を生成することにより、ゼブラフィッシュの肝臓損傷モデルを開発し、Tgは(fabp10a:CFP-NTR)S931は 、ことは非常に肝細胞特異的fabp10a下シアン蛍光タンパク質(CFP)と融合した細菌ニトロレダクターゼ(NTR)を発現しますプロモーター。 NTRは、非毒性のプロドラッグを変換するので、メトロニダゾール(MTZ)は、細胞傷害性薬物に、それだけで意図アブレーションNTR-この場合、16-18肝細胞発現細胞。 MTZ治療の持続時間を操作することによって、肝切除の程度を制御することができます。このモデルを使用して、我々は最近、重度の肝細胞の喪失時に、BECSは広く、さらに他の二つの独立した研究20,21によって確認された肝細胞19を 、再生を生じさせることを報告しました。したがって、上記の齧歯類及びゼブラフィッシュ肝臓損傷モデルと比較して、我々の肝切除モデルはBEC駆動型肝再生を研究するため、より有利です。

このプロトコルは、ゼブラフィッシュ肝切除モデルを用いて、肝再生の実験を行うための手順を記載しています。このモデルは、胆汁駆動型肝再生のメカニズムを決定するための、および化学スクリーンが抑制または肝再生を増強することができる小分子を同定するために適切です。

Protocol

ゼブラフィッシュは、標準的な手順に従って上昇して飼育しました。実験は、ピッツバーグ大学の施設内動物管理使用委員会によって承認されました。 胚/幼虫の調製時限交配を行うために、成人男性と女性のTg(fabp10a:CFP-NTR)を設定S931半接合またはホモ接合性魚類のO / Nを、それらの間の仕切りを配置します。相手が所望される場合は、次…

Representative Results

3.5へのDPF劇的に低減肝臓サイズ( 図1B)から36時間、MTZ処理(A36h、Aは、アブレーションの略)。 MTZのウォッシュアウト後、肝再生(R)の始まりと考え、強いfabp10a:CFP-NTRとfabp10a:DsRedの発現は、30時間( 図1B)内に再び現れました。肝内胆管ネットワークBECS 22の膜中に存在するALCAMの発現によって評価されるように、最初に崩壊したが54時間後…

Discussion

重度、軽度ではない、肝切除は、胆管駆動の肝臓の再生を誘発します。 CFP-NTR導入遺伝子:したがって、MTZの治療およびウォッシュアウトの後、それはfabp10aから固有のCFPの蛍光によって評価することができるMTZ処理した幼虫の肝臓サイズを調べることが重要です。 MTZ処理した幼虫の小さな割合は、非アブレーション表示(0-5%)または(10〜20%)の肝臓の一部アブレー?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Drs. Hukriede and Tsang for discussions. M.K. was supported by an NIH training grant (T32EB001026). This work was supported in part by grants from the American Liver Foundation, the March of Dimes Foundation (5-FY12-39), and the NIH (DK101426) to D.S.

Materials

3-amino benzoic acid ethyl ester (Tricaine) powder Sigma-Aldrich A5040 Make 0.4% (15 mM) tricaine stock : Bring 0.4 g tricaine to 100 mL with egg water. Adjust to pH 7. 
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D8418
Metronidazole Sigma-Aldrich M1547
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8532
Formaldehyde Sigma-Aldrich 252549
Calcium sulfate dihydrate Sigma-Aldrich C3771
N-Phenylthiourea (PTU) Sigma-Aldrich P7629
Mounting media (Vectashield) Vector Laboratories H-1000
100 x 15 mm petri dish  Denville Scientific Inc. M5300
clear nail polish Fisher Scientific 50949071
fine forceps Fine Science Tools 11251-20 Dumont #5 
glass slide Fisher Scientific 12-544-1
glass coverslip Fisher Scientific 12-540-A and 12-542-A 18 x 18 mm
zn-5 (mouse anti-Alcam) ZIRC zn-5 1:10 dilution
goat anti-Hnf4a Santa Cruz sc-6556 (C-19) 1:50 dilution
rat anti-RFP Allele Biotechnology ACT-CM-MRRFP10 1:300 dilution
AlexaFluor 647 AffiniPure Donkey Anti-goat IgG (H+L) Jackson laboratories 705-605-147 1:500 dilution
AlexaFluor 647 AffiniPure Goat Anti-mouse IgG (H+L) Invitrogen A21240 1:500 dilution
Cy3 donkey anti-rat IgG Jackson laboratories 712-165-150 1:500 dilution
dissecting microscope Leica Microsystems S6F
epifluorescence microscope Leica Microsystems M205FA
confocal microscope Carl Zeiss LSM700
egg water 0.3 g/L of sea salts ‘Instant Ocean’ and 0.5 mM CaSO4 in distilled water.
10X PBS 25.6 g Na2HPO4·7H2O, 80 g NaCl, 2 g KCl, 2 g KH2PO4.  Bring to 1 L with distilled water.  Adjust pH 7.  Autoclave for 20 min at 121°C.
1X PBSDT 0.2% Triton X-100 and 0.2% DMSO in 1 X PBS.
PEM buffer 30.2 g PIPES, 761 mg EGTA, 1 mM MgSO4.  Bring to 1 L with distilled water.  Adjust pH 7.
Blocking solution Mix 1 ml of heat-inactivated horse serum with 9 ml of 1X PBSDT.

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Citer Cet Article
Choi, T., Khaliq, M., Ko, S., So, J., Shin, D. Hepatocyte-specific Ablation in Zebrafish to Study Biliary-driven Liver Regeneration. J. Vis. Exp. (99), e52785, doi:10.3791/52785 (2015).

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