The main adherent cell types derived from human muscle are myogenic cells and fibroblasts. Here, cell populations are enriched using magnetic-activated cell sorting based on the CD56 antigen. Subsequent immunolabelling with specific antibodies and use of image analysis techniques allows quantification of cytoplasmic and nuclear characteristics in individual cells.
Ремонт и восстановление скелетных мышц требуется действие сателлитных клеток, которые являются резидентом мышечные стволовые клетки. Они могут быть выделены из образцов биопсии мышц человек с использованием ферментативного расщепления и их миогенными свойств исследуемых в культуре. Количественно два основных прилипшие типы клеток, полученные из ферментативного пищеварения: (я) сателлитные клетки (называемые миогенные клетки или клетки предшественников мышечных волокон), которые были определены первоначально как CD56 +, а позже CD56 + / Desmin + клеток и (II) мышечно- полученные фибробласты, идентифицированные как CD56 – и TE-7 +. Фибробласты пролиферируют очень эффективно в культуре и в группах смешанных клеток эти клетки могут захватить миогенные клетки доминируют в культуре. Выделение и очистка из различных типов клеток из человеческой мышцы, таким образом, важным фактором методической при попытке исследовать врожденной поведение любой тип клеток в культуре. Здесь мы DESCRМБП систему сортировки, основанный на пологом ферментативного переваривания клеток с использованием коллагеназы и диспазу затем магнитного сортировка клеток (MACS), которая дает как высокую чистоту (> 95% миогенные клетки) и хороший урожай (~ 2,8 х 10 6 ± 8,87 х 10 5 клеток / г ткани после 7 дней в пробирке) для экспериментов в области культуры. Этот подход основан на инкубации смешанный мышц, полученных клеточной популяции с магнитных шариков микрошариков, конъюгированных с антителом против CD56, а затем прохождение клетки, хотя в магнитном поле. CD56 + клетки, связанные с микрошариков, сохраняются в области, тогда как CD56 – клетки проходят беспрепятственно через колонку. Клеточные суспензии из любой стадии процесса сортировки может быть высевали и культивировали. После данного вмешательства, морфологию клеток и экспрессию и локализацию белков, включая ядерные транскрипционные факторы могут быть количественно, используя Иммунофлуоресцентной маркировки специфическими антителами и изображение рrocessing и анализ пакета.
Ремонт и восстановление скелетных мышц требуется действие спутниковых клеток 1, миогенные стволовых клеток 2,3. В естественных условиях эти клетки существуют в состоянии покоя обратимо, расположенной между сарколеммы и базальной пластинки каждого myofibre, но активируются к пролиферации, предохранитель и дифференцировать как мышечная ткань повреждена, ремонт и регенерируется 3. Спутниковые клетки могут быть выделены из молодых и пожилых человек мышечных биоптатов с использованием ферментативного расщепления 4 и их миогенными свойств может затем быть изучены в первичной культуре 5. Эффективность этого процесса изоляции в отношении как выхода и чистоты популяции клеток зависит от используемых методов и может меняться от образца к образцу. Два основных прилипшие типы клеток, полученные из ферментативного расщепления являются клетки-сателлиты (в настоящее время называются миогенные клетки или клетки предшественников мышечных волокон), которые были определены первоначально как CD56 + / Desmin клеток и муSCLE полученных фибробласты, идентифицированные как CD56 – и TE7 + клеток 5. Фибробласты имеют быстрый темп пролиферации и не подвергаются необратимому остановку роста и терминальной дифференцировки на межклеточных контактов как миогенных клеток; Таким образом, в смешанных популяциях, фибробласты могут захватить миогенные клетки доминируют в культуре.
Фибробласты часто рассматривается как раздражение для мышц биологов, однако, в настоящее время растет интерес к фибробластов клетки, достойных изучения в их собственном праве, в частности, как они были показаны иметь кооперативную роль миогенных клеток во время мышечной ремонта 6 , Выделение и очистка из различных типов клеток из человеческой мышцы, таким образом, важным фактором методической при попытке исследовать врожденной поведение обоих типов клеток в культуре. Флуоресценции активированных сортировки клеток (FACS) представляет собой способ, при котором клетки могут быть отсортированы для дальнейшего изучения и / или подсчитывали ианализируются. FACS, как было показано, чтобы надежно обогатить миогенные клетки человека, но выход клеток для последующей культуры до сих пор не была высокой 7. Учитывая ограниченный потенциал репликации соматических клеток, таких как сателлитных клеток, полученных из миогенных клеток и очень плохом пролиферации и дифференцировки, связанных со старением 4, более нежные подходы. Холост культуры мышечных волокон предложить другой, менее агрессивны, средства получения мышиных клетки-сателлиты по-прежнему проживают в их sublaminal нише и после их активации в культуре 8,9. Тем не менее, это часто не представляется возможным из человеческой мышечной биопсии материала (из-за волокна редко могут быть получены из сухожилия к сухожилия), что означает, что этот метод не может быть доступным для многих исследовательских лабораторий, заинтересованных в изучении мышечных клеток, полученных человека. Кроме того, единая методика только волокна обеспечивает очень ограниченное число клеток.
Здесь мы опишем систему сортировки, основанный на генTLE ферментативное расщепление клеток с использованием коллагеназы и диспазу в сопровождении двух последовательных раундов магнитного активированного сортировки клеток (MACS), которая дает как высокую чистоту (> 95% миогенные клетки) и выход (~ 2,8 х 10 6 ± 8,87 х 10 5 клеток / г ткани) для экспериментов в области культуры. CD56 считается золотым стандартом поверхностным маркером для идентификации клеток-сателлитов человека в месте 10 и в пробирке 11 и обеспечивает идеальный кандидат поверхностный маркер для крепления борта. При таком подходе CD56 антитела, конъюгированного с оксидом железа и полисахарида, содержащего суперпарамагнитные шарики связаны с клетками и пропускают через высокий градиент магнитного разделительной колонны клеток, помещенной в сильном магнитном поле 12,13. В разделительные колонны заполнены с матрицей ферромагнитных стали шерсти или железа сферах, которые служат, чтобы сосредоточиться силовых линий магнитного поля к их поверхности, генерирующих сильные градиенты магнитного поля (~ 4tesla) 14, В этих колонн даже несколько магнитных клетки притягиваются и адсорбируют на своей поверхности 14. Unbound (CD56 -) клетки проходят через колонку, тогда как CD56 + клетки, помеченные магнитных микросфер, сохраняются до удаления от магнитного поля 12,15.
Клеточные суспензии из любой стадии процесса сортировки можно покрыть при желаемой плотности для дальнейших экспериментов. После данного вмешательства клеточные компоненты могут быть определены с помощью иммуноцитохимии, отображаемого использованием широкого поля или конфокальной флуоресцентной микроскопии и количественный анализ с использованием подхода, анализа изображений, что позволяет быстро объективное измерение всех меченых клеток в той или иной образ. В нашей лаборатории мы использовали этот двоякий подход иммуномагнитный сортировки с последующим анализом изображений 16, чтобы продемонстрировать, что CD56 – фибробласты человека легко трансформироваться в адипоциты, в то время как миогенной клеткис спутниковой происхождения обладают высокой устойчивостью к этой адипогенной преобразования 5.
Мы описали immunomagentic сортировки процедуру для селективного обогащения прекурсоров человеческие мышечные, полученных от небольших образцов биопсии мышц материала. Эта техника была неоценима в нашей лаборатории для преодоления потерь культур человеческие мышечные, полученных с фиброб?…
The authors have nothing to disclose.
The authors wish to thank Carl Hobbs and Lindsey Majoram for their technical assistance, and Professor Pat Doherty for use of microscopy facilities. Dr. Agley was supported by a studentship from King’s College London. Funding from the Spurrell Trust is also acknowledged.
Collagenase D | Roche | 11088866001 | |
Dispase II | Sigma | D4693-1G | Must be filter sterilized before use |
Trypsin/EDTA | (Gibco) Invitrogen | 15400-054 | |
100 micron cell strainer | BD Biosciences | 352360 | |
Collagen solution ( 3 mg/ml in 0.1% acetic acid) | Sigma, Dorset, UK | C8919 | |
Minisart SRP15 syringe filter (0.2 micron) | Sartorius | 17573ACK | Polytetrafluorethylene (PTFE) membrane |
CD56 human Microbeads | Miltenyi Biotech | 130-050-401 | Be aware of the limited shelf life of microbeads |
Anti- fibroblast Microbeads, human | Miltenyi Biotech | 130-050-601 | |
40 μm Pre-separation filters | Miltenyi Biotech | 130-041-407 | |
Large Cell Collumns | Miltenyi Biotech | 130-042-202 | These columns come with a flow resistor. Use of the flow resistor is not necessary to obtain the high myogenic purities described here. |
LS columns | Miltenyi Biotech | 130-042-401 | |
MiniMacs Seperator | Miltenyi Biotech | 130-042-102 | This separator fits the large cell column but not the LS column. |
MidiMACS | Miltenyi Biotech | 130-042-302 | |
MACS multistand | Miltenyi Biotech | 130-042-303 | |
BSA | Sigma | Must be filter sterilized before use | |
Oil Red O | Sigma | O0625 | |
Triethyl phosphate | Sigma | 538728 | |
Whatman Paper | Sigma | Z241121-1PAK | No. 42, Ashless. To prepare the filter fold the circular filter paper to make a semi circle, then fold the semi-circle in half again to form a cone shape. Fit the cone into a funnel for filtering. |
ProLong Gold Antifade Reagent | Molecular Probes, Invitrogen | P36930 | This can be purchased with or without DAPI and does not quench initial fluorescence. |
AxioVision | Carl Zeiss | Contact Zeiss | |
Adobe Photoshop CS5 Extended | Adobe (purchased from Pugh Computers) | ADPH16982* |