Optogenetics has become a powerful tool for use in behavioral neuroscience experiments. This protocol offers a step-by-step guide to the design and set-up of laser systems, and provides a full protocol for carrying out multiple and simultaneous in vivo optogenetic stimulations compatible with most rodent behavioral testing paradigms.
The ability to probe defined neural circuits in awake, freely-moving animals with cell-type specificity, spatial precision, and high temporal resolution has been a long sought tool for neuroscientists in the systems-level search for the neural circuitry governing complex behavioral states. Optogenetics is a cutting-edge tool that is revolutionizing the field of neuroscience and represents one of the first systematic approaches to enable causal testing regarding the relation between neural signaling events and behavior. By combining optical and genetic approaches, neural signaling can be bi-directionally controlled through expression of light-sensitive ion channels (opsins) in mammalian cells. The current protocol describes delivery of specific wavelengths of light to opsin-expressing cells in deep brain structures of awake, freely-moving rodents for neural circuit modulation. Theoretical principles of light transmission as an experimental consideration are discussed in the context of performing in vivo optogenetic stimulation. The protocol details the design and construction of both simple and complex laser configurations and describes tethering strategies to permit simultaneous stimulation of multiple animals for high-throughput behavioral testing.
Optogenetics heeft een revolutie teweeggebracht systemen-niveau neurowetenschappen in zijn zoektocht naar de neurale circuit elementen rijden normaal en ziekte-relevante gedragstoestanden. De ontdekking dat lichtgevoelige microbiële opsins kon 1 functioneel worden uitgedrukt in zoogdiercellen mits het platform voor het gebruik van licht om ongekende controle van neurale activiteit met een hoge ruimtelijke en temporele precisie 2 te krijgen. In tegenstelling tot traditionele elektrofysiologische en farmacologische benaderingen voor de behandeling van neurale activiteit optogenetics maakt de bestrijding van specifieke celtypen (voor genetische identificatie of ruimtelijke uitsteeksel) in heterogene populaties en fysiologisch relevante tijdschalen. De latere invoering van een neurale-optische interface voorzien van een praktisch hulpmiddel voor de levering van licht om gedragen dieren 3. Dit heeft het mogelijk gemaakt voor real-time modulatie van bepaalde neurale circuits in wakker gedragen knaagdieren om causaal testen van derol van deze neurale circuits in het bestuur van gedragstoestanden naar neurologische en psychiatrische ziekten 4-6 relevant. Optogenetics, daarom is een krachtig hulpmiddel voor introductie in elk laboratorium geïnteresseerd in het onderzoeken van de functionele relatie tussen hersenactiviteit en gedrags- of fysiologische maatregelen in diermodellen.
Succesvol ontwerp en de voltooiing van een optogenetische experiment houdt in verschillende stappen en overwegingen (zie figuur 1). Het doel van het huidige protocol is om individuen te voorzien van de gereedschappen en onderdelen, samen met de theoretische en praktische kennis, die nodig zijn om optogenetische stimulatie uitvoeren wakker gedragen knaagdieren. Momenteel zijn er twee overheersende golflengte marges gebruikt microbiële opsin kanalen activeren: in het blauwe spectrum (gewoonlijk 473 nm) en groen-geel spectra (meestal 532 of 591 nm). Beide lasers en licht-emitterende diodes (LEDs) worden gebruikt als lichtbron voor dEliver specifieke golflengten van licht om hersenweefsel. De niet-coherent licht dat LEDs maakt echter effectieve transmissie van licht moeilijk wanneer het koppelen in de voor in vivo knaagdier stimulatie kleine kern vezels. Bepalen van de geschikte laser samenstel een cruciale eerste stap en zal afhangen van het beoogde gebruik van optogenetics in het lab. Het huidige protocol beschrijft twee basisconfiguraties die verschillen in hun gemakkelijke montage en gebruik: single pre-gekoppelde lasers en dubbele lasersystemen (zie figuur 2). Enkele lasersystemen die vooraf gekoppeld door de fabrikant in wezen kant-en-go bij aankomst met weinig tot geen opstelling vereist, maar hebben het nadeel minimale eindgebruiker voorbeeld. Een dual laser systeem maakt het mogelijk de levering van twee verschillende golflengten beneden dezelfde vezel. Dit wordt steeds belangrijker met de komst van combinatorische optogenetics worden waarbij verschillende golflengtes kan worden gebruikt voor het activeren / remmen onderscheidt celtypen die ruimtelijk mede gelokaliseerd. Dit is ook van essentieel belang is voor gebruik met een bi-stabiele stap functie opsins waar fotostromen worden gestart en beëindigd door blauw en geel licht, respectievelijk 7,8. Dual lasersystemen ook aanpasbaar als de gebruiker kan toevoegen of componenten (zoals een externe shutters, beam filters, inline power meter) vanaf de stralengang verwijderen behoefte. Door zijn veelzijdigheid, is de dual laser set-up aan te raden als optogenetics gaat om een voortdurende instrument dat wordt gebruikt in het lab zijn. Koppeling van de lasers, kan echter een uitdaging en dus een snelle, eenvoudige en betrouwbare koppelingsmechanisme is voorzien in dit protocol. Let op, dit protocol beschrijft de montage van optische componenten en maakt gebruik van patchkabels en componenten die zijn geoptimaliseerd voor stap-index multimode glasvezels met een 200 pm kern en een numerieke apertuur (NA) van 0,22. Verschillende kern maten en NA zijn beschikbaar voor aankoop, maar alle componenten moeten idealiter overeenkomen qua kerngrootte en NA te vermijden licht verlies bij glasvezelverbinding punten. Als alternatief op een glasvezelverbinding, kan het licht gaan van een kleinere naar een grotere kern grootte; en / of van een lagere naar een hogere NA-NA vezel zonder bijkomend verlies.
Tethering strategieën worden voorzien die het mogelijk maken simultane stimulatie van meerdere muizen high-throughput gedragstesten. De protocollen over te nemen, gebruik van chronisch implanteerbare vezels voor gedragsonderzoek, maar kunnen worden aangepast voor acute stimulatieprotocols. Acuut geïmplanteerde vezels voordelig te combineren optogenetic stimulatie met farmacologische manipulatie, omdat dezelfde canule gebruikt om drugs en het uiteinde van een optische vezel op dezelfde locatie te leveren. Het gebruik van chronisch geïmplanteerde vezels is echter sterk aanbevolen voor meerdaagse gedragstesten aangezien daardoor weefselbeschadiging een herhaalde plaatsen en verwijderen van vezels en verhoogt de nauwkeurigheid qua consistente plaatsing van vezels voorweefsel verlichting 3. In combinatie met de tethering configuraties beschreven, kan gedrag worden geregistreerd betrouwbaar meerdere dagen. Inderdaad, betrouwbare lichttransmissie gemeld maanden na vezels implantatie 9 zodanig dat chronische stimulatie en gedragsproblemen testen paradigma's kan, in theorie, worden uitgevoerd over meerdere dagen en weken uitgevoerd. Aanvullende opmerkingen over hardware componenten zijn toegevoegd aan het protocol bij de lezer de keuze in het beste product dat past bij hun individuele behoeften, met inbegrip van kosteneffectieve alternatieven en producten die kunnen worden gemaakt in eigen huis mogelijk te maken. Belangrijke tips die handig zijn tijdens de installatie en implementatie zijn ook aanwezig.
De huidige beschreven laser set-ups en tethering strategieën zijn compatibel met een breed scala van knaagdieren gedragstesten. Inderdaad, hebben een verscheidenheid van gedragstesten gebruikt na, of begeleiden, in vivo optogenetische stimulatie die emotieve gedragstherapie taken, gedragsconditionering, leren en geheugen paradigma's, slapen, opwinding, en appetitief taken omvatten een paar te noemen (zie Nieh et al. 6 voor een uitgebreide review). Optogenetics heeft de manier veranderd waarop traditionele gedrags-tests worden uitgevoerd in die meerdaagse studies kunnen nu worden gecondenseerd in een enkele sessie waarin gedrag wordt vergeleken, binnen-proefpersonen, tijdens verschillende tijdperken van het licht 'aan' versus 'uit' 5. Van de nota, gedrags- apparaten die deuropeningen bevatten, afgesloten compartimenten of andere obstakels kunnen aangepast moeten worden om de doorgang van tethered vezels tegemoet te komen.
De beschreven tethering strategieën vergunning simultaneous stimulatie van meerdere muizen uit een laser. High throughput optogenetic gedragstesten kunnen derhalve worden bereikt door het gebruik van meerdere lasers en testapparatuur. Het aantal dieren die gelijktijdig kunnen worden gestimuleerd, zal echter door de maximale lichtsterkte dat in elke vezelpunt kan worden bereikt. Maximaal vermogen aan de vezel tip is afhankelijk van de 1) startvermogen van de laser; 2) koppelingsefficiëntie en 3) het aantal bundel splitst. Voor 100 mW laser met ~ 80% koppelingsefficiëntie en maximaal 4 bundel splitst (zoals weergegeven in figuur 4C), gemiddelde vermogen in de vezel uiteinde kan variëren tussen 5-10 mW bij gebruik van 200 urn kern, 0,22 NA fiber patch cords (nb verwachten transmissie verlies van roterende gewrichten te zijn <15%). Meten lichtopbrengst op de vezel tip is van essentieel belang voor het bepalen van een geschikt licht macht voor opsin activering als opsins verschillen in hun gevoeligheid voor licht en dus het licht vermogensdichtheid (mW/ Mm2) voor activering vereiste 11. Bijvoorbeeld, de stabiele stap-functie opsin (SSFO) als een foton accumulator en vereist daarom weinig licht vermogensdichtheid voor activering (<8 uW / mm 2) 8. Vergelijk dit met de traditionele kanaal rhodopsin (ChR2) dat een minimum van 1 mW / mm 2 van licht om actiepotentialen ontlokken vereist 2. Tabel 1 wordt geleverd als een snelle referentie voor bekende minimale licht bestralingen die nodig is om de meest voorkomende opsins momenteel in activeren gebruiken. Ten slotte moet men overwegen dat licht verstrooit en absorbeert als het reizen door hersenweefsel zodanig dat meer licht vermogen nodig is voor diepere hersenstructuren 3. Een handig online hulpmiddel is altijd beschikbaar http://www.stanford.edu/group/dlab/cgi-bin/graph/chart.php dat de lichtsterkte op verschillende diepten door hersenweefsel zal berekenen door rekening terekening de vezel kern grootte, numerieke opening, golflengte van het licht gebruikt, en het begint licht vermogen bij de vezel tip. Voor een uitstekend overzicht van de theoretische uitgangspunten van deze berekeningen, zie Foutz et al. (2012) 12. Voorbeelden van hoe deze uitgangspunten en berekeningen te experimenteel design toepassing worden gedemonstreerd in Aravanis et al. (2007) 3 en Tye et al. (2012) 13. Voorafgaand uitvoeren van deze berekeningen het begin van een experiment cruciaal voldoende licht bestralingssterkte voor opsin activatie waarborgen. Gezien deze overwegingen is het voordelig om hogere aangedreven lasers kopen om voldoende vermogen te garanderen. Lasers met een vermogen tussen 100-200 mW zijn over het algemeen voldoende om te compenseren voor kleine kern vezels, meerdere vezels splitsen, koppeling inefficiëntie en transmissie verliest 7. Bij gebruik van een hoog vermogen lasers, echter, zorg moeten worden genomen om neurale schade of warmte en licht-associate voorkomend artefacten die kan optreden bij langdurige en / of hoge aangedreven licht verlichting 7. Een veilige bereik voor in vivo experimenten tot 75 mW / mm2. 14
Beslissen over de aard van de laser om de aankoop kan een ingewikkelde zaak, omdat er veel factoren te overwegen zijn. Bijvoorbeeld, directe diode lasers zorgen voor meer stabiele en herhaalbare gepulseerd vermogen dan doen diode-gepompte solid-state (DPSS) lasers, en zijn betrouwbaarder dan de tijd in een testomgeving. In sommige gevallen echter direct diodelasers een lagere lichtopbrengst, ~ 0,1 mW afgeven, zelfs wanneer de stuurspanning 0 V door een constante instelstroom aan de diode wordt verzonden door regelelektronica van de laser. Deze 'spontane' emissie heeft een breder spectrum dan doet laser emissie van dezelfde laser, dus kan specifiek door het installeren van een smalle band-pas (of 'opschonen') filter tussen de laser en de koppeling (zie onderdelen lijst) worden verlaagd. Dit filter zal ookverminderen vermogen door ~ 50% bij het laseren, dus de aanschaf van een hogere aangedreven laser dienovereenkomstig. Opgemerkt zij dat geel DPSS lasers zijn zeer gevoelig en kunnen niet goed bijgewerkt en verminderde levensduur als snel gemoduleerd door een pulsgenerator. Aanpassing van de gele laservermogen moet worden gedaan door middel van externe dichtheid filter wielen geplaatst in de bundel pad (paragraaf 1.7), terwijl de bediening van de laser in de TTL + modus. Als alternatief, de aanschaf van een groene 532 nm DPSS laser is een kosteneffectief alternatief dat zowel halorhodopsins en archaerhodopsins kan activeren.
De numerieke apertuur (NA) van een vezel is belangrijk om te overwegen bij het ontwerpen en de aankoop van fiber componenten voor laser montage set-up. De NA van een optische vezel bepaalt de hoeken van lichtstralen die kan worden aanvaard en afgegeven aan het uiteinde van een vezel. Indien een hoge-NA vezel wordt naar een lagere NA vezel zal aanzienlijk verlies optreden op die interface, dus is het belangrijk om consequent WI th fiber NA binnen één setup (of ervoor te zorgen dat NA verhoogt langs het lichtpad). Het effect van vezel NA van het volume van hersenweefsel verlichte minder belangrijk, aangezien hersenweefsel sterk verstrooiende en aangezien het licht gekoppeld vanuit een laserbron wordt vaak "underfill" high-NA vezels; Echter optische vezels met een NA van 0,22 en 0,37 worden vaak gebruikt. Evenzo koppelen van een grotere kern een kleinere kern vezel zal ook resulteren in aanzienlijke verliezen, dus altijd zeker te verhogen of gelijk kern diameters wordt naargelang de laserbron aan het dier implantaat. Op een algemene opmerking, moet vezeluiteinden altijd worden afgedekt wanneer niet in gebruik om stof en deeltjes opbouw te voorkomen. Het is een goed idee om regelmatig schoon vezeluiteinden en connectoren (70% isopropylalcohol werkt goed) om maximale licht vermogen te garanderen, en om licht vermogen door middel van een 'dummy implantaat' te testen voordat u begint elke dag experimenten.
"> Tijdens gedragstesten, is het noodzakelijk maatregelen te nemen om te controleren voor de effecten van virale infectie, exogene eiwitexpressie, zichtbaar licht, en eventuele verwarming van weefsel effect en artefacten diergedrag. Daarom is de juiste controlegroep bestaan dieren getransduceerd met een controle virus (bijvoorbeeld GFP, eYFP, mCherry) dat identieke lichte stimulatieparameters ontvangen. Experimentele verificatie is een cruciale laatste stap als gedragsgegevens gebruikt voor analyse is geheel afhankelijk van een juiste opsin glasvezelkabels plaatsing in het interessegebied . Specifiek bij dieren waarbij geen immunohistochemisch signaal wordt gedetecteerd of wanneer plaatsing van het signaal of vezel niet in het gebied van belang, dan gedragsgegevens voor dat dier worden verwijderd uit het experiment. Daarnaast is het essentieel lichtopbrengst testen de vezelpunt zowel voor chirurgische implantatie en opnieuw post-mortem om voldoende licht macht voor opsin activering te garanderen. In animals waar ernstige licht verlies is opgetreden door de vezel na experimenten (> 30%) 9, gegevens voor dat dier moet worden overwogen voor verwijdering. Criteria voor de verwijdering moeten worden vastgesteld a priori. Ten slotte moet men de pulsfrequentie nodig neurale afvuren moduleren, die zal afhangen van de hersenen structuur en neuronale subtypes doelwit beschouwen. Geplaatst optogenetic licht stimulatieparameters aanwezig voor meervoudige neuronale subtypes, moet echter de mogelijkheid om neurale afvuren moduleren onafhankelijk bevestigd door in vivo of hersenplakje elektrofysiologische opnames.Als men wordt bedreven met laser gebruik en modificatie van laser set-ups, kunnen combinaties van verschillende golflengten worden aangebonden om meerdere vezels op een enkel dier of geleverd door dezelfde vezel voor combinatorische optogenetics 8. Multi-golflengte stimulatie zal steeds belangrijker worden, gezien de snelle ontwikkeling van de roodverschuivinged channelrhodopsins 8, de engineering van blauw-verschoven hyperpolariserende opsins 15, het gebruik van bistabiele stap-functie opsins 8,16,17, en de algemene groeiende lijst van opsins met verschillende activering spectra 11. Deze uitbreiding van de optogenetische toolbox zal de ongekende controle van meerdere neurale sub-types, zowel binnen als tussen de gebieden van de hersenen in staat te stellen hun rol in het bestuur van complexe gedragsproblemen staten bepalen.
The authors have nothing to disclose.
These studies were funded by grants received from the NIH (MH082876, DA023988).
1. Laser Set-up | ||||
Name of Equipment | Company | Quantity | Catalog Number | Comments |
100mW 473nm or 488nm Diode Laser System , <2% Stability | Omicron | 1 | Luxx/Phoxx 473/488-100 | Optional accessory includes a remote control box with key switch and LED Display |
100mW 594nm DPSS laser | Colbolt | 1 | 0594-04-01-0100-300 | 04-01 series yellow laser; sensitive to back-reflection from fibers |
200mW 532nm DPSS laser; 5% power stability | Shanghai Lasers | 1 | GL532T3-200 | Cost-effective alternative to yellow DPSS laser for activation of halorhodopsins and archaerhodopsins |
Non-contact style laser to multimode fiber coupler | OZ Optics | 1 | HPUC-23-400/700-M-20AC-11 | For use with dual laser set-up; Specs: 33mm OD for 400-700nm; FC receptacle, f=20mm lens with post mount laser head adapter #11 |
Aluminum breadboard, 12" x 18" x 1/2", 1/4"-20 Threaded | Thorlabs | 1 | MB1213 | For dual laser system |
Aluminum breadboard, 10" x 12" x 1/2". 1/4"-20 Threaded | Thorlabs | 1 | MB1012 | For single laser system |
Aluminum breadboard, 4" x 6" x 1/2", 1/4"-20 Threaded | Thorlabs | 2 | MB4 | For blue laser; dual laser system |
Compact variable height clamp, 1/4"-20 Tapped | Thorlabs | 4 | CL3 | |
3/4" stainless post | Thorlabs | 1 | TR075 | |
1" stainless post | Thorlabs | 4 | TR1 | |
Post holder with spring-loaded hex-locking thumbscrew | Thorlabs | 2 | PH1 | |
Pedestal Base Adapter | Thorlabs | 3 | BE1 | |
Small Clamping Fork | Thorlabs | 3 | CF125 | |
Kinematic mount for 1" optics with visible laser quality mirror | Thorlabs | 3 | KM100-E02 | |
Neutral filter density wheel | Thorlabs | 1 | NDC-50C-2M | |
1" Longpass dichroic mirror 50% | Thorlabs | 1 | DMLP505 | |
Kinematic mount for 1" optics | Thorlabs | 1 | KM100 | For dichroic mirror |
20-piece hex wrench kit with stand | Thorlabs | 1 | TC2 | |
1/4"-20 cap screw and hardware kit | Thorlabs | 1 | HW-KIT2 | |
Mounting base 1" x 2.3"x3/8" | Thorlabs | 1 | BA1S | |
FC/PC to FC/PC L-Bracket mating sleeve | Thorlabs | 2 | ADAFCB1 | Dual FC/PC L-bracket also available |
Breadboard lifting handles | Thorlabs | 3 | BBH1 | |
Ø1" Bandpass Filter, CWL = 450 ± 2 nm, FWHM = 10 ± 2 nm | Thorlabs | 1 | FB450-10 | For use with diode lasers that spontaneously emit |
2. Laser Coupling | ||||
Name of Equipment | Company | Quantity | Catalog Number | Comments |
! Laser protective eyewear | Various | One for every user at each wavelength | ! Consult with laser provider to ensure proper selection of eyewear that will provide maximal light attenuation for the purchased laser | |
Fiber optic cable tester | Eclipse | 1 | 902-186N | |
One-step fiber connector cleaner | Thorlabs | 1 | FBC1 | |
Coupler patch cord (0.75 meter) | Thorlabs | 1 | 0.75m 200um core, 0.22NA, FC/PC connectors multimode fibers | For dual laser system |
Coupler patch cord (0.5 meter) | Thorlabs | 1 | 0.5m 200um core, 0.22NA, FC/PC connectors, multimode | For single laser system |
Doric mini cube | DORIC | 2 | DMC_1x2_FC-2FC | |
Compact power and energy meter console | Thorlabs | 1 | PM100D | Digital 4" LCD |
C-series slim power sensor 5-500mW | Thorlabs | 1 | S130C | Multiple detectors types are available; check with vendor |
3. In vivo Optogenetic Stimulation | ||||
Name of Equipment | Company | Quantity | Catalog Number | Comments |
Multimode fiber splitters | FONT Canada | 2 | Large core fiber optic 1 X 2 splitter, 50/50 ratio, FC connectors, ruggedized | Length, core size and numerical aperture can be specified when ordering; cost-effective smaller core sizes available |
Arbitrary waveform function generator (2 channel) | Rigol | 1 | DG1022 | Can control up to 2 lasers at once |
Fiber optic rotary joint (commutator) | DORIC* | 6 to 8 | FRJ_1X1_FC-FC | *Also available through Thorlabs and Prizmatix |
Animal patch cords (Custom Mono Fiberoptic Cannula with 10mm ferrules, FC/PC connector) | DORIC | 8 | MFP_200/240/900-0.22_2m_FC-MF2.5 | Length, core size and numerical aperture can be specified when ordering; alternatively, these can be made custom made in-house (see Sparta et al. 2012)9. |
PFP ceramic split sleeve, 2.5mm ID, 11.40mm length (25/pkg) | Precision fiber Products | 1 | SM-CS1140S | Used for attaching implanted fiber optic on animal to a light-delivering fiber patch cord with flat cleeve (FC) end |
Clear dust caps for Ø2.5 mm ferrules (25/pkg) | Thorlabs | 1 | CAPF | |
Metal cap for FC/PC and FC/APC mating sleeves | Thorlabs | 2 | CAPF1 | |
Thick-jacketed patch cords (custom order) | Thorlabs | 4 | 200um core, 0.22NA, FC/PC connectors multimode fibers | Length, core size, and numerical aperture can be specified when ordering |