Summary

Количественный<em> В пробирке</em> Анализе на определение адгезию нейтрофилов к активированным Первичные человеческие эндотелиальные клетки микрососудов в статических условиях

Published: August 23, 2013
doi:

Summary

Нейтрофилов соблюдение активированного эндотелия в местах инфекции является неотъемлемым компонентом воспалительного ответа хозяина. Описанных в настоящем докладе является связывание нейтрофилов, что позволяет<em> В пробирке</em> Количественного определения первичных человеческих нейтрофилов связывания с эндотелиальными клетками, активированными воспалительными медиаторами в статических условиях.

Abstract

Сосудистый эндотелий играет важную роль в воспалительной реакции. Во время острой фазы воспаления, эндотелиальные клетки (ECS) активируются принимающими посредников или непосредственно консервативных компонентов микробного или хост-полученных молекул опасности. Активированный ЭК экспресс цитокинов, хемокинов и молекул адгезии, которые мобилизуют, активировать и сохранить лейкоцитов в месте инфекции или травмы. Нейтрофилы первый лейкоцитов, чтобы прибыть, и прилипать к эндотелию с помощью различных молекул адгезии, присутствующих на поверхности обоих элементов. Основные функции нейтрофилов непосредственно устранить микробных угроз, направленной на выпуск других лейкоцитов путем выпуска дополнительных факторов, и инициировать заживления ран. Таким образом, их набор и привязанность к эндотелия является важным шагом в инициации воспалительной реакции. В этом докладе мы описываем в пробирке адгезию нейтрофилов анализе с использованиемкальцеин AM меченных первичных человеческих нейтрофилов для количественной оценки степени эндотелия микрососудов клеточной активации в статических условиях. Этот метод имеет то дополнительное преимущество, что такие же образцы количественно с помощью флуоресцентной спектрометрии можно визуализировать непосредственно с помощью флуоресцентной микроскопии для более качественной оценки нейтрофилов обязательным.

Introduction

Так как сосудистый эндотелий находится в прямом контакте с циркулирующей кровью, уникально расположен инициировать быстрое воспалительной реакции во время инфекции или травмы. Эндотелиальные клетки (ECS) выражают распознающих рецепторов, которые распознают различные консервативные бактериальные компоненты и опасности молекул и рецепторов для хозяина воспалительных медиаторов, таких как TNF-alpha. Активация этих рецепторов вызывает ЭК секретируют цитокины (например, IL-6, IL-8, CXCL1 и CCL2) и усиливают молекул адгезии (например, E / P-селектина, VCAM-1 и ICAM-1) на своей поверхности один , 2. Эти молекулы всех облегчения локализации лейкоцитов к локализации инфекции и травмы, чтобы очистить множество инфекционных агентов и инициировать восстановление тканей 3,4. Нейтрофилов ответ на инфекцию предполагает слаженную взаимодействие между сосудистого эндотелия и ответы нейтрофилов. После активации ЕС, IL-8 секретируется и образует внутрисосудистого градиент на эндотелий, который позволяет нейтрофилов к дому, чтобы в месте инфекции или травмы 5,6. E / P-селектинами промежуточных нейтрофилов захвата и катится по относительно слабой ассоциации с glycomolecules нейтрофилов на клеточной поверхности. Эти взаимодействия, наряду с IL-8 связывания с его родственными рецепторами, облегчения надежной, интегрину-опосредованной привязанность и возможного ареста нейтрофилов на поверхности клеток эндотелия 7-10. После ареста, нейтрофилы могут мигрировать из сосудистой конкретных местах инфекции непосредственно устранения патогенных микроорганизмов, генерировать нейтрофилов внеклеточных ловушек для предотвращения распространения патогенных микроорганизмов, способствуют заживлению ран и отпустите дополнительные факторы, которые вербуют других лейкоцитов, таких как моноциты, макрофаги и дендритные Клетки 11-17.

Описанные в этом докладе, в пробирке метод для количественного нейтрофилов соблюдение мкВascular ECs после активации принимающей медиатор воспаления ФНО. Этот тест предназначен для оценки активацию ЭК, а не нейтрофилов. Первичные человеческие нейтрофилы выделяют с использованием первого разделения градиента плотности, а затем метили кальцеин ацетоксиметила (AM). Эстераз в живых клетках гидролизуют кальцеина AM к сильно флуоресцирующего кальцеин молекулы с возбуждением 492-495 нм и излучение 513-516 нм 18. Флуоресцентно меченных нейтрофилы затем инкубировали с монослои EC и не прилипшие нейтрофилов затем удаляются. Флуоресценции из оставшихся, связанного нейтрофилов затем измеряется с помощью флуоресцентного спектрофотометра, и рассчитывается как процент от общего числа нейтрофилов флуоресценции вход на лунку. Этот метод имеет то дополнительное преимущество, что связанное кальцеин меченных нейтрофилы использовали в спектрофотометрии может быть непосредственно визуализировали с помощью флуоресцентной микроскопии, чтобы дать более качественный считываются из EC переменногоактиваций. Так как это анализ проводят в статических условиях, только очень исходных событий, которые происходят в адгезии нейтрофилов каскад будет оцениваться. Это подтверждается в этом отчет, используя E-селектину блокирующих антител, чтобы показать, что нейтрофилы соблюдение ФНО обработанных легких человека микрососудистой EC (HMVEC-Lung) монослоя резко снижается, когда взаимодействие с E-селектину нарушается.

В дополнение к ФНО, мы успешно использовали эту пробу, чтобы определить степень пупочной вены человека EC (HUVEC) активация Toll-подобный рецептор 1/2 агонисты пептидогликан связанных липопротеинов (PAL), муреин липопротеинов (MLP) и Pam3Cys и HMVEC-Lung активации Pam3Cys 19,20. Кроме того, мы успешно использовали эту пробу с ингибиторы киназы и после RNAi-обусловленный нокдаун поверхности и цитоплазматических белков в HMVEC-Lung, предполагая, что эта методика является совместимым с различными биохимическими и screeninг анализов 20. Таким образом, этот анализ предоставляет простой в использовании, воспроизводимым, более функциональный способ доступа степень активации EC воспалительными медиаторами в пробирке.

Protocol

1. Покрытие и обслуживание эндотелиальные клетки микрососудов Оттепель и развить свой эндотелиальные клетки микрососудов в соответствии с прилагаемыми инструкциями производителей. В этом протоколе, клетки выращивали в EGM-2 МВ СМИ (Lonza), и рекомендуется, чтобы все эксперименты про?…

Representative Results

Для того чтобы получить надежные и воспроизводимые результаты помощью анализа связывания нейтрофилов, важно, что здоровье и слияния на эндотелиальные клетки микрососудов являются оптимальными на день анализа, как показано с HMVEC-Lung на рисунке 1. Кроме того, крайне важно, чтобы ?…

Discussion

Наиболее важных шагов для успешной нейтрофилов / эндотелия микрососудов анализа клеточной адгезии являются: 1) использование небольшого числа проход (<9), здоровым клеткам эндотелия; 2) Обслуживание изолированных нейтрофилов при низкой плотности (то есть <5 х 10 6 клеток / мл), …

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Департаментом UCSF анестезии и интраоперационной помощи.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
HMVEC-Lung Lonza CC-2527
EGM-2 MV Lonza CC-3202
HBSS Life Technologies 14175-095 Can be substituted with any vendor
48-well Tissue Culture Plates BD Falcon 353078
PBS (without phenol red) UCSF Cell Culture Facility CCFAL001 Can be substituted with any vendor
D-PBS (without Ca2+ and Mg2+ and phenol red) UCSF Cell Culture Facility CCFAL003 Can be substituted with any vendor
RPMI-1640 (without phenol red) Life Technologies 11835-030
Polymorphprep Axis-Shield 1114683
calcein AM Life Technologies C3099 (0.995 mM) stock soln
Trypan Blue Solution Sigma-Aldrich T8154
40 μM filters VWR 21008-949 Can be substituted with any vendor
FLUOstar OPTIMA Spectrophotometer BMG LABTECH

References

  1. Ley, K., Laudanna, C., Cybulsky, M. I., Nourshargh, S. Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated. Nat. Rev. Immunol. 7, 678-689 (2007).
  2. Collins, T., et al. Transcriptional regulation of endothelial cell adhesion molecules: NF-kappa B and cytokine-inducible enhancers. FASEB Journal : Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 9, 899-909 (1995).
  3. Medzhitov, R. Origin and physiological roles of inflammation. Nature. 454, 428-435 (2008).
  4. Chen, G. Y., Nunez, G. Sterile inflammation: sensing and reacting to damage. Nat. Rev. Immunol. 10, 826-837 (2010).
  5. Middleton, J., et al. Transcytosis and surface presentation of IL-8 by venular endothelial cells. Cell. 91, 385-395 (1997).
  6. Rot, A. Endothelial cell binding of NAP-1/IL-8: role in neutrophil emigration. Immunol. Today. 13, 291-294 (1992).
  7. Detmers, P. A., et al. Neutrophil-activating protein 1/interleukin 8 stimulates the binding activity of the leukocyte adhesion receptor CD11b/CD18 on human neutrophils. J. Exp. Med. 171, 1155-1162 (1990).
  8. Laudanna, C., Kim, J. Y., Constantin, G., Butcher, E. Rapid leukocyte integrin activation by chemokines. Immunol. Rev. 186, 37-46 (2002).
  9. Simon, S. I., Hu, Y., Vestweber, D., Smith, C. W. Neutrophil tethering on E-selectin activates beta 2 integrin binding to ICAM-1 through a mitogen-activated protein kinase signal transduction pathway. J. Immunol. 164, 4348-4358 (2000).
  10. Zarbock, A., Ley, K. Mechanisms and consequences of neutrophil interaction with the endothelium. The American Journal of Pathology. 172, 1-7 (2008).
  11. Muller, W. A. Mechanisms of leukocyte transendothelial migration. Annu. Rev. Pathol. 6, 323-344 (2011).
  12. Brinkmann, V., et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 303, 1532-1535 (2004).
  13. Kumar, V., Sharma, A. Neutrophils: Cinderella of innate immune system. International Immunopharmacology. 10, 1325-1334 (2010).
  14. McDonald, B., et al. Intravascular danger signals guide neutrophils to sites of sterile inflammation. Science. 330, 362-366 (2010).
  15. Nathan, C. Neutrophils and immunity: challenges and opportunities. Nat. Rev. Immunol. 6, 173-182 (2006).
  16. Soehnlein, O., Lindbom, L., Weber, C. Mechanisms underlying neutrophil-mediated monocyte recruitment. Blood. 114, 4613-4623 (2009).
  17. Wilhelmsen, K., Mesa, K. R., Prakash, A., Xu, F., Hellman, J. Activation of endothelial TLR2 by bacterial lipoprotein upregulates proteins specific for the neutrophil response. Innate Immun. 18, 602-616 (2012).
  18. Haugland, R. P., Johnson, I. D., Basey, A. . The Handbook: A Guide to Fluorescent Probes and Labelling Technologies. , (2005).
  19. Shin, H. S., et al. Bacterial lipoprotein TLR2 agonists broadly modulate endothelial function and coagulation pathways in vitro and in vivo. J. Immunol. 186, 1119-1130 (2011).
  20. Wilhelmsen, K., Mesa, K. R., Lucero, J., Xu, F., Hellman, J. ERK5 protein promotes, whereas MEK1 protein differentially regulates, the Toll-like receptor 2 protein-dependent activation of human endothelial cells and monocytes. J. Biol. Chem. 287, 26478-26494 (2012).
  21. Pober, J. S., Sessa, W. C. Evolving functions of endothelial cells in inflammation. Nat. Rev. Immunol. 7, 803-815 (2007).
  22. Oh, H., Siano, B., Diamond, S. Neutrophil isolation protocol. J. Vis. Exp. (17), e745 (2008).
  23. Nuzzi, P. A., Lokuta, M. A., Huttenlocher, A. Analysis of neutrophil chemotaxis. Methods Mol. Biol. 370, 23-36 (2007).
  24. Garcia-Garcia, E., Uribe-Querol, E., Rosales, C. A simple and efficient method to detect nuclear factor activation in human neutrophils by flow cytometry. J. Vis. Exp. (74), e50410 (2013).
  25. Kuma, Y., et al. BIRB796 inhibits all p38 MAPK isoforms in vitro and in vivo. J. Biol. Chem. 280, 19472-19479 (2005).
  26. Westra, J., Kuldo, J. M., van Rijswijk, M. H., Molema, G., Limburg, P. C. Chemokine production and E-selectin expression in activated endothelial cells are inhibited by p38 MAPK (mitogen activated protein kinase) inhibitor RWJ 67657. International Immunopharmacology. 5, 1259-1269 (2005).
  27. Leeuwenberg, J. F., Jeunhomme, G. M., Buurman, W. A. Adhesion of polymorphonuclear cells to human endothelial cells. Adhesion-molecule-dependent, and Fc receptor-mediated adhesion-molecule-independent mechanisms. Clinical and Experimental Immunology. 81, 496-500 (1990).
  28. Akeson, A. L., Woods, C. W. A fluorometric assay for the quantitation of cell adherence to endothelial cells. Journal of Immunological Methods. 163, 181-185 (1993).
  29. Vaporciyan, A. A., Jones, M. L., Ward, P. A. Rapid analysis of leukocyte-endothelial adhesion. Journal of Immunological Methods. 159, 93-100 (1993).
  30. De Clerck, L. S., Bridts, C. H., Mertens, A. M., Moens, M. M., Stevens, W. J. Use of fluorescent dyes in the determination of adherence of human leucocytes to endothelial cells and the effect of fluorochromes on cellular function. Journal of Immunological Methods. 172, 115-124 (1994).
  31. Bevilacqua, M. P., Pober, J. S., Wheeler, M. E., Cotran, R. S., Gimbrone, M. A. Interleukin 1 acts on cultured human vascular endothelium to increase the adhesion of polymorphonuclear leukocytes, monocytes, and related leukocyte cell lines. The Journal of Clinical Investigation. 76, (1985).
  32. Schleimer, R. P., Rutledge, B. K. Cultured human vascular endothelial cells acquire adhesiveness for neutrophils after stimulation with interleukin 1, endotoxin, and tumor-promoting phorbol diesters. J. Immunol. 136, 649-654 (1986).
  33. Gamble, J. R., Harlan, J. M., Klebanoff, S. J., Vadas, M. A. Stimulation of the adherence of neutrophils to umbilical vein endothelium by human recombinant tumor necrosis factor. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 82, 8667-8671 (1985).
  34. Braut-Boucher, F., et al. A non-isotopic, highly sensitive, fluorimetric, cell-cell adhesion microplate assay using calcein AM-labeled lymphocytes. Journal of Immunological Methods. 178, 41-51 (1995).
  35. Ait-Oufella, H., Maury, E., Lehoux, S., Guidet, B., Offenstadt, G. The endothelium: physiological functions and role in microcirculatory failure during severe sepsis. Intensive Care Medicine. 36, 1286-1298 (2010).
  36. Andonegui, G., et al. Endothelium-derived Toll-like receptor-4 is the key molecule in LPS-induced neutrophil sequestration into lungs. The Journal of Clinical Investigation. 111, 1011-1020 (2003).
  37. Sharma, J., et al. Lung endothelial cell platelet-activating factor production and inflammatory cell adherence are increased in response to cigarette smoke component exposure. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 302, L47-L55 (2012).
  38. Deban, L., Correale, C., Vetrano, S., Malesci, A., Danese, S. Multiple pathogenic roles of microvasculature in inflammatory bowel disease: a Jack of all trades. The American Journal of Pathology. 172, 1457-1466 (2008).
  39. Gross, W. L., Trabandt, A., Csernok, E. Pathogenesis of Wegener's granulomatosis. Annales de Medecine Interne. 149, 280-286 (1998).
  40. Chen, Y., et al. Evidence of inflammatory cell involvement in brain arteriovenous malformations. Neurosurgery. 62, 1340-1349 (2008).
  41. Martens, C. L., et al. Peptides which bind to E-selectin and block neutrophil adhesion. J. Biol. Chem. 270, 21129-21136 (1995).

Play Video

Citer Cet Article
Wilhelmsen, K., Farrar, K., Hellman, J. Quantitative In vitro Assay to Measure Neutrophil Adhesion to Activated Primary Human Microvascular Endothelial Cells under Static Conditions. J. Vis. Exp. (78), e50677, doi:10.3791/50677 (2013).

View Video