Summary

不定冠詞<em>インビトロ</emヒトマクロファージの分化と偏光の不均一性を研究するために>モデル

Published: June 12, 2013
doi:

Summary

単球由来のマクロファージは自然免疫系の重要な細胞である。ここでは、使用して簡単に説明する<em> in vitroで</emこれらの細胞を生成するために>モデル。勾配遠心分離、負ビーズ単離および特異的な細胞培養条件を使用して、単球由来マクロファージは、表現型および機能的研究のために生成することができる。

Abstract

単球由来マクロファージは自然免疫系の重要な細胞型を表す。マクロファージ生物学を勉強して、マウスのモデルは、マウスおよびヒト単球由来マクロファージの間で表現型および機能の違いに苦しんでいます。したがって、我々はここでin vitroモデル初代ヒトマクロファージを生成して勉強するについて説明します。簡単に言えば、前腕静脈から引き出さ末梢血の密度勾配遠心分離後、単球は、負磁気ビーズ分離を使用して末梢血単核細胞から単離される。これらの単球は、その後、マクロファージの分化又は異なる種類の偏光を誘導するように特定の条件の下で6日間培養する。モデルは使いやすく、マウスと人間の間に種特異的な違いに起因する問題を回避。また、不死化細胞株の使用よりもインビボ条件下に近い。結論として、ここで説明するモデルはmacrophag勉強するのに適している電子生物学は、病気のメカニズムと新規治療標的を識別します。にもかかわらず、完全に死後得動物やヒト組織を用いた実験を交換しない、ここで説明するモデルは、病気のメカニズムや様々なヒト疾患との関連性が高いかもしれない治療標的の同定と検証を可能にします。

Introduction

単球由来のマクロファージは自然免疫系の重要な細胞成分を表し、多くの急性または慢性炎症プロセス1に貢献しています。マクロファージは、アテローム性動脈硬化症や癌2のような多くの炎症性疾患において重要な役割を果たしている。マクロファージは、可塑性の高度を示し、局所微小環境3に応じて、異なる表現型を想定することができます。したがって、マクロファージの分化と異質性を研究することは、多くの疾患の病態生理学の知識を増大させるために不可欠であり、新たな治療標的とする新規治療法の開発の識別を可能にする。

多くの場合、マウスモデルは、特定の疾患の病態を研究するために使用される。しかし、マウスモデルを用いたマクロファージ生物学を勉強するいくつかの欠点が付属しています:(1)peripにおける白血球サブセット数の割合( すなわち、単球および顆粒球)マウスやヒトのheral血がかなりマウスおよびヒトの病態生理における単球のさまざまな役割を示唆しているとは異なります。 (2)健康および疾患4の間に、それらの機能の実質的な差異を示唆するマウスおよびヒト末梢血単核球との間の遺伝子発現の実質的な違いがある。 (3)マウス単球およびマクロファージを識別するために使用されるマーカーの数(F4/80、LYC など )、ヒト状況にマウスモデルにおいて調査結果の転送はむしろ困難になる、ヒト骨髄細胞には存在しない。

したがって、ヒトの疾患におけるマクロファージの分化と異質の理解を高めるために、我々は、ヒトマクロファージでの作業モデルを利用する必要がある。したがって、我々は、ここで使用することは簡単ですし、別のマクロファージPOの結果、様々な条件下でのin vitroでのヒト単球由来マクロファージの研究を可能にするヒト初代マクロファージ世代のモデルを記述larizationタイプ。いくつかの研究において、我々は、マクロファージ生物学および5-7ヒトアテローム性動脈硬化症への潜在的な関連性を分析するために単球由来の初代ヒトマクロファージのin vitroモデルにおいて使用している。

にもかかわらず、完全に死後得動物やヒト組織を用いた実験を交換しない、ここで説明するモデルは、病気のメカニズムや様々なヒト疾患との関連性が高いかもしれない治療標的の同定と検証を可能にします。

Protocol

1。プロトコル次のようにバッファを準備します。 PBMCの分離のためのバッファを準備します。PBS中= 0.02%EDTAを(使用0.5 M EDTA) "バッファを洗う"。 単離のためにバッファを準備します。 "MACSすすぎバッファ" = 0.5%BSA(250 mg)を+ 2mMのEDTA(200μlの)+ PBS(50ミリリットル)。ドガバッファ。 "FACSバッファー" PBS中= 10%FCSと "固定バッファ&quo…

Representative Results

上記のプロトコルを使用して、我々は日常的に25.1×10 6±2.2×10 6 monocytes/100 mlの血液を(26の独立した実験の平均値±標準誤差、 図1A)を取得。 CD14のためにフローサイトメトリー染色によって決定された単球純度は日常的に、95%以上(97.1±0.4%、3つの独立した実験、 図1Bからの平均±標準誤差)である。トリパンブルー染色により決定される新たに単離した単…

Discussion

単球由来マクロファージは自然免疫系の主要な細胞型を表す。それらは、アテローム性動脈硬化症または癌2を含む多くの炎症性疾患において重要な役割を果たす。したがって、マクロファージ生物学を研究することは、多くの疾患の病態生理に知識を増大させるために不可欠であり、新規な治療法の開発を可能にする。

多くの研究は、マウスモデルの過剰発現?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

私たちは、優れた技術支援のためナディーンのWambsganssに感謝。この作品は、CAGにイノベーション基金FRONTIER(ハイデルベルク大学)からの助成金によってドイツ学術振興(GL599/1-1)からの助成金によって部分的にサポートされていました

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
50 ml centrifuge tube (sterile) Fisher 055398  
D-PBS (1X), liquid (no calcium or magnesium) Invitrogen 14190-250  
EDTA Sigma T9285  
BSA Sigma A-8806  
FCS Invitrogen    
EasySep Human Monocyte Enrichment Kit StemCell Technologies 19059  
EasySep Magnet StemCell Technologies 18000  
FACS tubes Fisher 352008  
Macrophage-SFM (1X) Invitrogen 12065-074  
Penicillin-streptomycin Sigma P-4458  
Nutridoma-SP Roche 11011375001  
human M-CSF 10 μg Peprotech 300-25  
Cell Culture Plates 6-well Fisher 07-200-80  

References

  1. Gordon, S., Taylor, P. R. Monocyte and macrophage heterogeneity. Nat. Rev. Immunol. 5, 953-964 (2005).
  2. Gordon, S., Mantovani, A. Diversity and plasticity of mononuclear phagocytes. European Journal of Immunology. 41, 2470-2472 (2011).
  3. Martinez, F. O., Sica, A., Mantovani, A., Locati, M. Macrophage activation and polarization. Front. Biosci. 13, 453-461 (2008).
  4. Ingersoll, M. A., et al. Comparison of gene expression profiles between human and mouse monocyte subsets. Blood. 115, 10-19 (2010).
  5. Gleissner, C. A., Sanders, J. M., Nadler, J., Ley, K. Upregulation of aldose reductase during foam cell formation as possible link among diabetes, hyperlipidemia, and atherosclerosis. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 28, 1137-1143 (2008).
  6. Gleissner, C. A., et al. CXCL4 downregulates the atheroprotective hemoglobin receptor CD163 in human macrophages. Circ. Res. , (2009).
  7. Gleissner, C. A., Shaked, I., Little, K. M., Ley, K. CXC chemokine ligand 4 induces a unique transcriptome in monocyte-derived macrophages. J. Immunol. 184, 4810-4818 (2010).
  8. Martinez, F. O., Gordon, S., Locati, M., Mantovani, A. Transcriptional profiling of the human monocyte-to-macrophage differentiation and polarization: New molecules and patterns of gene expression. J. Immunol. 177, 7303-7311 (2006).
  9. Verreck, F. A. W., et al. Human il-23-producing type 1 macrophages promote but il-10-producing type 2 macrophages subvert immunity to (myco)bacteria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 4560-4565 (2004).
  10. Rey-Giraud, F., Hafner, M., Ries, C. H. In vitro generation of monocyte-derived macrophages under serum-free conditions improves their tumor promoting functions. PLoS One. 7, e42656 (2012).
  11. Boyle, J. J., et al. Coronary intraplaque hemorrhage evokes a novel atheroprotective macrophage phenotype. American Journal of Pathology. 174, 1097-1108 (2009).
  12. Cho, H. J., et al. Induction of dendritic cell-like phenotype in macrophages during foam cell formation. Physiol Genomics. 29, 149-160 (2007).
  13. Vogt, G., Nathan, C. In vitro differentiation of human macrophages with enhanced antimycobacterial activity. The Journal of Clinical Investigation. 121, 3889-3901 (2011).
  14. Mikita, T., Porter, G., Lawn, R. M., Shiffman, D. Oxidized low density lipoprotein exposure alters the transcriptional response of macrophages to inflammatory stimulus. Journal of Biological Chemistry. 276, 45729-45739 (2001).
  15. Qin, Z. Y. The use of THP-1 cells as a model for mimicking the function and regulation of monocytes and macrophages in the vasculature. Atherosclerosis. 221, 2-11 (2012).
  16. Daigneault, M., Preston, J. A., Marriott, H. M., Whyte, M. K. B., Dockrell, D. H. The identification of markers of macrophage differentiation in pma-stimulated THP-1 cells and monocyte-derived macrophages. PLoS One. 5, e8668 (2010).
  17. Wahl, L. M., Wahl, S. M., Smythies, L. E., Smith, P. D. Isolation of human monocyte populations. Current Protocols in Immunology. , (2001).
  18. Waldo, S. W., et al. Heterogeneity of human macrophages in culture and in atherosclerotic plaques. Am. J. Pathol. 172, 1112-1126 (2008).
  19. Martín-Fuentes, P., et al. Individual variation of scavenger receptor expression in human macrophages with oxidized low-density lipoprotein is associated with a differential inflammatory response. The Journal of Immunology. 179, 3242-3248 (2007).

Play Video

Citer Cet Article
Erbel, C., Rupp, G., Helmes, C. M., Tyka, M., Linden, F., Doesch, A. O., Katus, H. A., Gleissner, C. A. An In vitro Model to Study Heterogeneity of Human Macrophage Differentiation and Polarization. J. Vis. Exp. (76), e50332, doi:10.3791/50332 (2013).

View Video