Summary

Visualizzazione delle risposte tossina batterica provocata con diretta microscopia a fluorescenza cellulare

Published: October 01, 2012
doi:

Summary

Metodi per purificare il colesterolo vincolante tossina streptolisina O ricombinante da<em> E. coli</em> E visualizzazione di tossina legarsi a vivere cellule eucariotiche sono descritti. Erogazione localizzata di tossina induce cambiamenti rapidi e complessi nelle cellule bersaglio che rivelano nuovi aspetti della biologia tossina.

Abstract

Tossine batteriche legano al colesterolo nelle membrane, formando pori che permettono la fuoriuscita di contenuto cellulare e afflusso di materiali dall'ambiente esterno. La cella può recuperare da questo insulto, che richiede processi di riparazione membrane attive, oppure muoiono a seconda della quantità di esposizione tossina e tipo cellulare 1. Inoltre, queste tossine indurre forti risposte infiammatorie in host infetti attraverso l'attivazione di cellule immunitarie, compresi i macrofagi, che producono una matrice di citochine pro-infiammatorie 2. Molti batteri Gram-positivi producono colesterolo vincolante tossine che hanno dimostrato di contribuire alla loro virulenza attraverso meccanismi in gran parte non ancora caratterizzati.

Alterazioni morfologiche della membrana plasmatica di cellule esposte a tali tossine includere il sequestro in colesterolo arricchiti protuberanze superficiali, che può essere versato nello spazio extracellulare, suggerendo una difesa intrinseca cellulareMeccanismo 3,4. Questo processo si verifica in tutte le cellule in assenza di attività metabolica, e possono essere visualizzati utilizzando EM dopo 4 chimica fissazione. In cellule immunitarie quali macrofagi che mediano l'infiammazione in risposta all'esposizione tossina, vescicole di membrana indotte sono suggeriti per contenere citochine della famiglia IL-1 e può essere responsabile sia spargimento tossina e diffondere queste citochine pro-infiammatorie 5,6,7. Un collegamento tra IL-1β rilascio e un tipo specifico di morte cellulare, pyroptosis chiamato è stato suggerito, in quanto entrambi sono processi caspasi-1 8 dipendenti. Per risolvere la complessità di questa risposta dei macrofagi, che comprende vincolante tossina, spargimento di vescicole di membrana, rilascio di citochine, e la morte delle cellule potenzialmente, abbiamo sviluppato le tecniche di etichettatura e metodi di microscopia a fluorescenza che consentono la visualizzazione in tempo reale della tossina cellule interazioni, tra cui misurazioni di disfunzioni e morte (Figura 1). Utilizzaredi imaging cellulare dal vivo è necessario a causa di limiti di altre tecniche. Approcci biochimici non possono risolvere effetti che si verificano in cellule individuali, mentre citofluorimetria non offre alta risoluzione, visualizzazione in tempo reale delle singole celle. I metodi qui descritti possono essere applicati ad analisi cinetica delle risposte indotte da altri stimoli implicano complesse variazioni fenotipiche nelle cellule.

Protocol

1. Purificazione di streptolisina O (SLO) Inoculare 20 ml di coltura overnight cellule BL21 ORO contenenti plasmide pBADgIII-SLOhis 9 in 0,5 L di brodo LB e aggiungere 500 microlitri 50 mg / ml ampicillina. Agitare coltura a 225 rpm a 37 ° C fino a OD 600 = 0,6, di solito ~ 1,5 hr. Centrifugare 1 batteri ml (considerato T 0) a 10.000 xg 5 minuti, sciogliere pellet in 140 microlitri 1x tampone campione SDS / 1 OD e sonicare al DNA di taglio per l'analisi delle proteine ​…

Representative Results

Tipicamente 10 7 -10 8 U / ml SLO può essere ottenuta con una concentrazione proteica di 4 mg / ml. La quantità di tossina necessaria per lisi cellulare varia con il tipo cellulare, ma di solito è 125-500 U / ml SLO (Figura 2B). Tipi di cellule, come macrofagi può essere più resistenti (4000 U / ml) se altri (linee cellulari T specialmente) sono più sensibili. Queste sensibilità corrispondono SLO disponibile in commercio. Tossina attività diminuisce di circa 2 volte con ogn…

Discussion

Le tecniche qui descritte consentono l'esame delle risposte delle cellule immunitarie di tossine batteriche. La fase più critica è la manipolazione e somministrazione della tossina. Attività tossina può essere estremamente variabile, anche tra differenti aliquote del preparato stesso, per la sua fragilità. Ciò richiede sia la prova di ogni aliquota di tossina contro una linea cellulare di riferimento o globuli rossi o utilizzando gradienti tossina. Gradienti di tossina, come espresso dal micropipetta, permetto…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori desiderano ringraziare Richard Riposo per il dono generoso di anthrolysin O, Michael Caparon per il generoso dono dei Franchi SLO plasmide e Jonathon per l'assistenza tecnica. Questo lavoro è stato finanziato dal NIH sovvenzioni T32CA82084 (PAK), e R01AI072083 (RDS).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Ni-NTA agarose Qiagen 30210
polymixin-agarose Sigma P1411-5ML
Zeba Desalt Spin col Fisher PI-89891
sheep RBCs Fisher 50-415-688
pBADgIII-SLO N/A N/A see ref9
Cy5 monoreactive dye GE Healthcare PA25001
Fura2-AM Life Technologies F1221
Calcein AM/ Ethidium homodimer Life Technologies L3224
Anti-CD11c-APC BD Biosciences 550261
collagen-coated glass-bottom dish Mattek P35GCol-1.5-10-C
femto-tip II Fisher E5242957000
Microloader Fisher E5242956003
dextran Alexa 555 Life Technologies D34679
Injectman NI 2 Eppendorf 920000029
FemtoJet Eppendorf 5247 000.013

Table 1. List and source of specific reagents and equipment needed. Specific equipment and reagents used in this protocol, along with company and catalogue number are listed.

Buffer Composition Step Used
Lyse/Wash 50 mM NaH2PO4
300 mM NaCl
10 mM imidazole, pH 8.0
1.4
Tris/salt 50 mM Tris, pH 8.0
300 mM NaCl
1.7
Elution buffer 50 mM Tris, pH 8.0
300 mM NaCl
250 mM imidazole
1.8
RBC Assay buffer 0.3% BSA
2 mM CaCl2
10 mM HEPES, pH 7.4
2.1
buffer R/B RPMI cell culture medium
2 mM CaCl2
0.5% BSA
3.1

Table 2. List of buffers used in this protocol. The buffers used, their composition and the first step at which they are used in the protocol are listed.

References

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Citer Cet Article
Keyel, P. A., Heid, M. E., Watkins, S. C., Salter, R. D. Visualization of Bacterial Toxin Induced Responses Using Live Cell Fluorescence Microscopy. J. Vis. Exp. (68), e4227, doi:10.3791/4227 (2012).

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