Ziel ist es, die mitochondriale Redoxzustand isolierten Herzen im Rahmen der physiologischen und Nachlast Drücke überwachen. Ein biventrikulären arbeiten Kaninchen Herzen Modell vorgestellt. Örtlichen und zeitlichen Auflösung Fluoreszenz-Bildgebung von NADH wird verwendet, um die mitochondriale Redoxzustand Epikardgewebe überwachen.
Seit der Gründung von Langendorff 1, bleibt die isoliert perfundierten Herzen ein prominentes Werkzeug zur Untersuchung der kardialen Physiologie 2. Es wird jedoch nicht für die Untersuchung der kardialen Metabolismus, die das Herz auf der Arbeit im Kontext der physiologischen Vor-und Nachlast Druck durchzuführen erfordern gut geeignet. Neely eingeführt Modifikationen an der Langendorff-Technik, um entsprechende linksventrikulären (LV) Vor-und Nachlast Druck 3 zu etablieren. Das Modell ist als die isolierte LV Arbeits-Herz-Modell bekannt und wurde ausgiebig auf Leistung und Stoffwechsel LV 6.4 Studie verwendet. Dieses Modell, jedoch nicht, eine richtig geladen rechte Ventrikel (RV). Demmy et al. ersten berichteten von einer biventrikulären Modell als eine Modifikation des LV Arbeiten Herzmodell 7, 8. Sie fanden, dass das Schlagvolumen, Herzzeitvolumen, und der Druck in der Entwicklung von Herz-Modus zu arbeiten LV biventrikulären Arbeitsmodus 8 konvertiert verbessert </sup>. Ein ordnungsgemäß geladen RV verringert sich ebenfalls abnorme Druckgradienten über dem Septum zu Septum-Funktion zu verbessern. Biventrikulären arbeiten Herzen hat sich gezeigt, Aorten-Ausgang, Lungen fließen, bedeuten Aortendruck, Herzfrequenz und myokardialen ATP-Spiegel für bis zu 3 Stunden 8 zu halten.
Bei der Untersuchung der metabolischen Wirkungen von myokardialer Verletzung, wie Ischämie, ist es oft notwendig, um die Position des betroffenen Gewebes zu ermitteln. Dies kann durch Abbilden erfolgen die Fluoreszenz von NADH (die reduzierte Form von Nikotinamidadenindinukleotid) 9-11, vor ein Coenzym in großen Mengen in den Mitochondrien. NADH-Fluoreszenz (fNADH) einen in der Nähe linear inverse Beziehung zu den lokalen Sauerstoffkonzentration 12 und liefert ein Maß für mitochondriale Redoxzustand 13. fNADH Bildgebung während hypoxischen ischämischen Zuständen und als Farbstoff-freies Verfahren verwendet worden, um hypoxischen Regionen 14, 15 zu identifizieren und um das Fortschreiten der Überwachunghypoxischen Bedingungen im Laufe der Zeit 10.
Das Ziel der Methode ist die mitochondriale Redoxzustand biventrikulären arbeiten Herzen während der Protokolle, die die Rate der Myozyten-Stoffwechsel verändern oder zu veranlassen Hypoxie oder erstellen Sie eine Kombination aus beiden zu überwachen. Herz aus weißen Neuseeland-Kaninchen wurden zu einem biventrikulären arbeiten Herzen System (Hugo Sachs Elektronik) angeschlossen und perfundiert mit modifiziertem Krebs-Henseleit-Lösung 16 bei 37 ° C Aorten-, LV, Lungenarterie, und links und rechts atriale Drücke aufgezeichnet wurden. Die elektrische Aktivität wurde unter Verwendung eines monophasischen Aktionspotentials Elektrode. Um das Bild zu fNADH wurde Licht von einer Quecksilberlampe gefiltert (350 ± 25 nm) und verwendet, um das Epikard zu beleuchten. Emittierte Licht wurde filtriert (460 ± 20 nm) und abgebildet werden mit Hilfe einer CCD-Kamera. Änderungen in der epikardialen fNADH der biventrikulären arbeiten Herzen bei verschiedenen Herzfrequenzen werden vorgestellt. Die Kombination des Herzens Modell und fNADH Bildgebungbietet ein neues und wertvolles experimentelles Werkzeug zur Untersuchung von akuten kardialen Pathologien im Zusammenhang mit realistischen physiologischen Bedingungen.
Die isolierte Langendorff perfundierte Herz bleibt ein prominentes Werkzeug zur Untersuchung der kardialen Physiologie 2. Es ist besonders nützlich in Studien von Herzrhythmusstörungen, insbesondere solchen, die Fluoreszenz-Bildgebung der Transmembranpotential 20 zu verwenden. Ein Vorteil ist, dass die gesamte Epikard des isolierten Herzen 21, 22 beobachtet werden kann. Ein weiterer Vorteil ist, dass, im Gegensatz zu Blut, Perfusion mit einer klaren kristalloiden Pufferlösung nicht mit Fluoreszenz-Signale stören. Eine Einschränkung ist, dass die Langendorff-Technik nicht für die Untersuchung der kardialen Metabolismus, die oft das Herz, die Arbeit im Rahmen der physiologischen und Nachlast Druck durchzuführen gut geeignet.
Um die Relevanz von isolierten Herzen Vorbereitungen für metabolische Studien, Neely eingeführt Modifikationen an der Langendorff-Technik, um entsprechende linksventrikulären (LV) Vor-und Nachlast Druck 3 etablieren zu erheben.Das Modell ist als die isolierte LV Arbeits-Herz-Modell bekannt und wurde ausgiebig auf Leistung und Stoffwechsel LV 6.4 Studie verwendet. Der LV Arbeits Herz-Modell ist besser als die Langendorff Modell für funktionelle Auswertungen, aber es bietet keine ordnungsgemäß geladen rechten Herzkammer (RV). Demmy et al. ersten berichteten von einer biventrikulären Modell (LV & RV) als Modifikation des LV Arbeiten Herzmodell 7, 8. Sie fanden, dass das Schlagvolumen, Herzzeitvolumen, und der Druck in der Entwicklung von Herz-Modus zu arbeiten LV biventrikulären Arbeitsmodus 8 konvertiert verbessert. Ein ordnungsgemäß geladen RV verbessert auch die septalen Funktion durch Verminderung abnormalen Druckgradienten über der Scheidewand. Biventrikulären arbeiten Herzen hat sich gezeigt, Aorten-Ausgang, Lungen fließen, bedeuten Aortendruck, bedeuten pulmonalen Blutdruck, Herzfrequenz und myokardialen ATP und Kreatinphosphat Ebenen für bis zu 3 Stunden 8 zu halten. Biventrikulären arbeiten Herzen Studien verwenden in der Regel Herzen from kleine Tiere wie Ratten und Kaninchen, weil die Herzleistung und das erforderliche Volumen des Perfusat viel geringer als für Herzen von größeren Tieren sind. Allerdings haben biventrikulären arbeiten Herzen Studien durchgeführt, mit Herzen von Schweinen, Hunden und sogar Menschen 23, 24.
Die metabolischen Bedarf von isolierten Herzen in biventrikulären Arbeitsmodus ist wesentlich höher als die der Langendorff-Perfusion. Es ist wichtig, dass das Perfusat Lösung genug Sauerstoff und metabolischen Substrat biventrikulären Herzfunktion zu unterstützen. Standard-kristalloiden Pufferlösungen, wie Krebs-Henseleit-16, 17, 25 oder Tyrodes 26, 27 haben Sauerstofflöslichkeiten so hoch wie 5,6 mg / L. Wenn diese Lösungen mit Carbogen (ein Gas Mischung aus 95% O 2 und 5% CO 2) werden vergast und enthalten geeignete metabolischen Substrat (Glucose, Dextrose, und / oder Natriumpyruvat), sind sie geeignet für biventrikulären arbeiten Herzen schlagen in Normal Sinus Preise (ca. 180 bpm für ein Kaninchen).
Metabolische steigender Nachfrage für schnelle Rhythmen und die Menge an Sauerstoff in Standard Perfusaten gelöst möglicherweise nicht genug, um vollständige Unterstützung für eine biventrikuläre arbeiten Herz, das bei hohen schrumpft. Kristalloiden Pufferlösungen mit Erythrozyten oder gemischt mit Vollblut haben in der Arbeit Herzen Präparate verwendet worden, um ausreichend Sauerstoff Verfügbarkeit zu gewährleisten. Frühere Studien haben gezeigt, dass das Hinzufügen Erythrozyten zu einer Krebs-Henseleit-Lösung der Verbesserung der Arbeitsbedingungen Herzfunktion während strenge Stimulation Protokolle und auch die Häufigkeit von Kammerflimmern 16. Eine Einschränkung der Verwendung von Erythrozyten oder Mischungen aus Vollblut ist, dass Hämoglobin wird Lichtwellenlängen, die für die Fluoreszenz-Bildgebung 13 verwendet werden. Andere Substrate, wie Albumin, kann auch gegeben, um Lösungen zu Herzen Perfusat Lebensfähigkeit zu verlängern und die Ödeme 28 steht.
Während der Fluoreszenz-Bildgebung die Intensität des Anregungslichts hoch sein sollte und die Lichtverteilung sollten einheitlich sein. Eine gleichmäßige Beleuchtung ist nicht immer einfach aufgrund der Krümmung der epikardialen Oberfläche. In unseren Studien haben wir Bild fNADH durch Filterung Licht (350 ± 25 nm) von einer Quecksilberlampe. Verzweigter Lichtleiter wird verwendet, um die UV-Licht auf der epikardialen Oberfläche zu leiten. Einheitliche Beleuchtung kann durch entsprechende Positionierung der beiden Ausgangs Aderendhülsen erreicht werden. UV-LED-Lichtquellen ebenfalls verwendet werden, wie wir in 3 gezeigt haben. LED-Quellen sind relativ billig, so dass mehrere Quellen könnten in ein bildgebendes System aufzunehmen. LEDs können auch geradelt werden ein-und ausschalten mit hohen Raten an Anregungslicht mit der Bildaufnahme synchronisiert werden.
Photobleichen von NADH sollte 29 durch Reduzierung der Zeit von Gewebe Beleuchtung minimiert werden. Dies kann durch Radfahren die Beleuchtung ein-und ausschalten mit einem Elektronenmikroskop durchgeführt werdenIC-Shutter und eine Lampe oder mit einer LED-Beleuchtungssystem und einem Controller. Falls die Beleuchtung mit dem Herzzyklus synchronisiert ist, dann fNADH Bildaufnahme kann der Diastole beschränkt werden, was Bewegungsartefakt in der Fluoreszenz-Signale zu reduzieren. Ausschaltpunkt Beleuchtung und die Bildaufnahme unter Verwendung eines Drucksignals, wie LV-Druck, wäre eine Möglichkeit, dies zu tun.
In unseren Studien haben wir festgestellt, dass Veränderungen in fNADH pro Zeiteinheit mehr sein kann als 5X höher bei 400 bpm als bei 200 bpm. Dies deutet darauf hin, dass schnelle Rhythmen der Redox-Zustand des Herzens zu erhöhen. Ob dies durch Hypoxie oder die Unfähigkeit von Myozyten, NADH zu NAD zu oxidieren verursacht + schnell genug, um die Akkumulation von NADH zu vermeiden, ist noch nicht geklärt.
Die Leistung eines biventrikulären Herz arbeitet Vorbereitung ist abhängig von mehreren Faktoren ab. Eine der wichtigsten besteht darin, geeignete Vor-und Nachlast Druck gesetzt, um die physiologische nachahmenBedingungen, die der Untersuchung sind. Insbesondere müssen die LV-Nachlast (Aortendruck) eingestellt werden, um systemische Druck vertreten werden. Wenn sie zu hoch ist, wird die LV nicht in der Lage, den Druck zu überwinden, was zu Aufstoßen. Der Druck, der zu niedrig ist, wirken sich nachteilig auf Koronarperfusion. Der LV Vorspanndruck (linken atrialen Druck) ebenfalls eingestellt, um eine enddiastolischen Volumen, die für das experimentelle Protokoll bereitzustellen.
fNADH Abbildung von lebenden Gewebes ist eine etablierte Art der Fluoreszenz-Imaging-13. Seine Anwendung auf Herzgewebe wurde von Barlow und Chance dargestellt, wenn sie von markanten Erhebungen fNADH innerhalb regional ischämischen Gewebe nach Ligatur eines Herzkranzgefäßes 14 berichtet. Ihre Bilder wurden auf fNADH Film mit einem Oszilloskop Fairchild Kamera-und UV-Blitzfotografie aufgezeichnet. Coremans et al. erweitert auf diesem Konzept mit der NADH Fluoreszenz / UV-Reflexion Verhältnis zu Messe der metabolischen Zustand des Epikard von Langendorff Blut-perfundierten Rattenherzen 30. Ein videofluorimeter wurde für die Bildgebung verwendet und Daten wurde mit einem Videorecorder. Später, Scholz et al. verwendet einen Spektrographen und der Photodiode Array durchschnittliche fNADH aus einem großen Bereich des LV zu messen. Dieser Ansatz reduziert die Auswirkungen der epikardialen Fluoreszenz Heterogenitäten und lokale Varianten im Umlauf, während enthüllen makroskopischen arbeitsbedingte Variationen fNADH 31. Dieser Ansatz ist ähnlich Computing durchschnittliche fNADH Ebenen für eine Region von Interesse in allen Frames eines fNADH Bilddatenstatz, wie in 2 dargestellt. Wie wir in diesem Artikel vorgestellt haben, bietet die heutige Technologie High-Speed-CCD-Kameras und digital gesteuerte Hochleistungs-UV-Strahlern. Diese Technologien ermöglichen die räumlich-zeitliche Dynamik der fNADH und Herz-Stoffwechsel in den Genuss vieler neuer Perspektiven untersucht werden. Die relativ geringe Kosten bei der die Optik und die Lichtquelle ist fNADH Bildgebung ein nützliches Zubehör für die konventionelle Herz-optische Mapping-Systeme. 9, 32
The authors have nothing to disclose.
Diese Arbeit wurde durch ein Stipendium der NIH (R01-HL095828 zu Kay MW) unterstützt.
Chemical | Company | Catalogue Number |
NaCl | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | S-3014 |
KCl | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | P3911-500G |
CaCl2 | Fisher Scientific, Fair Lawn, NJ | C77-500 |
MgSO4 | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | M-7506 |
NaHCO3 | Fisher Scientific, Fair Lawn, NJ | S-233 |
KH2PO4 | Fisher Scientific, Fair Lawn, NJ | 423-316 |
Glucose | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | 158968-500G |
NaPyruvate | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | P2256-25G |
Albumin | Sigma-Aldrich, St. Louis, MO | A9418-100G |