Summary

דיפוזיה Exocytosis לרוחב של חלבונים בממברנה של נוירונים בתרבית הוערכה באמצעות שחזור פלואורסצנציה Fluorescence מסופקים Photobleaching

Published: February 29, 2012
doi:

Summary

דו"ח זה מתאר את השימוש הדמיה תא חי וטכניקות photobleach לקבוע את הבעת פני, מסלולי תחבורה קינטיקה סחר exogenously GFP-מתוייגים הביע pH רגיש, חלבונים על הממברנה של נוירונים.

Abstract

<p class="jove_content"> חלבונים ממברנה כגון קולטנים ותעלות יונים עוברים סחר פעיל נוירונים, אשר מקוטב מאוד מורכבת מורפולוגית. זה סחר בבני מכוונת היא בעלת חשיבות ראשונה במעלה לספק, לשמור או להסיר חלבונים סינפטיים.</p><p class="jove_content"> סופר האקליפטית pHluorin (ספטמבר) היא נגזרת של ה-pH רגיש eGFP, שבו נעשה שימוש נרחב הדמיה תא חי של חלבונים פלזמה הממברנה<sup> 1-2</sup>. ב-pH נמוך, protonation של ספטמבר מקטין קליטת פוטון ומונע פליטת הקרינה. כאירועים הסחר תאיים ביותר מתרחשים תאים עם pH נמוך, שבו ספטמבר הקרינה היא האפילה, את האות הקרינה מן בספט 'מתוייגים החלבונים הוא בעיקר מן הקרום פלזמה שבו ספטמבר חשוף לסביבה pH נייטרלי תאיים. כאשר האיר על ספטמבר בעוצמה גבוהה, כמו כל צבע פלואורסצנטי, הוא photodamaged באופן בלתי הפיך (photobleached)<sup> 3-5</sup>. חשוב לציין, כי ה-pH נמוך מרווה את קליטת פוטון, רק פני השטח לידי ביטוי ספטמבר ניתן photobleached ואילו ספטמבר תאיים אינו מושפע תאורה בעוצמה גבוהה<sup> 6-10</sup>.</p><p class="jove_content"> FRAP (שחזור הקרינה לאחר photobleaching) של החלבונים המתויגים בספט 'היא טכניקה נוח ורב עוצמה להערכת הדינמיקה חלבון על קרום הפלזמה. כאשר החלבונים המתויגים fluorescently הם photobleached באזור של עניין (ROI) התאוששות הקרינה מתרחשת עקב תנועה של חלבונים ספטמבר, מתוייגים מולבן לאזור מולבן. זה יכול להתרחש באמצעות דיפוזיה לרוחב ו / או exocytosis הלא photobleached קולטנים מסופק אם על ידי<em> דה נובו</em> סינתזה או מיחזור (ראה איור. 1). חלק קטן של החלבון נייח ונייד ניתן לקבוע את הניידות קינטיקה של חלקיק diffusible יכול להיחקר בתנאי הבסיס, מגורה כגון יישום אגוניסט או גירויים עצביים כגון הפעלת NMDA או KCl יישום<sup> 8,10</sup>.</p><p class="jove_content"> אנחנו מתארים טכניקות photobleaching שנועדו סלקטיבי לדמיין את ההתאוששות של הקרינה המיוחס exocytosis. בקצרה, ההחזר על ההשקעה הוא photobleached פעם עם פרוטוקולים סטנדרטיים FRAP, ואחריו, אחרי התאוששות קצרה, חוזר על עצמו על ידי הלבנת האזורים משני צדי. פרוטוקול זה "FRAP-פליפ", שפותחה במעבדה שלנו, נעשה שימוש כדי לאפיין סחר AMPA הקולטן על הקוצים הדנדריטים<sup> 10</sup>, והוא חל על מגוון רחב של מחקרים על מנת להעריך סחר סחר exocytosis תאיים ו.</p>

Protocol

1. תרבית תאים, פרידמן וקיבל הד עולמי ויראלי, ואת ביטוי חלבון תרבות גבוהה צפיפות נוירונים בהיפוקמפוס של גורים ביום 18 (E18) עובריים להלשין על פולי-L-ליזין מצופים coverslips זכוכית עבור 14-25 ימים במבחנה (DIV). 6-24hrs לפני הניסויים חיים, תאים transduce עם וירוס Sindbis נחלש המכילים חלבון הקרום של עניין, מתויג עם סופר האקליפטית pHluorin (ספטמבר). הוסף בינוני pseudovirion המכיל ישירות coverslip המכיל 1mL של התקשורת מיזוג וחזר חממה התרבות. Titer וזמן לביטוי חלבונים לאחר התמרה ויראלית ישתנה בהתאם אצווה וירוס יש לקבוע עבור כל אצווה לפני התחלת ניסויים תא חי. 2. FRAP-FLIP תא חי דימות ציוד הגדרת העברת coverslip לחדר ההדמיה של מיקרוסקופ Axiovert Zeiss 510 LSM META confocal.כדי למזער תנודות מתח במהלך ההדמיה, להבטיח את המיקרוסקופ כבר מופעל, עם פלט לייזר 100%, לפחות 20 דקות לפני הדמיה. מיד להחליף את אמצעי עם התרבות מחומם מראש (37 ° C) הקלטה פתרון תאי המכיל 140 mM NaCl, KCl 5 מ"מ, 15 גלוקוז מ"מ, 1.5 מ"מ CaCl 2, 1.5 מ"מ MgCl 2, 20-25 HEPES מ"מ (pH מותאם 7.4 עם NaOH) ומקום קאמרית על הבמה מראש מחוממת (37 מעלות צלזיוס) של Axiovert Zeiss. להבטיח את osmolarity של פתרון ההקלטה תאי מותאם בתוך mOsM 10 בינוני התרבות שלך. אם אין אידוי משמעותית מתרחשת במהלך timecourse של הניסוי, זה הפתרון CO 2 עצמאית מתאים ניסויים קצרים (פחות מ 10 שעות). עם השלמת נתרן ביקרבונט 1-2 mM מומלץ. הגדרת פרמטרים לכידת הדמיה ראשית, לזהות את הבעת העצב Pro רקומביננטיטיין העניין ולהביא אותו אל המוקד. עם שמן 63X התנגד, לרכוש תמונה של התא כולו באמצעות עירור 488nm אור לייזר לייזר בהספק נמוך. כדי למזער photobleaching, להשתמש במהירות הנומינלית מהר (7-9) ואת פיקסלים ברזולוציה נמוכה (512-512) שמירה על מהירות סריקה הכולל <1 2. בחר חלק דנדריט לתמונה וזום ללכוד מסגרת המכילה את ההחזר על ההשקעה (~ 1.5-2.5 זום אופטי x). במידת האפשר, להבטיח שדה הראיה מכיל כמה תהליכים כדי מדידות של דנדריטים התייחסות ניתן להשיג, לקבוע אם הלא ספציפית photobleaching בשל רכישת מתרחש. התאם המסננים, חריר, מהירות סריקה רווח גלאי לאפשר הקרינה המרבית מ עירור הלייזר מינימלית אבל עם הרוויה מוגבלת. קוטר חריר גדול מומלץ, מנת למקסם אוסף פוטון (2μm מתאים קוצים והדנדריטים משולשת). צריך להיות חזק מספיק לזהות בהפרשים קטנים הקרינה,כך התמונות הראשונות, לפני לא להתגבר 10% פיקסלים רוויים. שמור התצורה הזו לשמש אקונומיקה שלאחר מראש > באיור 1. סכמטי של עקרונות FRAP לעומת FRAP כפכפי פרוטוקולים סכמטי זה מדגים את התוצאות של FRAP קבוע לעומת פרוטוקול "FRAP-פליפ", תוך שימוש בספט 'מתוייגים קולטנים. שחזור הקרינה ב FRAP המסורתית מוצגת בצד שמאל. שחזור הקרינה הנמדדת ההחזר על ההשקעה המרכזי מיוחסת לשילוב של פריץ לרוחב דיפוזיה לא photobleached קולטנים ספטמבר, מתוייגים מבחוץ ROI photobleached ואת הכניסה של קולטני באמצעות מיחזור ו / או דה נובו exocytosis לתוך פיר הדנדריטי. לעומת זאת, חוזרת ונשנית של photobleached ROIs איגוף לידי ביטוי בצד ימין, מראה עד כמה זה שונה "FRAP כפכפי" שתיקות פרוטוקול בשל התפשטות לרוחב התאוששות. לפיכך, שחזור כל הקרינה הנמדדת ניתן לייחס את ההכנסה ישירה ההחזר על ההשקעה. איור 2.הכניסה של ספטמבר-GluA2 לתוך קרום פלזמה על מוט הדנדריטי א) תא עצב בהיפוקמפוס להביע ספטמבר, GluA2, photobleached סלקטיבי יחד באזור של דנדריט. סכמטית ממחיש את האזור של דנדריט אשר צילמו, בעוד הפאנל העליון השמאלי מדגיש את ROIs כי נבחרו photobleaching. שטח גדול התאגרף לבן מולבן פעם אחת, ולאחר מכן חוזר על עצמו הלבנת האזורים משני צדי בארגזים, הדגיש עם כפולים חיצים כחולים ראשים. לוח זה מציג את דנדריט לפני photobleaching. החץ האדום מציין את ההחזר על ההשקעה מדוד, שמוצג בהגדלה גבוהה את לוחות נמוכות יותר. ב) מראה את עוצמת הקרינה ב ההחזר על ההשקעה נמדדת במשך זמן הניסוי, החליט ככל שרמת אפור ההחזר על ההשקעה (לא מנורמל). החץ השחור להדגיש timepoint של photobleach הראשוני החץ הירוק מציין את ההתחלה של photobleaching חוזר על עצמו. ΔF מציין הדואר הגדלת הקרינה נצפתה על תקופת ההחלמה, בשל הכניסה של ספטמבר-GluA2 לתוך פיר הדנדריטי. PH נמוך בעקבות ו pH 7.4 + NH 4 Cl שוטף לוודא את הקרינה התאושש מתייחס פני השטח קולטנים לידי ביטוי. איור 3. מיחזור & דיפוזיה לרוחב לעומת מחזור של ספטמבר-GluK2 על פיר הדנדריטי בעקבות הטיפול cyclohexamide א) תא עצב בהיפוקמפוס להביע ספטמבר, GluK2, photobleached סלקטיבי עם FRAP במקביל ופרוטוקולים התאוששות "FRAP כפכפי" שבוצעו לאורך ROIs הדנדריטים נפרד. תא עצב זה היה נתון המקדים עם cyclohexamide, כדי לחסום את סינתזת החלבון (2 שעות על 200 מיקרוגרם / מ"ל). סכמטית ממחיש את האזור של דנדריט אשר צילמו, ואילו לוח יד שמאל הדגשת ROIs כי נבחרו photobleaching. הדואר גדול באזור התאגרף לבן מולבן פעם אחת, ולאחר מכן חוזר על עצמו הלבנת האזורים הסמוכים, בארגזים של דנדריט נמוכה בלבד, הדגיש עם כפולים חיצים כחולים ראשים. לוח זה מציג את הדנדריטים לפני photobleaching. חיצים אדומים להדגיש את ROIs שמוצג בהגדלה גבוהה ב) הממחישות את ההתאוששות הקרינה ב FRAP המסורתית לעומת פרוטוקול "FRAP כפכפי". השוואת רמות של עוצמת הקרינה בשלב מאוחר של שחזור (לוחות שלישי) להראות את התרומה של דיפוזיה מיחזור לרוחב, לעומת מחזור לבד. C) מראה את עוצמת הקרינה ב ROIs נמדדת במשך זמן הניסוי, החליט כמו עוצמת מנורמל ערכים. החץ השחור להדגיש timepoint של photobleach הראשוני החץ הירוק מציין את ההתחלה של photobleaching חוזר על עצמו. ΔF rec מציין התאוששות זמנית עקב מיחזור הקולטן, נקבע בין דנדריט FRAP / פליפ תוך ΔFהבדל מודד את התרומה של פיזור רוחבי של ספטמבר-GluK2 לתוך פיר הדנדריטי ב 'FRAP רק "ההחזר על ההשקעה. גידול זמני ואחריו ירידה הדרגתית האות, המתאים בטווח מטה של ​​קולטני זמינים כתוצאה של טיפול cyclohexamide. PH נמוך לאחר מכן ו pH 7.4 + NH 4 Cl שוטף לוודא את הקרינה התאושש מתייחס פני השטח קולטנים לידי ביטוי.

Discussion

אנו מתארים אסטרטגיה חדשנית לחזות את מרכיבי סחר חלבון פלזמה הממברנה. גישה קומבינטורית של photobleaching טכניקות עם חלבון ספטמבר, מתויג מאפשרת סלקטיבי הכניסה פלזמה אירועים קרום להיות מוערך. לפי הרף photobleaching את החלבונים בממברנה של איגוף אזורים במהלך ההתאוששות, שיטת "FRAP כפכפי" מעריך את התרומה של סחר שלפוחי להחלמה פלואורסצנטי. זו גישה חדשנית מאפשרת הקלטה ישירה של החדרת חלבון ממברנה, המאפשרת גם את מספר תת תאים שבהם ההתאוששות הוא ציין לבין המשרעת של התאוששות (ΔF) במצב יציב שייקבע. יתר על כן, השוואה של FRAP עם ובלי פליפ מאפשר שיעור ההחלמה המיוחס דיפוזיה לרוחב להיות מחושב.

יתר על כן, בניסוי עם זאת, אזורים של דנדריט לא photobleached בסמוך לאזורים photobleached משני צדי יכול להיותהערכה איכותית במהלך ההתאוששות, אובדן פלואורסצנציה נצפו באזורים אלה יהיו בשל פיזור רוחבי של קולטנים photobleached אל אלה שאינם photobleached חלקי דנדריט.

פרוטוקול זה photobleaching סלקטיבי יכול להיות מנוצל כדי לבחון מגוון של תהליכי הסחר תאיים כגון אפיון excocytosis בקרום פלזמה ב subareas מוגדרים (למשל, דנדריטים או עמוד שדרה) או FRAP בהערכת התרומה של הכניסה דיפוזיה לרוחב לעומת ידי ביצוע FRAP במקביל ו ' כפכפי 'פרוטוקולים לאורך דנדריטים סמוכים (איור 3).

ברור, בעוד הנחיות ספציפיות הוצגו, במעבדה כל אחד צריך לייעל את הפרמטרים הדמיה על פי דגימות וציוד ספציפיים. חשוב לציין, כל הקולטנים על פני השטח של ההחזר על ההשקעה צריך להיות photobleached, עצמאית של המטוס Z-ציר מרכזי, אך ללא נזק משמעותי phototoxic או לא ספציפית photobleaching. לנוERS יש לנקוט באמצעי זהירות בעת ניסיון בפרוטוקול זה ב סומה את התא, כמו אחוז גבוה של תאים pH נמוך יחסית תאיים בדרך כלל התוצאות רקע הקרינה גבוהה באזורים אלו. יתר על כן, בעוד אנו הוכיחו עד כמה טכניקה זו ניתן ליישם משתנה דרכים, לפני תחילת הניסויים photobleaching סלקטיבי חדש ספטמבר, מתויג לבנות, אנו ממליצים כי האפיון הראשוני של קולטני מתוייגים מתנהל 1, כפי שתואר על ידי אשבי ואח' 2.

באופן כללי, שיטה זו היא עיבוד רב עוצמה ורב לפרוטוקול FRAP סטנדרטי, המאפשר אירועים הכניסה קרום הפלזמה לעבור הערכה בזמן אמת הקרוב.

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו אסירי תודה על האמון Wellcome ו ERC עבור תמיכה כספית. IMGG הוא עמית EMBO. KLH הוא סטודנט BBSRC במימון PhD. אנו מודים פיליפ רובין ופטריק Tidball לתמיכה בתרבות טכנית תא וד"ר אנדרו דוהרטי לצורך תחזוקה וסיוע מיקרוסקופים את.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
24mm glass coverslips VWR International 631-0161  
Poly-l-lysine Sigma P2636 1mg/ml in borate buffer to coat coverslips
Neurobasal Medium Invitrogen 21103  
B27 Invitrogen 17504-044 2% in neuronal plating and feeding medium
Penicillin Streptomycin Sigma P0781 1% in neuronal plating and feeding medium
L-Glutamine Invitrogen 25030 2mM / 0.8mM in plating/feeding medium
Horse Serum Biosera DH-291H 10% in neuronal plating media only
pSIN ReP5 cloning vector Invitrogen K75001 For Sindbis virus production
LSM510 META confocal system Zeiss    
Image J Software NIH   open access software. All plugins described herein are available at http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/

References

  1. Sankaranarayanan, S., De Angelis, D., Rothman, J. E., Ryan, T. A. The use of pHluorins for optical measurements of presynaptic activity. Biophys. J. 79, 2199-2208 (2000).
  2. Ashby, M. C., Ibaraki, K., Henley, J. M. It’s green outside: tracking cell surface proteins with pH-sensitive GFP. Trends Neurosci. 27, 257-261 (2004).
  3. Swaminathan, R., Hoang, C. P., Verkman, A. S. Photobleaching recovery and anisotropy decay of green fluorescent protein GFP-S65T in solution and cells: cytoplasmic viscosity probed by green fluorescent protein translational and rotational diffusion. Biophys. J. 72, 1900-1907 (1997).
  4. Patterson, G. H., Knobel, S. M., Sharif, W. D., Kain, S. R., Piston, D. W. Use of the green fluorescent protein and its mutants in quantitative fluorescence microscopy. Biophys. J. 73, 2782-2790 (1997).
  5. Wiedenmann, J., Oswald, F., Nienhaus, G. U. Fluorescent proteins for live cell imaging: opportunities, limitations, and challenges. IUBMB Life. 61, 1029-1042 (2009).
  6. Ashby, M. C. Removal of AMPA receptors (AMPARs) from synapses is preceded by transient endocytosis of extrasynaptic AMPARs. J. Neurosci. 24, 5172-5176 (2004).
  7. Bouschet, T., Martin, S., Henley, J. M. Receptor-activity-modifying proteins are required for forward trafficking of the calcium-sensing receptor to the plasma membrane. J. Cell. Sci. 118, 4709-4720 (2005).
  8. Ashby, M. C., Maier, S. R., Nishimune, A., Henley, J. M. Lateral diffusion drives constitutive exchange of AMPA receptors at dendritic spines and is regulated by spine morphology. J. Neurosci. 26, 7046-7055 (2006).
  9. Martin, S., Bouschet, T., Jenkins, E. L., Nishimune, A., Henley, J. M. Bidirectional regulation of kainate receptor surface expression in hippocampal neurons. J. Biol. Chem. 283, 36435-36440 (2008).
  10. Jaskolski, F., Mayo-Martin, B., Jane, D., Henley, J. M. Dynamin-dependent membrane drift recruits AMPA receptors to dendritic spines. J. Biol. Chem. 284, 12491-12503 (2009).

Play Video

Citer Cet Article
Hildick, K. L., González-González, I. M., Jaskolski, F., Henley, J. M. Lateral Diffusion and Exocytosis of Membrane Proteins in Cultured Neurons Assessed using Fluorescence Recovery and Fluorescence-loss Photobleaching. J. Vis. Exp. (60), e3747, doi:10.3791/3747 (2012).

View Video