Preparación Individual Drosophila Huevos Cámaras de Imágenes en directo

1. Drosophila antes de la preparación para la disección (Según E. Gavis, la Universidad de Princeton) Deseche los adultos a partir de una botella con baja densidad sin semillas y la transferencia de la botella a 25 ° C antes de su experimento. Una vez que nuevos adultos han comenzado a surgir, esperar dos días. Tomar un vial que contiene aproximadamente 10 ml de la mosca de alimentos sólidos y agregar 0,5-0,7 gramos de levadura seca (ver tabla) en un ángulo de 45 grados. No cubra toda la superficie del alimento mosca con levadura. Añadir unas cuantas gotas de agua a la levadura, suficiente para hidratar (Figura 1A). Coloque el vial a 45 grados y permitir que unos 3 minutos para que la levadura para absorber el agua (Figura 1B). Nota: Como alternativa, mezcle una levadura pega en un recipiente aparte y añadir la pasta para el vial con una espátula. Anestesiar las moscas en el vial mediante la inyección de gas CO 2. Cuando se deja de mover, inclinar las moscas inconscientes sobre el CO 2 </sub> mosca plataforma para la clasificación (fig. 1C). Aislar 10-15 hembras y 5 machos del genotipo deseado bajo un microscopio de disección con un pincel de punta fina (Figura 1D). Los machos son evidentes por la presencia de cláspers, una estructura que sobresale oscuro, en su posterior. Añadir moscas seleccionados al vial yeasted (Figura 1E). Lugar a 25 ° C durante 24-60 horas. Incubar durante períodos de tiempo más cortos para un mayor porcentaje de jóvenes a mediados de cámaras de la etapa de huevo y períodos más largos de tiempo para fines de cámaras de la etapa de huevo. 2. Drosophila disección ovario Coloque una pequeña gota de aceite en un halocarbono N º 1,5, 22 x 50 mm cubreobjetos (Figura 2A). Establecer el cubreobjetos preparada para el lado donde no estará en el camino. Anestesie las moscas en la yeasted vil mediante la inyección de gas CO 2 y la punta en una plataforma de CO 2. Utilice bien afilados de nariz unas pinzas para agarrar un individuo gordo hembra en la parte anterior del abdomen (no entre los díase el abdomen y el tórax) (Figura 2B-C). Mantenga a la hembra con las pinzas y ver en un microscopio de disección, aproximadamente 2-3 cm por encima del cubreobjetos preparada. Aún sosteniendo en la parte anterior, utiliza un segundo conjunto de fórceps para extraer el tejido en el extremo posterior de la hembra (Figura 2D). Nota: tejido intestinal generalmente se tire a cabo con el extremo posterior. Limpie el tejido extraído de las pinzas. Mientras mantiene la hembra en la parte anterior, utilice las pinzas para apretar suavemente limpiadas o un masaje en el abdomen, trabajando desde la parte anterior hacia la parte posterior. Masajea el abdomen de la misma manera como la eliminación de pasta dentífrica desde el extremo de un tubo. Dos estructuras opacas grandes serán empujados desde el abdomen y la palanca en el extremo de la pinza (Figura 2E-F). Estos son los ovarios pareados. Toque los ovarios en el aceite de halocarbonos en la diapositiva a continuación. Repita la disección de 1-2 veces para dar un total de 4-6 ovarios en el aceite en el cubreobjetos (Figure 2G). 3. Ovarioles aislamiento Nota: Cada ovario contiene cerca de 16 ovarioles compuestas de 6 a 10 cámaras de huevos de las diferentes etapas dispuestas como cuentas de un collar 10. Nota: Antes de aislar los ovarioles, ajustar la fuente de luz en el microscopio de disección, para que la iluminación afecta a un ángulo bajo a la muestra. Esto da contraste a la muestra y permite la visualización de las cámaras de huevo jóvenes etapa. En el aceite, separar los dos ovarios mediante la eliminación del tejido de conexión en el extremo posterior (etapas de edad) con fórceps cerrada (Figura 3A). Orientar un ovario individual con las más antiguas etapas en la etapa de la izquierda y más joven de la derecha. Las cámaras de la etapa juvenil de huevo en el ovario son transparentes y constituyen el extremo más puntiagudo del ovario. Con un par de pinzas en la mano dominante, agarre suavemente la parte posterior de un ovario, de preferencia por los restos de ºe tejido conectivo. Mientras sostiene el ovario en su lugar con las pinzas, utilice una sonda de disección (o una aguja de tungsteno) para desentrañar ovarioles individuales (Figura 3B-D). Nota: ovarioles individuales se rompe entre las etapas de los jóvenes (germario a la etapa 10), como las etapas más antiguas son demasiado grandes para ser separado del ovario completo. Nota: La punción un oocito etapa tardía con la sonda de disección se traducirá en el citoplasma fugas en el aceite y hacer la extracción de ovarioles individuales muy difícil. Si un óvulo última etapa se perfora, se mueven a un ovario fresco. Una vez que el ovariola está libre de los ovarios, el uso de la sonda de disección para arrastrarlo al centro de la gota de aceite y orientar en la orientación deseada para el experimento. Nota: ovarioles en el aceite se asiente y se adhieren al vidrio. Repita este proceso (3.3 a 3.4) hasta que no haya 15-25 ovarioles individuales. Nota: Esto puede requerir la disección de multípara-le ovarios. Todo el proceso debe tener menos de 15 minutos. Nota: Es aconsejable para diseccionar cada uno de los ovarios de varias moscas en lugar de la disección de los ovarios de un menor número de moscas para aumentar el número n de moscas para el experimento. Nota: El manejo brusco de la ovariola dará lugar a los ovocitos no saludables y pueden dar lugar a artefactos en el experimento. Nota: Los ovocitos comenzará a mostrar cambios fenotípicos debido al estrés 40 minutos después de ser diseccionado por el ovario (comparar Figura 7E a la F). Una vez ovarioles están en una orientación adecuada (Figura 3E), utilice la sonda de disección y pinzas cerradas para mover el exceso de tejido ovárico del aceite. Este material puede ser borrado de las pinzas en una toalla de papel. 4. De aislamiento individuales finales cámaras estado de huevo (De acuerdo con E. Gavis, la Universidad de Princeton) Con un par de pinzas en el dominPor la hormiga, sujete la parte posterior de un ovario aislado, preferentemente por los restos del tejido conectivo. Mientras sostiene el ovario en su lugar con el fórceps, introducir la sonda de disección en el extremo posterior del ovario cerca de las pinzas (Figura 4A). Evite perforar las cámaras de huevos mediante la inserción de la sonda entre finales de cámaras de la etapa de huevo. Tire de la aguja de disección a través del ovario hasta que sale en las cámaras de huevos en fase inicial (Figura 4B). Cuando se hace correctamente, la sonda se eliminará el tejido conectivo y la celebración de las finales de ovarioles cámaras de huevo etapa en su lugar. Repita el paso 4.2 hasta que los ovarioles se extienden sobre el cubreobjetos. Nota: Cuando las cámaras de huevo ya no están apilados uno encima de otro, este paso es completa. Utilizando la sonda de disección, separar los oocitos finales para permitir la formación de imágenes fácil (Figura 4C). Nota: La punción de un ovocito, mientras que la disección de finales de cámaras de la etapa de huevo no es tan condenando al igual que con la disección de iovarioles INDIVIDUALES para los más jóvenes. Nota: Para la etapa de huevo 14 cámaras, utilice las pinzas para agarrar los apéndices dorsales para la orientación. 5. Inyección de la preparación Nota: Para la inyección de ovocitos etapa intermedia, orientar la ovarioles perpendicularmente al eje longitudinal de la hoja de la cubierta. Encienda el microscopio de imagen [en nuestro caso un Core DeltaVision de precisión aplicada] y cargar los ajustes de imagen apropiadas (Figura 5A-B). Encienda el aparato de inyección (Figura 5). Cargar la aguja de inyección con una punta de carga (Figura 5D-E). Soluciones para ser inyectados se deben centrifugar brevemente a alta velocidad para evitar los depósitos que podrían bloquear la aguja de inyección. Coloque la aguja de inyección de carga en el inyector. Tenga cuidado de no romper la aguja (Figura 5F). Para ayudar con agujas destapan, coloque un pequeño trozo de vidrio de 2×10 mm a partir de un corte o una quebrada cubreobjetost un lado de la gota de aceite que contiene los ovarioles. Asegúrese de que este fragmento de vidrio está cubierto de aceite. Este vidrio servirá para embestir al extremo de la aguja en su contra por romper o destapar la aguja. 6. La inyección de ARN fluorescente Antes de comenzar: Establecer el aparato de inyección y micro-manipulador tales controles que la aguja de inyección se coloca sobre el centro del campo de visión. Montar la muestra que se inyecta en la platina del microscopio. Seleccione el objetivo de 20x. Superiores o inferiores objetivos de ampliación también se puede utilizar. Nota: Si utiliza una etapa automatizado con capacidad de punto de visita es recomendable para marcar toda la etapa de 8-9 ovocitos para la inyección antes de empezar. Esto permite por visitar fácil y la inyección de oocitos seleccionados. Baje la aguja de la inyección hasta que toque el aceite. Centro de la punta de la aguja sobre la lente del objetivo. Vueltafrente a las luces de la habitación y enciende la luz brillante del campo del microscopio. Seleccione el primer punto (ovocitos) en la lista de los puntos marcados. Mientras mira a través de los oculares, se centran en el ovocito (Figura 6). Baje la aguja de forma manual hasta que esté en el mismo plano de enfoque como el ovocito y el próximo visible para el ovocito. Usando los controles de manipulador, mover la punta de la aguja de la inyección hasta que esté en el interior del ovocito. Un movimiento rápido apuñalar a menudo más que un avance lento. Una vez dentro, expulsar un pequeño volumen de la aguja y evaluar los efectos visuales, repetir según sea necesario. Si la inyección es correcta, el citoplasma en el interior del oocito serán desplazados, si esto no es aparente, la repetición. No es necesario que la imagen de la fluorescencia para determinar si el material ha sido inyectada. Después de la inyección, retire la aguja desde el interior del ovocito (Figura 6B-G). La cantidad precisa de fluido que se inyecta es difícil de cuantificar. Para aumentar el volumen inyectado, adyuª de la presión o el tiempo del pulso de inyección, romper la punta de la aguja para aumentar la apertura de un poco o usar pulsos repetidos de la inyección. Nota: El proceso de inyección completa debe tener menos de 10 segundos cuando se ejecuta correctamente. Amplia punzante o persistentes con la aguja en su interior de los ovocitos dará lugar a graves daños a la cámara de huevos. Antes de seleccionar el oocito marcado siguiente, elevar la aguja de inyección suficientemente alta en el aceite para no ponerse en contacto con oocitos otros en la ruta del viaje. En el ovocito nuevo, repita el paso 6.6. Continúe de esta manera hasta que todos los ovocitos necesarios se inyectan. Nota: Si se comete un error mientras se inyecta, pasar a la siguiente marca de ovocitos. No pierda el tiempo en los ovocitos dañados. Nota: La aguja puede obstruirse durante una sesión de la inyección. En este caso, mover la aguja adyacente a la pieza rota de vidrio en el aceite sobre el cubreobjetos. Ingenioh, el vidrio y la aguja en el mismo plano focal, suavemente incrustar la aguja en el vaso (Figura 6H). Prueba de que la aguja se unclogged pulsando el botón de inyección y ver si cualquier líquido sale de la punta de la aguja. Cuando todos los oocitos se han inyectado, mover manualmente la aguja hacia arriba, fuera del aceite y orientarlo hacia fuera de la trayectoria del haz para el microscopio. Asegurarse de que se trata en una orientación segura, para evitar daños en los ojos. Nota: Si un largo período de tiempo transcurrido entre el aislamiento de huevos de cámara y la inyección de ovocitos, óvulos, será difícil para inyectar y muestran cambios fenotípicos asociados con el estrés. Problemas similares pueden surgir con el manejo brusco de los ovocitos o la inyección de volúmenes de exceso (compare las figuras 6I, J, K). 7. Vivir el diseño experimental de imágenes Seleccione el ovocito inyecta por primera vez en la lista. Prueba de que la inyección era el interior del ovocito por la imagen un fotograma de la fluorescencia (unas en la Figura 6G). Configure los parámetros experimentales, entre ellas: la longitud de onda de excitación, la trayectoria de emisiones, el tiempo de excitación, Z-pila y el tiempo entre las colecciones. Nota: Para obtener más información sobre esto, vea Parton R., et al. (2010) 2. Reúne el conjunto de datos. 8. Los resultados representativos In vitro sintetizado Alexa-546 GRK ARN se inyecta en un Me31B :: GFP huevo cámara (Figura 7A). El ARN se localiza en la parte anterior dorsal del oocito y forma un tapón alrededor del núcleo (Figura 7B). Para más ejemplos de la localización del ARN ver MacDougall N., et al. (2003) 11. Ovocitos etapa de mediados y finales que expresan la proteína fluorescente etiquetados (Tau-GFP, Figura 7C) o los sistemas de etiquetado de ARN (GRK * mCherry, la figura 7D) se pueden obtener imágenes sin inyección. Figura 1. <p class= "Jove_content"> Figura 2. Figura 3. Figura 4. Figura 5. Figura 6. Figura 7.