Hierin beschrijven we de methoden om te bouwen, visualiseren en kwantificeren van de bioluminescente reacties van zowel vuurvlieg en Renilla luciferase enzymen uitgedrukt in gemetastaseerde borstkanker cellen tijdens hun groei en metastase<em> In vivo</em>.
Ons begrip van hoe en wanneer kankercellen in de borst doorvoer van gevestigde primaire tumoren bij metastasen is toegenomen in een uitzonderlijk tarief sinds de komst van bioluminescentie beeldvorming technologieën 1-3. Inderdaad, de mogelijkheid te lokaliseren en kwantificeren lengterichting tumorgroei in een cohort van dieren voltooiing van de studie, in tegenstelling tot offeren afzonderlijke groepen dieren op bepaalde tijden assay heeft een revolutie hoe onderzoekers borstkanker metastase te onderzoeken. Helaas huidige methodologieën weg aan de real-time evaluatie van kritische veranderingen die tot uiting komen in cell signaling systemen borstkankercellen (i) evolueren in primaire tumoren (ii) verspreiden door het hele lichaam, en (iii) proliferatieve programma te hervatten op plaatsen van een metastatische laesie. De recente ontwikkelingen in bioluminescent imaging thans mogelijk om gelijktijdig kwantificeren specifieke spatiotemporal veranderingen in genexpressie als functie van tumoren en metastatische progressie via het gebruik van dubbele substraat luminescentie reacties. Hiertoe onderzoekers maken van twee licht-producerende enzymen die luciferase van de vuurvlieg (Photinus pyralis) en zee pansy (Renilla reniformis), die beide reageren op elkaar uitsluiten substraten die reeds hun wijdverspreide gebruik vergemakkelijkt in vitro cel gebaseerde assays reportergen 4. Hier tonen we de in vivo bruikbaarheid van deze twee enzymen zodat een luminescentie reactie specifiek de grootte en locatie van een tumor ontwikkeling markeert, terwijl de tweede luminescerende reactie dient als middel om de activeringsstatus van specifieke signalen te visualiseren tijdens verschillende fasen tumor en metastase ontwikkeling. Zo zijn de doelstellingen van dit onderzoek zijn tweeledig. Eerst beschrijven we de stappen die nodig zijn om dual lichtgevende reporter cellijn construerens, evenals die nodig gebruik ervan te vergemakkelijken in het visualiseren van de tijdruimtelijke regulatie van genexpressie tijdens specifieke stappen van de metastatische cascade. Met het 4T1 model uitzaaiing van borstkanker, laten we zien dat de in vivo activiteit van een synthetische Smad Inbind (SBE) promoter sterk was verminderd in longmetastasen in vergelijking met die gemeten in de primaire tumor 4-6. Onlangs werd borstkanker metastase wordt gereguleerd door veranderingen in de primaire tumor micro-omgeving en reactief stroma, ook die welke zich in fibroblasten en infiltrerende immuuncellen 7-9. Dus zal ons tweede doelstelling is het nut van dubbele bioluminescent technieken toezicht de groei en lokalisatie van twee unieke celpopulaties geherbergd binnen een dier tijdens borstkanker groei en metastase tonen.
De absolute kracht van bioluminescent beeldvormingstechnieken ligt in hun vermogen om tumorgroei en metastase in complexe longitudinale studies, die hier bij het gebruik van agressieve 4T1 borstkankercellen kwantificeren. Omdat deze procedures gebaseerd op de stabiele integratie van luciferase reporter constructen kunnen deze technieken gemakkelijk worden aangepast en vertaald naar andere kankercellijnen van verschillende tumor latencies en metastatische mogelijkheden. Vergelijkbaar met de resultaten hierin getoond, berekening van het specifieke RLRs binnen langzaam ontwikkelende primaire tumoren en hun metastasen uiteindelijke maakt het real-time spatiotemporele dat specifieke signaleringsgebeurtenissen die tot uiting komen in de metastatische progressie van tumoren ongeacht de duur van latency. Na identificatie van specifieke promoter regulerende gebeurtenissen, is het belangrijk om accijns zowel de primaire tumor en metastasen voor het uitvoeren van standaard immunohistochemische en differentiatiel genexpressie analyses vergelijkbare regulering van de endogene gen en / of eiwit verifiëren.
Technisch gezien is de belangrijkste uitdaging van de dubbele bioluminescente analyses ligt in de relatief korte duur van de Renilla luciferase signalen. Als zodanig is deze beeldvormende techniek is significant optimalisatie van de staartader injectie procedure, evenals de onmiddellijke imaging individueel geïnjecteerde dieren, een proces dat is tijdrovend en inefficiënt enigszins ten opzichte imaging vuurvlieg luciferase. Onlangs geïntroduceerd Promega "Viviren", die een tweede generatie luciferase substraat de sites van de oxidatie worden geblokkeerd door verestering tot deze molecule zich toegang tot cellen, waarna de molecule snel gedeësterificeerd vertegenwoordigt. Gezamenlijk deze roman substraat verlaagt effectief auto-luminescentie en niet-specifieke modificatie en / of afbraak gekoppeld aan Renilla-geïnduceerde auto-luminescentie 12. Daarbij deze nieuwe renilleen luciferase substraat produceert heldere lichtgevende signalen, maar de hoge kosten verbonden aan de verwerving en het gebruik van "Viviren" hebben relatief weinig onderzoek dat nodig is om de totale nut van dit substraat in dual bioluminescente analyses te evalueren. Tenslotte de gevoeligheid van elke assay bioluminescent is kritisch afhankelijk van de CCD camera operant in het verwerven van individuele lichtunits. Inderdaad, zoals deze technologieën te verbeteren, voorzien we een punt in de toekomst waar ons vermogen om complexe licht-gemedieerde bioluminescente reacties te visualiseren kan efficiënt tot uiting komen in vrij bewegende dieren 13.
The authors have nothing to disclose.
WPS is mede ondersteund door subsidies van de National Institutes of Health (CA129359), de Susan G. Komen voor de Cure Foundation (BCTR0706967), het Ministerie van Defensie (BC084561), en de Seidman Cancer Center, terwijl MKW werd ondersteund door een beurs van de American Cancer Society (PF-09-120-01). Extra ondersteuning voor dit werk werd aangeleverd door het Case Center for Imaging Research, de zaak Comprehensive Cancer Center (P30 CA43703), en de Cystic Fibrosis Centrum (P30 DK027651).
Name of reagent | Company | Catalogue number |
---|---|---|
pGL4.2-Puro [luc2/Puro] Vector | Promega | E6751 |
Glomax Mult-idection system | Promega | |
IVIS 200 series | Caliper Life Sciences | |
Dual luciferase reporter Assay system | Promega | E1960 |
Rediject coelenterazine-h | Caliper Life Sciences | 760506 |
D-Luciferin K-Salt | Caliper Life Sciences | 122796 |