Summary

Flowcytometrie-analyse van de immuuncellen Binnen Murine aorta

Published: July 01, 2011
doi:

Summary

Dit document presenteert een flow cytometrie-gebaseerde methode om het immuunsysteem samenstelling van de aorta's te onderzoeken. De paper illustreert ook een extra techniek die het mogelijk maakt te onderzoeken omringende adventitia en vaatwand afzonderlijk. Deze methode biedt mogelijkheden om fenotypische analyses van de aorta leukocyten uit te voeren en een aantal immunologische testen toe te passen voor atherosclerose studies.

Abstract

Atherosclerose is een chronisch ontstekingsproces van middelgrote en grote schepen die wordt gekenmerkt door de vorming van plaques bestaande uit schuimcellen, immuuncellen, vasculaire endotheliale en gladde spiercellen, bloedplaatjes, extracellulaire matrix, en een lipide-rijke kern met uitgebreide necrose en fibrose van de omliggende weefsels. 1 De aangeboren en adaptieve armen van de immuunrespons betrokken zijn bij de initiatie, ontwikkeling en voortbestaan ​​van atherosclerose. 2, 3 Er is een aanzienlijke hoeveelheid bewijs dat verschillende subgroepen van de immuun cellen, zoals macrofagen, dendritische cellen, T-en B-lymfocyten, zijn aanwezig in de aorta's van gezonde en atherosclerose-gevoelige muizen 4. Daarnaast worden immuuncellen in de omliggende aorta adventitia, die een belangrijke rol van dit weefsel suggereert in atherogenese 2.

Al enige tijd werd de kwantitatieve detectie van verschillende soorten immuuncellen, de activatie-status, en de cellulaire samenstelling binnen de aorta beperkt door de RT-PCR en immunohistochemische methoden voor de studie van atherosclerose. Er zijn maar weinig pogingen werden ondernomen om flowcytometrie met behulp van menselijke aorta uit te voeren, en een aantal problemen, zoals een hoge autofluorescentie, zijn gemeld 5,6. Human atherosclerotische plaques werden verteerd met collagenase 1, en vrije cellen werden verzameld en gekleurd voor CD14 + / + CD11c tot macrofaag-afgeleide schuimcellen te markeren. In deze studie werd een 'mock "kanaal gebruikt om vals-positieve kleuring te vermijden. 6 necrotische materiaal accumuleren tijdens het verteringsproces leiden in een grote hoeveelheid puin dat een hoge autofluorescentie bij aorta-monsters genereert. U lost dit probleem, heeft een panel van negatieve en positieve controles voorgesteld, maar slechts twee kleuren kan worden toegepast in deze monsters. We hebben een nieuwe flow cytometrie-gebaseerde methode 7 om het immuunsysteem cel samenstelling te analyseren en te karakteriseren de activatie, proliferatie, differentiatie van immuuncellen in gezonde en atherosclerose-gevoelige aorta. Deze methode maakt het mogelijk het onderzoek van de immuun cel samenstelling van de aorta en opent mogelijkheden om een ​​breed spectrum van immunologische methoden voor het onderzoeken van het immuunsysteem van aspecten van deze ziekte.

Protocol

1. Isolatie van muizen aorta Institutionele IACUC commissie goedkeuring van de procedure is nodig om te werken met muizen. Bereid heparinzed PBS door het toevoegen van 1.000 eenheden heparine natrium tot 50 ml PBS en omdraaien van de buis te mengen. Bereid een lege collectie buis voor het bloed en een verzameling buis met PBS voor elke aorta te worden verzameld. Houd alle buizen op ijs. Heparinize een injectiespuit voor het tekenen van bloed (0,1 ml van 1000 U / ml Hepar…

Discussion

Hier presenteren wij een flow-cytometrie-gebaseerde methode voor het onderzoek van de immuun cel samenstelling van muriene aorta. Het grote voordeel van deze methode is de mogelijkheid om aorta immuuncellen analyseren op een enkele cel niveaus en om de activering status van de aorta leukocyten karakteriseren. Deze methode is niet beperkt tot muriene aorta en we (ongepubliceerde gegevens) en anderen 10 gebruikte deze benadering van de menselijke specimens zoals interne mamma-arterie, aorta-kleppen en kransslag…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door National Institutes of Health te verlenen: PO1 HL55798 (naar KL) en de American Heart Association Scientist Development Grant 0525532U (naar bijv.).

Materials

Material Catalog Number Company
Collagenase XI C7657 Sigma-Aldrich
Hyaluronidase H3506 Sigma-Aldrich
DNase I, type 2 D4527 Sigma-Aldrich
Collagenase I C0130 Sigma-Aldrich
Collagenase II LS004174 Worthington Biochemical Corporation
Elastase LS002292 Worthington Biochemical Corporation

References

  1. Lusis, A. J. Atherosclerosis. Nature. 407, 233-2341 (2000).
  2. Galkina, E., Ley, K. Immune and inflammatory mechanisms of atherosclerosis. Annu Rev Immunol. 27, 165-197 (2009).
  3. Hansson, G. K., Libby, P. The immune response in atherosclerosis: a double-edged sword. Nat Rev Immunol. 6, 508-519 (2006).
  4. Galkina, E., Ley, K. Leukocyte influx in atherosclerosis. Curr Drug Targets. 812, 1239-1248 (2007).
  5. Bonanno, E., Mauriello, A., Partenzi, A., Anemona, L., Spagnoli, L. G. Flow cytometry analysis of atherosclerotic plaque cells from human carotids: a validation study. Cytometry. 39, 158-165 (2000).
  6. Liu-Wu, Y., Svenningsson, A., Stemme, S., Holm, J., Wiklund, O. Identification and analysis of macrophage-derived foam cells from human atherosclerotic lesions by using a “mock” FL3 channel in flow cytometry. Cytometry. 29, 155-164 (1997).
  7. Galkina, E., Kadl, A., Sanders, J., Varughese, D., Sarembock, I. J., Ley, K. Lymphocyte recruitment into the aortic wall before and during development of atherosclerosis is partially L-selectin dependent. J Exp Med. 203, 1273-1282 (2006).
  8. Tung, J. W., Parks, D. R., Moore, W. A., Herzenberg, L. A., Herzenberg, L. A. New approaches to fluorescence compensation and visualization of FACS data. Clin Immunol. 110, 277-283 (2004).
  9. Smith, E., Prasad, K. M., Butcher, M. Blockade of interleukin-17A results in reduced atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice. Circulation. 121, 1746-1755 (2010).
  10. Eid, R. E., Rao, D. A., Zhou, J. Interleukin-17 and interferon-gamma are produced concomitantly by human coronary artery-infiltrating T cells and act synergistically on vascular smooth muscle cells. Circulation. 119, 1424-1432 (2009).

Play Video

Citer Cet Article
Butcher, M. J., Herre, M., Ley, K., Galkina, E. Flow Cytometry Analysis of Immune Cells Within Murine Aortas. J. Vis. Exp. (53), e2848, doi:10.3791/2848 (2011).

View Video