마우스의 Cajal (ICC) 네트워크의 중간 세포의 시각화

1. 마우스 GI 넓이의 해부 지역 IUCAC 지침 Euthanized 마우스 스티로폼 표면에 각각의 다리를 핀 및 70 % 에탄올로 복부 표면을 씻어. 격막에서 치골에 긴 정중선 절개로 복강을 여십시오. 하나는 말초 식도와 말초 대장에서 두 번째 컷에서 잘라 블록 EN 위장에서 항문에 GI 트랙트를 제거, 신중하게 작은 가위를 사용하여 십이지장과 맹장에서 인대를 절단합니다. PBS와 페트리 접시에 넣어 GI 트랙트. 핀셋을 (그림 1)를 사용하여 장간막 멀리 해부하다. 위, 소장 및 대장, pylorus 및 ileocecal 접합에 상처를 구분합니다. 먹이를 바늘 (이전 마우스) 또는 뭉툭한 바늘 (이하 마우스)에 첨부된 5ml 주사기를 사용하여 PBS로 GI 트랙트의 각 부분의 루멘을 씻어. mesenteric 경계 열기 위, 소장 및 대장. GI 트랙트의 각 부분에 대해 두 개의 전체 탑재 시각화를위한 하나 cryosection 한 컷. 2. 전체 마운트 샘플 준비 및 immunostaining 4 최소한 1 시간 동안 얼음 차가운 아세톤 및 수정 샘플 1.0 ML 가득 1.5 cm의 microfuge 관 ° C.에 GI 트랙트의 각 부분의 전체 조각을 플레이스 샘플은 -20 ° C.에 최대 1 주일 저장될 수 있습니다 우리는 일반적으로 아세톤에 샘플을 저장하고 cyrosections 준비를 진행합니다. PBS로 샘플 2X 씻으십시오. PBS와 페트리 접시에 넣어 샘플. miscroscope를 해부에서 신중하게 muscularis두고, 핀셋 한 쌍의 한 쪽 끝을 잡고하여 메스와 점막 층을 다쳤어요. 근육이 서로 다른 항체와 얼룩을 위해 5mm 조각으로자를 수 있습니다. 얼룩 전에 PBS 이상 2 일간 보관하지 마십시오. 블록과 부화 단계 24 잘 플레이트 잘 하나 또는 1.5ml microfuge 튜브에서 할 수 있습니다. 차단 버퍼의 0.5 ML (5 % 염소 혈청, 0.1 % 트리톤 4 1 시간 PBS에서 X – 100 ° C)를 차단합니다. 버퍼를 차단으로 희석 주 항체와 부화하고 4 박 회전 ° C. 우리는 성공적으로 ACK – 2 쥐 방지 키트, 토끼 방지 Ano1 및 전체 마운트 immunostaining에 대한 토끼 방지 Pgp9.5 항체를 사용했습니다. 상온에서 회전에 PBS로 5 분 2X위한 씻으십시오. 회전에 상온에서 2 시간 동안 차단 버퍼에 희석 차 항체와 부화. 우리는 일반적으로 알렉사 플루어 488 안티 – 토끼과 알렉사 플루어 594 안티 쥐 항체에게 사용합니다. 상온에서 회전에 PBS로 3 배 15 분 씻으십시오. 현미경 동안 조직의 방향을 위해 위에 슬라이드, serosal 측면에 마운트합니다. 이 오리 엔테이션은 coverslip을 직시하고 하나는 현미경의 슬라이드에 초점을 맞추고로 첫째가 발생 될 serosal 측면을 보장합니다. 우리는 해부 현미경에서이 작업을 수행. 때때로, 우리는 간단히 제대로 방향을 형광 현미경 하에서 조직을 검사합니다. 키트 또는 Ano1을 시각화하기 위해 형광 현미경에서 하나는 coverslip의 측면에서 먼저 ICC – 내 네트워크를 발생한다. 다음 대기음 PBS는 가능한 한하지 않고 완전히 건조. 하드 설정 설치 미디어 (우리가 골드를 연장 사용) 50 μl를 추가하고 부드럽게 조직의 상단에 커버 슬립을 넣으십시오. -80에서 상온 및 매장 슬라이드에서 하룻밤 장착의 설정을 허용 ° C. 현미경 시험, 우리는 Z – 드라이브와 넓은 필드 현미경을 사용. 우리도 20X 공기 목적 (NA 0.75, 계획의 고차 색지움) 또는 60X 오일 목표 (NA 1.4 계획 고차 색지움)를 사용 2 μm의 또는 전체 muscularis에 걸쳐 Z – 섹션 1 μm의했다. 이미지는 이후 Autoquant deconvolution 소프트웨어를 사용하여 deconvoluted되었습니다. 또는, 많은 다른 사람은 유사한 결과를 대신 공촛점​​ 현미경을 사용했습니다. 3. Cryosection 준비 및 immunostaining 필터 종이에 평면 다운 GI 트랙트, serosal 측면의 각 부분을 넣으십시오. 조직 주위에 필터 종이를 자르고. 상온에서 2 시간 동안 PBS (우리가 제대로 사용하기 전에 PBS로 밀폐된 유리병에 32 % paraformaldehyde를 희석)에 4 % paraformaldehyde (PFA) 필터 종이에 플레이스 조직. 또는 조직의 크기에 따라 12 자 판, 또는 1.5 ML의 microfuge 튜브 – 고정은 6 할 수 있습니다. 판에서 수행하는 경우 parafilm는 PFA 노출을 최소화합니다. 긴 고정 시간은 특히 ACK – 2 안티 키트 항체 위해 항원 마스킹이 발생할 수 있습니다. PBS의 30 % 자당에 PFA의 조직과 장소를 제거합니다. 조직은 4 박 싱크 허용 ° C.를 1 시간 동안 30 % 자당와 OCT의 1시 1분 비율과 조직을 평형. 다음 GI 트랙트의 세로축은 cyrosections과 병행되어야 OCT 가득한 cryomold에 수직으로 조직을 탑재합니다. 다른 genotypes 또는 다른 치료와 함께 생쥐를 검사하면 병렬 처리를 위해 동일한 cryomold에 다른 마우스에서 조직을 마운트하는 것이 유용할 수 있습니다. 스토리지 -80 ° C의 냉장고에 드라이 아이스와 장소에 고정. 10 μm의의 cryosections 컷-80 ° C의 냉동고에서 슬라이드 및 저장에. 우리는 보통 슬라이드마다 두 섹션 잘라. 우리는 또한 보통 cryosection 슬라이드의 H & E 염색법을 수행합니다. immunofluorescence 들어, 처음 15 분 동안 실온에서 슬라이드를 평형. 다음 PAP 펜을 사용하여 조직 주위에 원을 그립니다. 1 시간 동안 차단 버퍼 (전체 마운트 immunostaining에 대한 동일) 150 μl와 차단합니다. 차단 버퍼를 기음과 버퍼를 차단으로 희석 150 μl 일차 항체를 추가하고 4 박 품어 ° C를 humidified 챔버 인치 PBS로 5 분 2X 씻으십시오. 상온에서 2 시간 동안 버퍼를 차단에 희석 차 항체와 부화. 우리는 일반적으로 488 알렉사 방지 래빗과 알렉사 594 안티 쥐 항체를 사용합니다. PBS로 3 배 15 분 씻으십시오. 완전히 조직을 건조하지 않고 슬라이드를 대기음. DAPI (우리가 골드를 연장 사용) 장소 # 1.5 coverslip와 미디어를 장착 하드 집합의 드롭을 추가합니다. -80 ° C의 냉동고에 설정하고 저장하기 위해 밤새 실온에서 플레이스 슬라이드. DAPI, FITC, 그리고 텍사스 레드 필터 세트를 사용하여 트리플 형광 이미지를 취득. 4. 대표 결과 : 여기서는 예제로 대장을 사용합니다. H & E는 자당의 얼룩 immunofluorescence에 사용되는 냉동 섹션을 고정 보호하는 것은 어떤 유물들이 참조 파라핀 섹션 (그림 2)에 비해 보여줍니다 어디에 원형과 세로 근육층과 녹색 라인 demarks 사이의 노란색 선은 demarks myenteric 신경 얼기를 경계 점막 및 muscularlis. serosa에서 점막으로, cryosection를 검사, 먼저 두꺼운 원형 근육 (CM) 계층 다음에 얇은 세로 근육 (LM) 레이어를 발생합니다. CM의 핵은 작고 원형되어야하는 동안 LM의 핵이 다소 길어진해야하므로 부분은 세로 근육과 병행되어야합니다. LM와 CM 사이에 Pgp9.5와 얼룩 뉴런 만든 myenteric plexi 있습니다. CM을 통해 Pgp9.5 또한 얼룩의 연결을 처리합니다. myenteric ICC 네트워크 (ICC – MY)는 myenteric 신경 얼기를 둘러싸고와 다극 세포 만들어집니다. 세로 근육 계층 내에서 바이폴라 세포가 근육과 병렬로 실행되는 희귀 근육의 ICCs은 (ICC – 인스턴트 메시지)가 있습니다. 원형 근육 계층 내에서, 또한 원형 근육과 병렬 실행이 절단와 교차 sectioned 아르 바이폴라 세포되는 ICC – 인스턴트 메시지를 풍부한 있습니다. muscularis 및 submucosa의 교차점에서, ICC – SMPS 구성된 submucosal ICC 네트워크 다극 ICCs의 평면 네트워크입니다. 그 중 하나가 coverslip에서 초점으로 대장의 immunostaining 전체 마운트 키트를 검토 하나는 (Figure. 3) CM의 ICC – IM, 그리고 ICC – SMP 네트워크 다음 ICC – 내 네트워크를 먼저 만날 기대한다 . 전체 마운트 이미지의 3D 재구성을 사용하여 ICC 네트워크의 용적 측정 10 설명했습니다. 넓은 필드에 현미경을 사용하면, (그림 3) deconvolution 후 제거할 수있는 RAW 이미지에 상당한 아웃 – 오브 – 평면 형광 있습니다. 점막의 스트립 불완전 높은 배경 형광 발생합니다. ANO1 다른 ICC의 마커와 KIT의 공동 immunostaining이며 ANO1는 ICC의 얼룩 (그림 4)의 완전한 중복을 보여줍니다. 그림 1. 대표 허가 13 reprinted, 마우스 위장관를 해부. 그림 2.) 대표 H & cryosections의 일부 수축 유물을 보여주는 섹션을 설명 및 참조 파라핀은 임베디드로 준비 cryosections의 마우스 대장의 전자 염색법. 노란색 라인 demarks myenteric 신경 얼기와 파란색 라인은 muscularis에서 점막을 분리합니다. B) 대표 키트 (빨간색, ACK – 2)와 Pgp9.5 (녹색) 마우스 대장의 DAPI (파란색) counterstaining 더블 immunofluorescence. LM : 세로 근육 CM : 원형 근육. 스케일 바 20 μm의. 그림 3. 대표 키트 (빨간색, ACK – 2) 전체 마운트 세 초점 비행기에서 같은 분야의 immunofluorescence, ICC – MY LM / CM 국경에서 비행기, CM에있는 ICC – 메신저 비행기, 그리고 ICC – CM / submucosa 국경에서 SMP의 비행기. RAW 이미지와 deconvoluted 이미지가 표시됩니다. 스케일 바 20 μm의. 그림 4. Ano1 (녹색)과 대장의 ​​키트 (빨간색, ACK – 2)의 대표를 두 번 immunofluorescence. 스케일 바 20 μm의.