هذا البروتوكول يوفر المعلومات اللازمة لإقامة ورعاية ، وتسجيل من الثقافات وتحفيز كهربائيا على الاتفاقات.<em> في المختبر</em> شبكات توفير وسيلة لطرح الأسئلة ذات الصلة من الناحية الفسيولوجية في الشبكة الخلوية والمستويات مما يؤدي إلى فهم أفضل وظيفة الدماغ واختلال وظيفي.
في القرن الماضي ، وقد كرس العديد من علماء الأعصاب في جميع أنحاء العالم حياتهم لفهم كيفية عمل الشبكات العصبية ، ولماذا توقفوا عن العمل في مختلف الأمراض. وشملت الدراسات neuropathological الملاحظة ، المجهر الفلورسنت مع العلامات الوراثية ، وتسجيلها في كل من الخلايا العصبية فصل والاستعدادات شريحة. يناقش هذا البروتوكول آخر التكنولوجيا ، والتي تنطوي على تنامي العصبية نأت على الثقافات الصغيرة مسرى صفائف (وتسمى أيضا متعدد القطب صفائف الاتفاقات البيئية المتعددة الأطراف).
هناك مزايا عديدة لاستخدام هذا النظام أكثر من غيرها من التقنيات. ثقافات العصبية نأت على الاتفاقات تقديم نموذج مبسط يمكن من خلالها التلاعب نشاط شبكة الاتصال مع تسلسل التحفيز الكهربائي من خلال أقطاب الصفيف متعددة. لأن شبكة صغيرة ، ويقتصر أثر التحفيز إلى مناطق يمكن ملاحظتها ، والذي ليس هو الحال في الأعمال التحضيرية سليمة. الخلايا تنمو في المونولاير إجراء تغييرات في سهل التشكل لمراقبة بتقنيات التصوير المختلفة. أخيرا ، يمكن للثقافات على الاتفاقات البقاء على قيد الحياة لأكثر من سنة في المختبر الذي يزيل أية قيود زمنية واضحة متأصلة مع تقنيات زراعة أخرى. 1
مختبرنا وغيرها في جميع أنحاء العالم وتستخدم هذه التكنولوجيا لطرح أسئلة هامة حول الشبكات العصبية. الغرض من هذا البروتوكول هو توفير المعلومات اللازمة لإقامة ورعاية ، وتسجيل من الثقافات وتحفيز كهربائيا على الاتفاقات. شبكات الأنابيب وتوفر وسيلة لطرح الأسئلة ذات الصلة من الناحية الفسيولوجية في الشبكة الخلوية والمستويات مما يؤدي إلى فهم أفضل وظيفة الدماغ واختلال وظيفي.
ويبين هذا البروتوكول على تعليمات حول كيفية الحفاظ على الثقافة والشبكات العصبية في الدقيقة الكهربائي صفائف فضلا عن مقدمة للتسجيل من وتحفيز شبكات الخلايا العصبية. كما تم بحث بعض من أكثر المشاكل شيوعا عند التسجيل من الاتفاقات في المقطع المشاكل MEA. هناك اختلافات في بعض الأحيان في البروتوكول كما نوقش في كثير من الأحيان في جميع أنحاء وتستخدم هذه التغييرات لتحسين الظروف المحددة التي تتطلبها بعض تصاميم تجريبية.
على الرغم من أن يتألف منها نظام التسجيل وتحفيز المقدمة هنا من عادتنا صمم NeuroRighter 15 مع preamp MCS ، وهناك العديد من الأنظمة الأخرى التي يمكن أن توفر واجهة مع الشبكات العصبية. واختيار نمط معين يعتمد على احتياجات تجريبية محددة.
وقدمت أمثلة تسجيل التبسيط والتحفيز في هذا البروتوكول ولكن يمكن استخدام هذه الثقافات على الاتفاقات البيئية المتعددة الأطراف لتقديم نظرة ثاقبة حول المسائل المعقدة نشاط الخلايا العصبية ومتشابك الاتصال بالشبكة. كما ذكر أعلاه ، هو العمل الجاري الاستفادة من هذه التكنولوجيا لدراسة العمليات مثل اللدونة الخلوية ، والتنمية ، وتنكس عصبي excitotoxicity. 60-10 وعلى سبيل المثال ، أظهرت نشرة صدرت مؤخرا من المختبر هدفنا تكرار توجيه التعلم في المختبر في الوقت الحقيقي مع التحفيز في حلقة مغلقة ردا على نشاط الشبكة العصبية الحالية 3.
على الرغم من ثقافات الشرق الأوسط وأفريقيا غالبا ما صعب وحساس ، وذلك بفضل بساطتها وسهولة الوصول إليها (بالمقارنة مع الحيوانات سليمة) ، فإنها تقدم نموذجا قويا لدراسة نشاط الخلايا العصبية على مستوى الشبكة.
The authors have nothing to disclose.
نود أن نشكر أعضاء المجموعة بوتر لتقديم التعليقات بشأن البروتوكول لا تقدر بثمن. وقد تم تمويل هذا العمل من خلال التدريب زمالة بحثية سريرية من الأكاديمية الأميركية لعلم الأعصاب في مؤسسة CMH ، والزمالة من المعهد الوطني للعلوم الطبية العامة (NIGMS ؛ http://www.nigms.nih.gov/ ) لJDR (GM08169 ) ، منحة من المعاهد القومية للصحة والمعهد الوطني للاضطرابات العصبية والسكتة الدماغية (NS054809) ، ولام روث القومي للبحوث لجائزة الخدمة كيرشتاين JDR (NS060392) ، وجبهة الخلاص الوطني منحة EFRI (0836017) ، ومؤسسة جائزة بحوث بالحركة كولتر ، و متعدية زمالات الأبحاث لJDR (NS007480).
Supplies
Equipment:
Solutions and Reagents:
BSA solution:
Make 5% BSA (Sigma A-9418) in phosphate buffered saline pH 7.4 and filtered at 0.2μm. This solution can be prepared ahead of time and stored at 4°C for several months.
Cell Medium:
Combine 90 ml Dulbecco’s modified Eagle’s medium (Irvine Scientific 9024), 10 ml horse serum (Gibco 16050), 1ml sodium pyruvate (100mM, Gibco 11360), 250 μl GlutaMAX (Gibco 35050), and insulin (final concentration 2.5 μg/ml, Sigma I-5500) then pass through a 0.2 μm filter.22 Warm and equilibrate the cell medium in the incubator prior to use.
Dissection solution for preparing papain solution:23
Dissection solution (100ml stock) | Combine in order, filter 0.22 μm and store at 4°C. | |
Component | Volume ml | Final Concentration (mM) |
Double-distilled water | 91.175 | |
1 M MgCl2 | 0.58 | 5.8 mM |
1 M CaCl2 | 0.025 | 0.25 mM |
0.5 M HEPES | 0.32 | 1.6 mM |
0.5% Phenol red | 0.2 | (0.001%) |
0.1 N NaOH | 0.2 | 0.2 mM |
2 M Na2SO4 | 4.5 | 90 mM |
1 M K2SO4 | 3.0 | 30 mM |
0.1 M Kynurenic acid | 1.0 | 1 mM |
5 mM APV | 1.0 | 0.05 mM |
This solution can be prepared ahead of time and stored at 4°C for several months.
DNAse I:
Invitrogen (#18047019). 50μl aliquots are flash frozen and stored at -80°C. An aliquot is thawed in the laminar flow hood prior to starting the cell dissociation process.
Hank’s balanced salt solution:
Sigma (#4891). A 1X solution is prepared in deionized water, sterile filtered at 0.2μm and stored at 4°C.
Hibernate solution:
Prepare on day of culturing. Combine 98 ml L-15 medium (Invitrogen 11415) with 2 ml B-27 supplement (50X, Invitrogen #17504) and filter at 0.2 μm.
Laminin solution:
Prepare on day of culturing. Dilute 20μl of laminin (1mg/ml, Sigma L-2020) in 980 μl cell medium for a final concentration of 0.02mg/ml. 20 μl aliquots of the laminin (1mg/ml) are stored at -80°C and thawed just prior to use. Thawing should occur on the bench top and not in the water bath as rapid thawing can sometimes lead to gelling of the laminin.
Papain solution:23
Warm 10 ml of dissection solution (above) to 30-32°C. Add 200 units papain (Sigma P-4762) and 1.6 mg L-cysteine (Sigma C-7880). Adjust pH to 7.4 with about 14 μl of 0.1 N NaOH. Incubate for about 30 minutes until the solution clears, filter 0.2 μm, flash freeze with liquid nitrogen in 2 ml aliquots in 15 ml polypropylene sterile conical vials and store at -80°C. Thaw an aliquot at 35-37°C prior to starting protocol.
Polyethyleneimine (PEI) solution:13
100 μl of PEI (50% w/v, Sigma P-3143) is diluted in 100 ml sodium borate buffer (0.1 M pH 8.4, Sigma B-9876) for a final concentration of 0.05% w/v. Sterile filter at 0.2 μm. This can be prepared in advance and stored at 4°C for months.
Sterile de-ionized water:
Autoclave and allow to cool to room temperature prior to use.
Trypsin (0.25% with EDTA, Gibco 25200):
1ml aliquots are flash frozen and stored at -80°C. Aliquots are thawed in the 35-37°C water bath prior to use.