Summary

Подготовка эмбрионов для электронной микроскопии Drosophila Эмбриональные трубки сердца

Published: December 21, 2009
doi:

Summary

Мы опишем процесс фиксации, вложения, секционирования и визуализация поздней стадии<em> Drosophila</em> Эмбрионов для Trasmission Электронная микроскопия эмбриональные трубки сердца. Этот метод позволяет визуализировать просвет трубки сердца, а также базальную мембрану, которая линий просвет сердце.

Abstract

Морфогенез<em> Drosophila</em> Эмбрионального сердца трубка стала ценным модельной системой для изучения миграции клеток, межклеточной адгезии и изменения формы клеток в процессе эмбрионального развития. Одна из проблем, возникающих в изучение этой структуры является то, что просвет трубки сердца, а также мембранные функции, которые имеют решающее значение для формирования сердца трубка, трудно представить себе в целом эмбрионов гору, из-за небольшого размера сердца трубка и внутри lumenal пространстве по отношению к эмбриону. Использование просвечивающей электронной микроскопии позволяет большем увеличении этих структур и дает преимущество рассмотрения эмбрионов в поперечном сечении, которая легко обнаруживает размер и форму полости. В этом видео мы подробно процесс для надежной фиксации, вложение и секционирования поздней стадии<em> Drosophila</em> Эмбрионов для визуализации просвета сердце трубки, а также важные клеточные структуры, в том числе межклеточных контактов и базальной мембраны.

Protocol

Недавно подготовить 2 мл фиксирующего раствора, содержащего 12,5% глутарового альдегида в 50 мМ буфере какодилатном (pH7.4) в 20 мл флакон сцинтилляционных стекла. Добавить 8 мл н-гептана и энергично встряхивают. Разрешить два этапа, чтобы отделиться. Удаление верхней фазы, содержащей н-гептана насыщенный глутаральдегида, место в чистый флакон сцинтилляционных и отложите. Это будет фиксирующий раствор. Сбор эмбрионов 0-20 час, используя камеру эмбриона коллекции, которая небольшую корзинку со съемной вставки сетки. Удалите внешнюю мембрану хориона путем замачивания эмбрионов в 50% раствор хлорки в течение 2-3 минут, или пока эмбрионов всплывают на поверхность отбеливателем. Тщательно промойте и промокните ddH20 эмбрионов на бумажное полотенце. Использование щипцов, подобрать сетку вставить которая покрыта dechorionated эмбрионов и поместить в фиксатор решение, позволяющее эмбрионов падать из сетки. Разрешить эмбрионов исправить в течение 1,5 часа при температуре 4 ° С при перемешивании на Nutator. Подготовка чашку Петри выстроились с двухсторонней ленты. Удалить эмбрионов из фиксатора использованием пипетки Пастера и разместить их на пленку поверхности Петри dish.Transfer эмбрионов в минимальном количестве фиксирующий решение, чтобы избежать гептана в фиксатор от растворения клея ленты. Встряхните чашке Петри, чтобы один слой эмбрионов. Место чашки Петри в капот, пока гептан испаряется. Добавьте достаточно PBS + 0,1% Tween20 для покрытия эмбрионов. Ручной devitellinize поздней стадии 16 эмбрионов при вскрытии микроскоп с тупой иглой вольфрама. Восстановление эмбрионы с пипеткой Пастера в 1,5 трубки микроцентрифужную мл. Шаги 5-7 выполняются в этом микроцентрифужную трубки. Промойте эмбрионы в 0,1 М какодилатном буфере, рН 7,4, а затем после исправления в растворе, содержащем 1% осмия в 0,1 М какодилатном буфере, рН 7,4 в течение 1 часа при комнатной температуре. Промыть эмбрионы с 0,1 какодилатном буфере, рН 7,4. Дегидрировать эмбрионов в градуированных серии этанола и ацетона. Дегидрировать эмбрионов с 50% этанола в течение 10 минут, затем 70% этанолом в течение 10 минут. Затем обезвоживают в 90% ацетоном в течение 10 минут, а два 100%-ным ацетоном с шагом 10 минут каждый. Удалить ацетоном, а затем начать процесс инфильтрации, добавив 1:01 Epon-Сперр смолы: ацетон, чтобы эмбрионы. Микроволновые в течение трех минут с помощью Pelco Biowave Pro микроволновой сохраняя при этом образце под вакуумным давлением. Применение вакуумного давления на образец еще на пять минут после микроволновой закончилась. Биржа смолы 1:1, ацетон со 100%-Epon Сперр смолы и СВЧ снова под вакуумным давлением. Бирже 100% Epon-Сперр смолы последний раз, и микроволновая печь под вакуумным давлением. С помощью пипетки Пастера, эмбрионы переносятся с микроцентрифужную трубки плесень вложение силикона. Совместите эмбрионов в ряд так, что задний конец эмбриона совпадет с коническим краем формы. Выпекать в 70 ° С духовку на ночь. Удалить образец и подготовиться к секционирования. Начало резки 1 мкм разделы, используя Алмазный историка нож и Richert Ultracut E Микротом. Принять к сведению, когда первая часть эмбриона будет достигнута. С этой точки, вырезать 100 мкм в образце. Удалить раздел с помощью цикла, и место на предметное стекло. Кратко тепла раздел на горячей плите. Пятно секции, используя капли метиленового синего. Под световым микроскопом идентифицировать сердце просвет. Вырезать 90-нм разделы, используя Алмазный Ультра 45 ° нож и Richert Ultracut E Микротом. Возьмите несколько разделов на медную сетку. Решетки окрашивали 3% уранилацетата насыщенным в 50% этаноле в течение десяти минут, а затем промыть три раза в бидистиллированной воде. Затем, сетки окрашивали цитратом свинца (0.04gms растворенного в 10 мл бидистиллированной воды и 100 мл 10М NaOH) в течение 2,5 минут в камеру, содержащую гранулы NaOH для создания СО 2-среды, свободной. Сетки промыть три раза в бидистиллированной воде. Разделы, рассматривались с JEOL 1200EX электронного микроскопа в 80Kv, а также сфотографироваться с камеры AMT цифровой.

Discussion

Морфогенез сердца трубка дрозофилы эмбриональных стала ценным модельной системой для изучения клеточной адгезии и изменения формы клеток в процессе эмбрионального развития. Одна из проблем, возникающих в изучение этой структуры является то, что просвет трубки сердца трудно представить себе в целом эмбрионов монтирования. Техника показала в этом видео, которое было взято из ранее описанных процедур 1-2, оказалась успешной в эффективном и надежном анализе значительного числа генотипов для трубки сердца и просвета формирование 3.

Acknowledgements

Наша работа по формирования сердца трубка была поддержана Национальным научным фондом Грант (премия ID 0744165) в СГК

References

  1. Tepass, U., Hartenstein, V. The Development of Cellular Junctions in the Drosophila embryo. Dev. Biol. 161, 563-596 (1994).
  2. Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, S. . Drosophila Protocols. , (2000).
  3. Santiago-Martinez, E., Soplop, N. H., Patel, R., Kramer, S. G. Repulsion by Slit and Roundabout prevents Shotgun/E-cadherin-mediated cell adhesion during Drosophila heart tube lumen formation. J. Cell Biol. 182, 241-248 (2008).

Play Video

Citer Cet Article
Soplop, N. H., Patel, R., Kramer, S. G. Preparation of embryos for Electron Microscopy of the Drosophila embryonic heart tube. J. Vis. Exp. (34), e1630, doi:10.3791/1630 (2009).

View Video