Presentamos un protocolo para la producción de alto rendimiento de canales vasculares con tamaños flexibles y patrones deseados en una placa estándar de seis pocillos utilizando tecnología de bioimpresión 3D, conocida como vasos en una placa (VOP). Esta plataforma tiene el potencial de avanzar en el desarrollo de terapias para los trastornos asociados con el endotelio comprometido.
La permeabilidad vascular es un factor clave en el desarrollo de terapias para los trastornos asociados con el endotelio comprometido, como la disfunción endotelial en las arterias coronarias y el deterioro de la función de la barrera hematoencefálica. Las técnicas de fabricación existentes no replican adecuadamente la variación geométrica de las redes vasculares en el cuerpo humano, lo que influye sustancialmente en la progresión de la enfermedad; Además, estas técnicas a menudo implican procedimientos de fabricación de varios pasos que dificultan la producción de alto rendimiento necesaria para las pruebas farmacológicas. Este artículo presenta un protocolo de bioimpresión para crear múltiples tejidos vasculares con los patrones y tamaños deseados directamente en placas estándar de seis pocillos, superando los desafíos existentes de resolución y productividad en la tecnología de bioimpresión. Se estableció un enfoque de fabricación simplificado para construir seis canales huecos y perfusibles dentro de un hidrogel, que posteriormente se recubrieron con células endoteliales de la vena umbilical humana para formar un endotelio funcional y maduro. La naturaleza controlada por ordenador de la bioimpresión 3D garantiza una alta reproducibilidad y requiere menos pasos de fabricación manual que los métodos tradicionales. Esto pone de manifiesto el potencial de VOP como plataforma eficiente y de alto rendimiento para modelar la permeabilidad vascular y avanzar en el descubrimiento de fármacos.
La red vascular en todo el cuerpo humano funciona como una barrera de transporte crucial al regular dinámicamente el intercambio de moléculas y células entre la sangre y los tejidos circundantes. Esta regulación es esencial para prevenir el edema tisular y permitir el intercambio selectivo de nutrientes y células, apoyando así el metabolismo y la homeostasis de los tejidos1. La alteración de la permeabilidad endotelial, un factor en muchas condiciones de salud, afecta tanto a la gravedad de la enfermedad como a la eficacia del tratamiento2. El endotelio vascular actúa como una barrera selectiva, facilitando la transferencia entre vasos, tejidos y órganos. Esta regulación involucra varios mecanismos, como el filtrado básico de solutos y moléculas pequeñas, la disrupción intencional de la barrera vascular y la influencia de moléculas como prostaglandinas y factores de crecimiento en los niveles de permeabilidad3.
Los factores clave en esta regulación incluyen las uniones de células endoteliales, la migración de leucocitos y la funcionalidad de la barrera hematoencefálica4. Dada su complejidad, el proceso varía en diferentes entornos, involucrando varios tipos de vasos sanguíneos y utilizando distintas vías anatómicas. Comprender los fundamentos biológicos de la permeabilidad vascular es crucial para diseñar enfoques terapéuticos para tratar las afecciones asociadas con la permeabilidad vascular anormal. Mantener la permeabilidad vascular es crucial para la salud del sistema vascular y los tejidos circundantes; En consecuencia, el deterioro de esta función conduce a la disfunción endotelial, un estado en el que el endotelio pierde su funcionalidad normal.
La disfunción endotelial es precursora de varias enfermedades humanas prevalentes, como la hipertensión, la enfermedad de las arterias coronarias, la diabetes y el cáncer 5,6,7. Esta afección puede presentarse de varias maneras, incluyendo una disminución de la vasodilatación, un aumento de la permeabilidad de los vasos y una tendencia hacia un estado proinflamatorio. Este estado patológico es la etapa más temprana de varios problemas cardiovasculares críticos, como la enfermedad de las arterias coronarias, el accidente cerebrovascular y la enfermedad arterial periférica8, que continúan siendo las principales causas de mortalidad en los Estados Unidos1. La disfunción endotelial afecta a la salud cardiovascular, así como a la barrera hematoencefálica (BHE) y desempeña un papel importante en la progresión de diversos trastornos neurológicos. La disfunción puede aumentar la permeabilidad de la BBB, permitiendo así que las toxinas, los patógenos y las células inmunitarias se infiltren en el sistema nervioso central y contribuyan a trastornos neurológicos como el accidente cerebrovascular, la enfermedad de Alzheimer, la esclerosis múltiple y las infeccionescerebrales.
La disfunción endotelial en la diabetes se caracteriza por el compromiso de la capacidad del endotelio para regular el tono vascular y producir mediadores vasodilatadores, como el óxido nítrico, lo que conduce a una vasodilatación alterada10. Esta condición se ve exacerbada por vías inducidas por la hiperglucemia, como la activación de la proteína quinasa C y el estrés oxidativo, contribuyendo significativamente a la progresión de la enfermedad vascular diabética11. Además, se ha descubierto que un entorno inflamatorio mejora la adhesión de las células tumorales a las células endoteliales microvasculares del cerebro, mientras que se ha informado que un endotelio permeable es un factor importante en la metástasis del cáncer12,13. Se ha descubierto que la geometría de los vasos sanguíneos influye directamente en la metástasis del cáncer cerebral. Las células tumorales se adhieren preferentemente a las áreas de mayor curvatura de los vasos sanguíneos7. Este hallazgo subraya la importancia de la geometría vascular en la metástasis del cáncer. Más importante aún, en condiciones como la fibrosis y el cáncer, la alteración de la función de la barrera endotelial no solo desempeña un papel en el desarrollo de la enfermedad, sino que también dificulta la efectividad del tratamiento al dificultar la administración adecuada de medicamentos14. La investigación sobre la permeabilidad vascular es crucial para avanzar en el tratamiento de las enfermedades cardiovasculares y ofrecer información sobre el manejo de otras enfermedades que implican una función vascular comprometida.
Dado el papel crucial de la permeabilidad vascular en la salud y la enfermedad, una considerable cantidad de investigación se ha centrado en examinar la naturaleza selectiva de la barrera endotelial para el desarrollo terapéutico mediante el uso de modelos animales, junto con plataformas tradicionales de pruebas in vitro en 2D y 3D. Sin embargo, los modelos animales tienen limitaciones debido a las diferencias específicas de cada especie y a cuestiones éticas, así como a los altos costos15,16. Por ejemplo, Pfizer, en 2004, declaró que durante los 10 años anteriores, había gastado más de 2.000 millones de dólares en desarrollos de fármacos que mostraban efectos prometedores en modelos animales, pero que finalmente fracasaronen las etapas avanzadas de pruebas en humanos. Además, los modelos 2D tradicionales no imitan con precisión la arquitectura tridimensional (3D) y la compleja estructura geométrica de los canales vasculares.
Con los avances en las tecnologías de biofabricación, se han realizado grandes esfuerzos para fabricar canales vasculares mientras se recapitula la arquitectura 3D. Los canales vasculares a microescala se pueden fabricar de manera efectiva dentro de chips microfluídicos mediante el uso de litografía blanda, lo que ofrece una ventaja del análisis en tiempo real18,19. Se pueden utilizar métodos alternativos, como la fundición en hidrogel o el envoltorio de láminas de celdas alrededor de un molde o mandril, para crear estructuras tubulares independientes con el diámetro deseado20,21. Sin embargo, estos métodos tienen limitaciones; Por ejemplo, los chips microfluídicos están restringidos a configuraciones de microcanales, y la fundición de hidrogel alrededor de un molde no replica eficazmente múltiples geometrías.
Con la aparición de la tecnología de bioimpresión3D 22, se ha hecho posible replicar geometrías complejas mediante el depósito preciso de diversos materiales de hidrogel basados en matriz extracelular (ECM)23,24. Algunos métodos de bioimpresión, como los que utilizan boquillas dispuestas concéntricamente, por ejemplo, coaxial y triaxial25,26, no pueden crear tubos bifurcados; Sin embargo, las estructuras complejas se pueden lograr con métodos de patrones de sacrificio27. No se ha demostrado que ninguno de estos métodos de bioimpresión permita un modelado in vitro de alto rendimiento, un requisito crucial para la investigación farmacológica en el descubrimiento de fármacos. En este trabajo, presentamos un método para fabricar eficientemente canales vasculares endotelizados con un control eficiente sobre las dimensiones.
Establecimos un enfoque sencillo utilizando placas de seis pocillos disponibles en el mercado, combinadas con un método de patrón de sacrificio en el que una bioimpresora fabrica canales vasculares de los tamaños y patrones deseados dentro de un hidrogel ECM. Se sembraron células endoteliales de la vena umbilical humana (HUVEC) para endotelizar estos canales y evaluar la funcionalidad del endotelio a través de un ensayo de permeabilidad. Este diseño permite la perfusión sin bomba mediante la creación de depósitos de medios a ambos lados del canal y utiliza el flujo impulsado por la gravedad con la ayuda de un balancín 2D de uso común para imitar la cultura dinámica. Este enfoque elimina la necesidad de bombas peristálticas y facilita la escalabilidad de esta plataforma para aplicaciones de alto rendimiento. La naturaleza controlada por ordenador de la tecnología de bioimpresión 3D también agiliza el proceso de fabricación, disminuyendo así la probabilidad de errores durante la fabricación. El modelo VOP se muestra prometedor como una herramienta valiosa para las pruebas farmacológicas en el descubrimiento de fármacos.
Aprovechando la precisión, la automatización y la naturaleza controlada por computadora de la tecnología de bioimpresión 3D, establecimos un método simplificado para fabricar canales vasculares en placas estándar de seis pocillos, que se eligieron por su compatibilidad con lectores de microplacas comerciales y configuraciones de imágenes de microscopio. El diseño de la placa puede acomodar canales de varios tamaños y un volumen suficiente de medios para el crecimiento de canales…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue apoyado por las subvenciones de la Fundación Nacional de Investigación de Corea (NRF) financiadas por el gobierno de Corea (Ministerio de Ciencia y TIC, MSIT) [No. NRF-2019R1C1C1009606; No. 2020R1A5A8018367; y No. RS-2024-00423107]. Esta investigación fue apoyada por el Programa de Desarrollo de Tecnología Bio y Médica de la NRF financiadas por el MSIT [No. NRF-2022M3A9E4017151 y No. NRF-2022M3A9E4082654]. Este trabajo contó con el apoyo del Programa de Innovación Tecnológica [Nº 20015148] y el Proyecto Alquimista [Nº 20012378] financiado por el Ministerio de Comercio, Industria y Energía (MOTIE, Corea). Este trabajo también contó con el apoyo del Instituto Coreano de Planificación y Evaluación de Tecnología en Alimentos, Agricultura y Silvicultura (IPET) a través del Programa de Tecnologías de Convergencia Agrícola y Alimentaria para el Desarrollo de Recursos Humanos de Investigación, financiado por el Ministerio de Agricultura, Alimentación y Asuntos Rurales (MAFRA) [No. RS-2024-00397026].
10 mL Serological Pipette | SPL | SPL 91010 | |
10 mL syringe | Shinchang Medical | ||
15 mL conical tube | SPL | 50015 | |
3D Bioprinter | T&R Biofab | 3DX-Printer | |
6-well plate | SPL | 37206 | |
Biological Safety Cabinets | CHC LAB | PCHC-777A2-04, | |
Brightfield Inverted Microscopes | Leica | DMi1 | |
Cell Counting Kit (CCK8) | GlpBio | GK10001 | |
Cell Counting Kit (CCK8) | GlpBio | GK10001 | |
Cell Culture Flask 75T | SPL | 70075 | |
Corning Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix, LDEV-free, 10 mL | Corning | 354230 | |
Distilled water | |||
DMEM/F12 | Gibco | 11320033 | |
DMSO, Cell Culture Grade | Sigma aldrich | D2438 | |
Dow-Corning, PDMS-Sylgard 184a Kit | DOW | DC-184 | |
DOWSIL SE 1700 Clear W/C 1.1 KG Kit | DOW | 2924404 | |
D-PBS – 1x | Welgene | LB001-01 | |
Endothelial Cell Growth Medium MV 2 (Ready to use) | Promocell | C-22022 | |
Eppendorf Micro pipette(1000,200,100,20,10) | eppendorf | ||
Ethyl Alcohol 99.9% | Duksan | D5 | |
Excel | Microsoft | ||
Fibrinogen from bovine plasma | Sigma Aldrich | F8630-1G | |
FITC Dextran 70 kDa | Sigma Aldrich | 46945-100MG-F | |
Fluorescent beads (1.0 μm, green) | Sigma Aldrich | L1030-1ML | |
GelMA-powder (Gelatin methacrylate) 50 g | 3D Materials | 20JT29 | |
Gibco, Recovery Cell Culture Freezing Medium, 50 mL | Gibco | ||
HUVECs (Human Umbillical Vein Endothelial Cells) | Promocell | ||
ImageJ software | NIH | ||
Incubator | Thermo SCIENTIFIC | Forma STERI-CYCLE i160 CO2 Incubator | |
Invitrogen, Live/dead viability/cytotoxicity Kit (for mammalian cells) | Thermo Fisher | L3224 | |
Lithium Phenyl (2,4,6-trimethylbenzoyl) phosphate powder | Tokoyo Chemical Industry CO. | 85073-19-4 | |
Marienfeld Superior, Counting chamber cover | Marienfeld Superior | ||
Marienfeld Superior, Hemocytometer, cell counting chamber | Marienfeld Superior | HSU-0650030 | |
Microcentrifuge | eppendorf | Centrifuge 5920 R | |
NCViewer.com | |||
Nitrogen tank | WORTHINGTON INDUSTRIES | LS750 | |
Omnicure UV Laser | EXCELITAS | SERIES 1500 | |
Parafilm M | amcor | PM-996 | |
Penicillin-Streptomycin Solution (100x) | GenDEPOT | CA005-010 | |
Planetary Mixer | THINKY CORPORATION, japan | ARE-310 | |
Plasma treatment machine | FEMTO SCIENCE | CUTE-1MPR | |
Pluronic F-127 | Sigma aldrich | P2443-250G | |
Pre-made buffer, (P2007-1) 10x PBS | Biosesang | PR4007-100-00 | |
Reagent storage cabinet | ZIO FILTER TECH | SC2-30F-1306D1-BC | |
Real time Live cell Imaging Microscope | Carl ZEISS | ||
Refrigerator | SAMSUNG | RT50K6035SL | |
ROCKER 2D digital | IKA | 4003000 | |
Scoop-Spatula | CacheBy | SL-SCO7001-EA | |
sigma,Trypsin-EDTA solition, 0.25% | Sigma aldrich | T4049-100ML | |
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) | Thermo Fisher scientific | 151-21-3 | |
Syringe Barrel Tip Cap | FISNAR | 3051806 | |
Tally counter | Control Company | C23-147-050 | |
Tapered Nozzle (18 G) | Mushashi | TPND-18G-U | |
Tapered Nozzle (22 G) | Mushashi | TPND-22G-U | |
Tapered nozzle 20 G | Musashi | TPND-20G-U | |
Thrombin from bovine plasma | Sigma Aldrich | T7326-1KU | |
Timer, 4-channel | ETL | SL.Tim3005 | |
Trypan Blue Solution 0.4% | Gibco | 15250061 | |
Trypsin Neutralizing Solution | Promocell | C-41120 | |
UG 24 mL UG ointment jar | Yamayu | No. 3-53 | |
UG 58 mL UG ointment jar | Yamayu | No. 3-55 | |
Water Bath | DAIHAN Scientific | WB-11 | |
Weight machine | Sartorius | bce2241-1skr |