Summary

Método de bioimpresión de alto rendimiento para modelar la permeabilidad vascular en placas estándar de seis pocillos con flexibilidad de tamaño y patrón

Published: August 16, 2024
doi:

Summary

Presentamos un protocolo para la producción de alto rendimiento de canales vasculares con tamaños flexibles y patrones deseados en una placa estándar de seis pocillos utilizando tecnología de bioimpresión 3D, conocida como vasos en una placa (VOP). Esta plataforma tiene el potencial de avanzar en el desarrollo de terapias para los trastornos asociados con el endotelio comprometido.

Abstract

La permeabilidad vascular es un factor clave en el desarrollo de terapias para los trastornos asociados con el endotelio comprometido, como la disfunción endotelial en las arterias coronarias y el deterioro de la función de la barrera hematoencefálica. Las técnicas de fabricación existentes no replican adecuadamente la variación geométrica de las redes vasculares en el cuerpo humano, lo que influye sustancialmente en la progresión de la enfermedad; Además, estas técnicas a menudo implican procedimientos de fabricación de varios pasos que dificultan la producción de alto rendimiento necesaria para las pruebas farmacológicas. Este artículo presenta un protocolo de bioimpresión para crear múltiples tejidos vasculares con los patrones y tamaños deseados directamente en placas estándar de seis pocillos, superando los desafíos existentes de resolución y productividad en la tecnología de bioimpresión. Se estableció un enfoque de fabricación simplificado para construir seis canales huecos y perfusibles dentro de un hidrogel, que posteriormente se recubrieron con células endoteliales de la vena umbilical humana para formar un endotelio funcional y maduro. La naturaleza controlada por ordenador de la bioimpresión 3D garantiza una alta reproducibilidad y requiere menos pasos de fabricación manual que los métodos tradicionales. Esto pone de manifiesto el potencial de VOP como plataforma eficiente y de alto rendimiento para modelar la permeabilidad vascular y avanzar en el descubrimiento de fármacos.

Introduction

La red vascular en todo el cuerpo humano funciona como una barrera de transporte crucial al regular dinámicamente el intercambio de moléculas y células entre la sangre y los tejidos circundantes. Esta regulación es esencial para prevenir el edema tisular y permitir el intercambio selectivo de nutrientes y células, apoyando así el metabolismo y la homeostasis de los tejidos1. La alteración de la permeabilidad endotelial, un factor en muchas condiciones de salud, afecta tanto a la gravedad de la enfermedad como a la eficacia del tratamiento2. El endotelio vascular actúa como una barrera selectiva, facilitando la transferencia entre vasos, tejidos y órganos. Esta regulación involucra varios mecanismos, como el filtrado básico de solutos y moléculas pequeñas, la disrupción intencional de la barrera vascular y la influencia de moléculas como prostaglandinas y factores de crecimiento en los niveles de permeabilidad3.

Los factores clave en esta regulación incluyen las uniones de células endoteliales, la migración de leucocitos y la funcionalidad de la barrera hematoencefálica4. Dada su complejidad, el proceso varía en diferentes entornos, involucrando varios tipos de vasos sanguíneos y utilizando distintas vías anatómicas. Comprender los fundamentos biológicos de la permeabilidad vascular es crucial para diseñar enfoques terapéuticos para tratar las afecciones asociadas con la permeabilidad vascular anormal. Mantener la permeabilidad vascular es crucial para la salud del sistema vascular y los tejidos circundantes; En consecuencia, el deterioro de esta función conduce a la disfunción endotelial, un estado en el que el endotelio pierde su funcionalidad normal.

La disfunción endotelial es precursora de varias enfermedades humanas prevalentes, como la hipertensión, la enfermedad de las arterias coronarias, la diabetes y el cáncer 5,6,7. Esta afección puede presentarse de varias maneras, incluyendo una disminución de la vasodilatación, un aumento de la permeabilidad de los vasos y una tendencia hacia un estado proinflamatorio. Este estado patológico es la etapa más temprana de varios problemas cardiovasculares críticos, como la enfermedad de las arterias coronarias, el accidente cerebrovascular y la enfermedad arterial periférica8, que continúan siendo las principales causas de mortalidad en los Estados Unidos1. La disfunción endotelial afecta a la salud cardiovascular, así como a la barrera hematoencefálica (BHE) y desempeña un papel importante en la progresión de diversos trastornos neurológicos. La disfunción puede aumentar la permeabilidad de la BBB, permitiendo así que las toxinas, los patógenos y las células inmunitarias se infiltren en el sistema nervioso central y contribuyan a trastornos neurológicos como el accidente cerebrovascular, la enfermedad de Alzheimer, la esclerosis múltiple y las infeccionescerebrales.

La disfunción endotelial en la diabetes se caracteriza por el compromiso de la capacidad del endotelio para regular el tono vascular y producir mediadores vasodilatadores, como el óxido nítrico, lo que conduce a una vasodilatación alterada10. Esta condición se ve exacerbada por vías inducidas por la hiperglucemia, como la activación de la proteína quinasa C y el estrés oxidativo, contribuyendo significativamente a la progresión de la enfermedad vascular diabética11. Además, se ha descubierto que un entorno inflamatorio mejora la adhesión de las células tumorales a las células endoteliales microvasculares del cerebro, mientras que se ha informado que un endotelio permeable es un factor importante en la metástasis del cáncer12,13. Se ha descubierto que la geometría de los vasos sanguíneos influye directamente en la metástasis del cáncer cerebral. Las células tumorales se adhieren preferentemente a las áreas de mayor curvatura de los vasos sanguíneos7. Este hallazgo subraya la importancia de la geometría vascular en la metástasis del cáncer. Más importante aún, en condiciones como la fibrosis y el cáncer, la alteración de la función de la barrera endotelial no solo desempeña un papel en el desarrollo de la enfermedad, sino que también dificulta la efectividad del tratamiento al dificultar la administración adecuada de medicamentos14. La investigación sobre la permeabilidad vascular es crucial para avanzar en el tratamiento de las enfermedades cardiovasculares y ofrecer información sobre el manejo de otras enfermedades que implican una función vascular comprometida.

Dado el papel crucial de la permeabilidad vascular en la salud y la enfermedad, una considerable cantidad de investigación se ha centrado en examinar la naturaleza selectiva de la barrera endotelial para el desarrollo terapéutico mediante el uso de modelos animales, junto con plataformas tradicionales de pruebas in vitro en 2D y 3D. Sin embargo, los modelos animales tienen limitaciones debido a las diferencias específicas de cada especie y a cuestiones éticas, así como a los altos costos15,16. Por ejemplo, Pfizer, en 2004, declaró que durante los 10 años anteriores, había gastado más de 2.000 millones de dólares en desarrollos de fármacos que mostraban efectos prometedores en modelos animales, pero que finalmente fracasaronen las etapas avanzadas de pruebas en humanos. Además, los modelos 2D tradicionales no imitan con precisión la arquitectura tridimensional (3D) y la compleja estructura geométrica de los canales vasculares.

Con los avances en las tecnologías de biofabricación, se han realizado grandes esfuerzos para fabricar canales vasculares mientras se recapitula la arquitectura 3D. Los canales vasculares a microescala se pueden fabricar de manera efectiva dentro de chips microfluídicos mediante el uso de litografía blanda, lo que ofrece una ventaja del análisis en tiempo real18,19. Se pueden utilizar métodos alternativos, como la fundición en hidrogel o el envoltorio de láminas de celdas alrededor de un molde o mandril, para crear estructuras tubulares independientes con el diámetro deseado20,21. Sin embargo, estos métodos tienen limitaciones; Por ejemplo, los chips microfluídicos están restringidos a configuraciones de microcanales, y la fundición de hidrogel alrededor de un molde no replica eficazmente múltiples geometrías.

Con la aparición de la tecnología de bioimpresión3D 22, se ha hecho posible replicar geometrías complejas mediante el depósito preciso de diversos materiales de hidrogel basados en matriz extracelular (ECM)23,24. Algunos métodos de bioimpresión, como los que utilizan boquillas dispuestas concéntricamente, por ejemplo, coaxial y triaxial25,26, no pueden crear tubos bifurcados; Sin embargo, las estructuras complejas se pueden lograr con métodos de patrones de sacrificio27. No se ha demostrado que ninguno de estos métodos de bioimpresión permita un modelado in vitro de alto rendimiento, un requisito crucial para la investigación farmacológica en el descubrimiento de fármacos. En este trabajo, presentamos un método para fabricar eficientemente canales vasculares endotelizados con un control eficiente sobre las dimensiones.

Establecimos un enfoque sencillo utilizando placas de seis pocillos disponibles en el mercado, combinadas con un método de patrón de sacrificio en el que una bioimpresora fabrica canales vasculares de los tamaños y patrones deseados dentro de un hidrogel ECM. Se sembraron células endoteliales de la vena umbilical humana (HUVEC) para endotelizar estos canales y evaluar la funcionalidad del endotelio a través de un ensayo de permeabilidad. Este diseño permite la perfusión sin bomba mediante la creación de depósitos de medios a ambos lados del canal y utiliza el flujo impulsado por la gravedad con la ayuda de un balancín 2D de uso común para imitar la cultura dinámica. Este enfoque elimina la necesidad de bombas peristálticas y facilita la escalabilidad de esta plataforma para aplicaciones de alto rendimiento. La naturaleza controlada por ordenador de la tecnología de bioimpresión 3D también agiliza el proceso de fabricación, disminuyendo así la probabilidad de errores durante la fabricación. El modelo VOP se muestra prometedor como una herramienta valiosa para las pruebas farmacológicas en el descubrimiento de fármacos.

Protocol

1. Generación de código G para la bioimpresora Para generar y visualizar la ruta de impresión, visite una herramienta de simulación de código G en línea (por ejemplo, NCviewer). Haga clic en el icono Nuevo archivo en la interfaz para crear un nuevo archivo de código G. Genere una ruta de impresión escribiendo manualmente los comandos de código G para el canal de sacrificio y la cámara de silicio. Utilice las dimens…

Representative Results

La plataforma VOP, con flexibilidad de tamaño y patrón, se fabricó con un sistema de bioimpresión de múltiples cabezales. Los canales, tanto huecos como con capacidad de perfusión, se sembraron con HUVEC para facilitar la endotelización y posteriormente se evaluaron con un ensayo de permeabilidad (Figura 1A). Para demostrar la capacidad de fabricación multiescala de este método, imprimimos tres configuraciones distintas: recta, bifurcada y enrevesad…

Discussion

Aprovechando la precisión, la automatización y la naturaleza controlada por computadora de la tecnología de bioimpresión 3D, establecimos un método simplificado para fabricar canales vasculares en placas estándar de seis pocillos, que se eligieron por su compatibilidad con lectores de microplacas comerciales y configuraciones de imágenes de microscopio. El diseño de la placa puede acomodar canales de varios tamaños y un volumen suficiente de medios para el crecimiento de canales…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por las subvenciones de la Fundación Nacional de Investigación de Corea (NRF) financiadas por el gobierno de Corea (Ministerio de Ciencia y TIC, MSIT) [No. NRF-2019R1C1C1009606; No. 2020R1A5A8018367; y No. RS-2024-00423107]. Esta investigación fue apoyada por el Programa de Desarrollo de Tecnología Bio y Médica de la NRF financiadas por el MSIT [No. NRF-2022M3A9E4017151 y No. NRF-2022M3A9E4082654]. Este trabajo contó con el apoyo del Programa de Innovación Tecnológica [Nº 20015148] y el Proyecto Alquimista [Nº 20012378] financiado por el Ministerio de Comercio, Industria y Energía (MOTIE, Corea). Este trabajo también contó con el apoyo del Instituto Coreano de Planificación y Evaluación de Tecnología en Alimentos, Agricultura y Silvicultura (IPET) a través del Programa de Tecnologías de Convergencia Agrícola y Alimentaria para el Desarrollo de Recursos Humanos de Investigación, financiado por el Ministerio de Agricultura, Alimentación y Asuntos Rurales (MAFRA) [No. RS-2024-00397026].

Materials

10 mL Serological Pipette SPL SPL 91010
10 mL syringe  Shinchang Medical
15 mL conical tube SPL 50015
3D Bioprinter  T&R Biofab 3DX-Printer
6-well plate  SPL 37206
Biological Safety Cabinets CHC LAB PCHC-777A2-04, 
Brightfield Inverted Microscopes Leica DMi1
Cell Counting Kit (CCK8) GlpBio GK10001
Cell Counting Kit (CCK8) GlpBio GK10001
Cell Culture Flask 75T SPL 70075
Corning Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix, LDEV-free, 10 mL Corning 354230
Distilled water
DMEM/F12 Gibco 11320033
DMSO, Cell Culture Grade Sigma aldrich D2438
Dow-Corning, PDMS-Sylgard 184a Kit DOW DC-184
DOWSIL SE 1700 Clear W/C 1.1 KG Kit  DOW 2924404
D-PBS – 1x Welgene LB001-01
Endothelial Cell Growth Medium MV 2 (Ready to use) Promocell C-22022
Eppendorf Micro pipette(1000,200,100,20,10) eppendorf
Ethyl Alcohol 99.9% Duksan D5
Excel Microsoft
Fibrinogen from bovine plasma Sigma Aldrich F8630-1G
FITC Dextran 70 kDa Sigma Aldrich 46945-100MG-F
Fluorescent beads (1.0 μm, green) Sigma Aldrich L1030-1ML
GelMA-powder (Gelatin methacrylate) 50 g 3D Materials  20JT29
Gibco, Recovery Cell Culture Freezing Medium, 50 mL Gibco
HUVECs (Human Umbillical Vein Endothelial Cells) Promocell
ImageJ software NIH
Incubator Thermo SCIENTIFIC Forma STERI-CYCLE i160 CO2 Incubator
Invitrogen, Live/dead viability/cytotoxicity Kit (for mammalian cells) Thermo Fisher L3224
Lithium Phenyl (2,4,6-trimethylbenzoyl) phosphate powder  Tokoyo Chemical Industry CO. 85073-19-4 
Marienfeld Superior, Counting chamber cover Marienfeld Superior
Marienfeld Superior, Hemocytometer, cell counting chamber Marienfeld Superior HSU-0650030
Microcentrifuge eppendorf Centrifuge 5920 R
NCViewer.com
Nitrogen tank WORTHINGTON INDUSTRIES LS750
Omnicure UV Laser EXCELITAS SERIES 1500
Parafilm M amcor PM-996
Penicillin-Streptomycin Solution (100x) GenDEPOT CA005-010
Planetary Mixer THINKY CORPORATION, japan ARE-310
Plasma treatment machine FEMTO SCIENCE CUTE-1MPR
Pluronic F-127 Sigma aldrich P2443-250G
Pre-made buffer, (P2007-1) 10x PBS Biosesang PR4007-100-00
Reagent storage cabinet ZIO FILTER TECH SC2-30F-1306D1-BC
Real time Live cell Imaging Microscope Carl ZEISS
Refrigerator SAMSUNG RT50K6035SL
ROCKER 2D digital IKA 4003000
Scoop-Spatula CacheBy SL-SCO7001-EA
sigma,Trypsin-EDTA solition, 0.25% Sigma aldrich T4049-100ML
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) Thermo Fisher scientific 151-21-3
Syringe Barrel Tip Cap FISNAR 3051806
Tally counter Control Company  C23-147-050
Tapered Nozzle (18 G) Mushashi TPND-18G-U
Tapered Nozzle (22 G) Mushashi TPND-22G-U
Tapered nozzle 20 G Musashi TPND-20G-U
Thrombin from bovine plasma Sigma Aldrich T7326-1KU
Timer, 4-channel ETL SL.Tim3005
Trypan Blue Solution 0.4% Gibco 15250061
Trypsin Neutralizing Solution Promocell C-41120
UG 24 mL UG ointment jar Yamayu No. 3-53
UG 58 mL UG ointment jar Yamayu No. 3-55
Water Bath DAIHAN Scientific WB-11
Weight machine Sartorius bce2241-1skr

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Ahmad, A., Zobaida Akter, M., Kim, S., Choi, Y., Yi, H. High-Throughput Bioprinting Method for Modeling Vascular Permeability in Standard Six-well Plates with Size and Pattern Flexibility. J. Vis. Exp. (210), e66676, doi:10.3791/66676 (2024).

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