Summary

Snabb och effektiv anrikning av musens ryggmärgsmikroglia

Published: September 22, 2023
doi:

Summary

Mikroglia anses vara några av de mest mångsidiga cellerna i kroppen, kapabla till morfologisk och funktionell anpassning. Deras heterogenitet och multifunktionalitet gör det möjligt att upprätthålla hjärnans homeostas, samtidigt som de är kopplade till olika neurologiska patologier. Här beskrivs en teknik för rening av ryggmärgsmikroglia.

Abstract

Ryggraden definierar ett ryggradsdjur och formar ryggmärgskanalen, ett hålrum som omsluter och skyddar ryggmärgen. Korrekt utveckling och funktion av däggdjurens centrala nervsystem är i hög grad beroende av aktiviteten hos makrofager som kallas mikroglia. Mikroglia uppvisar heterogenitet och multifunktionalitet, vilket möjliggör distinkt genuttryck och beteende i ryggmärgen och hjärnan. Många studier har undersökt hjärnans mikroglias funktion och detaljerat beskrivit reningsmetoder i stor utsträckning. Reningen av mikroglia från ryggmärgen hos möss saknar dock en heltäckande beskrivning. Däremot saknar användningen av ett högrenat kollagenas, i motsats till ett oraffinerat extrakt, rapportering inom centrala nervsystemets vävnader. I denna studie avlägsnades kotpelaren och ryggmärgen från 8-10 veckor gamla C57BL/6-möss. Efterföljande nedbrytning använde ett högrenat kollagenas, och mikroglia-rening använde en densitetsgradient. Cellerna genomgick färgning för flödescytometri och bedömde viabilitet och renhet genom CD11b- och CD45-färgning. Resultaten gav en genomsnittlig viabilitet på 80 % och en genomsnittlig renhet på 95 %. Sammanfattningsvis involverade manipulation av mikroglia hos möss matsmältning med ett högrenat kollagenas, följt av en densitetsgradient. Detta tillvägagångssätt gav effektivt upphov till betydande populationer av ryggmärgsmikroglia.

Introduction

Det utmärkande kännetecknet för ryggradsdjur är ryggraden, där notokordet har ersatts av en sekvens av segmenterade ben som kallas ryggkotor, åtskilda av intervertebrala skivor. Denna följd av benmaterial formar ryggmärgskanalen, ett hålrum som omsluter och skyddar ryggmärgen. I släktet Rodentia bildas ryggraden vanligen av sju halskotor, tretton bröstkotor, sex ländkotor och ett varierande antal svanskotor 2,3. Ryggmärgens längd liknar ryggradens, och terminalfilum är en icke-nervös struktur som förankrar ryggmärgen till korsbenet. Dessutom går nervfibrer ut genom den intervertebrala foramen1.

Utvecklingen och funktionen av det centrala nervsystemet hos däggdjur beror i hög grad på aktiviteten hos nervsystemets inneboende makrofager, kallade mikroglia4. Även om mikroglia ursprungligen beskrevs som fagocyter som är bosatta i hjärnan, har ny forskning tillskrivit dessa celler många dynamiska funktioner 5,6. Microglias storlek varierar från 7 till 10 μm i homeostas; De anses vara bland de mest mångsidiga cellerna i kroppen och kan anpassa sig morfologiskt och funktionellt till sin ständigt föränderliga miljö7. Dessa celler uppvisar hög heterogenitet under både det embryonala och det vuxna stadiet8,9, medan de i vuxenstadiet också uppvisar komplex funktionell heterogenitet baserat på deras spatiotemporala sammanhang10. Mikroglias heterogenitet och multipla funktioner möjliggör differentiellt genuttryck och beteende i ryggmärgen och hjärnan. Det har visat sig att CD11b, CD45, CD86 och CCR9 uttrycks högre i ryggmärgen jämfört med hjärnan 8,9.

Det finns flera protokoll för isolering av cerebrala mikroglia11,12; Det finns dock bara ett fåtal för ryggmärgsmikroglia13,14. Att optimera en metod för att rena mikroglia från ryggmärgen underlättar utvecklingen av flera studier med fokus på att upptäcka mikroglias fysiologi. Detta protokoll syftar till att beskriva en enkel och mycket reproducerbar extraktion av ryggmärgen hos möss och rening av mikroglia (figur 1).

Protocol

Studien genomfördes i enlighet med den officiella mexikanska standarden NOM-062-ZOO-1999 och guiden för vård och användning av försöksdjur. Godkännande för studien erhölls från kommittéerna för forskning, etik och biosäkerhet vid Mexico Children’s Hospital (HIM/2023/006) och Research and Bioethics Committee of the General Hospital of Mexico Eduardo Liceaga (DI/21/501/04/62). Tre C57BL/6-möss i åldern 6 till 8 veckor erhölls från Mexico Children’s Hospital, där de föddes upp under isolerade förhålland…

Representative Results

Med hjälp av ryggmärgsvävnad från möss utfördes enzymatisk nedbrytning med hjälp av en blandning som var mycket berikad med kollagenas och termolysin. Den resulterande smälta vävnaden genomgick passage genom ett 40 μm filter för att eliminera osmält material. De insamlade cellerna berikades genom en Percoll-densitetsgradient, med 90 % i den nedre delen och 45 % i den övre delen. De mikroglia-berikade cellerna i gränsytan färgades sedan med CD45- och CD11b-antikroppar och utsattes för flödescytometrisk an…

Discussion

Många protokoll har utvecklats för studier av mikroglia på grund av deras betydelse för hjärnans homeostas. I dessa metoder kommer mikroglia vanligtvis från hjärnhalvorna hos embryonala eller neonatala råttor och möss17. Ett begränsat antal studier har behandlat rening av mikroglia från ryggmärgen hos vuxna möss13,14. Dessa tekniker involverar enzymatisk nedbrytning med kollagenas och/eller papain tillsammans med DNAse, ofta i…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av bidrag från det stipendium som beviljats av National Council of Science and Technology (CONACYT) (702361). Författarna erkänner Ph.D. programmet i biologiska kemiska vetenskaper vid National School of Biological Sciences vid National Polytechnic Institute.

Materials

15 mL collection tubes Corning, USA 430790
2 mL microtubes Axygen, USA MCT-200-G
2.4G2 anti-FcR BioLegend, USA 101302
50 mL collection tubes Corning, USA 430829
70% ethanol
Antibiotic-Antimycotic (penicillin, streptomycin, amphotericin b) Gibco, USA 15240062
Antibody CD11b eFluor 450 anti-mouse eBioscience, USA 48-0112
Antibody CD45 PerCP anti-mouse   BioLegend, USA 103130
Balanced salt solution (PBS) calcium- magnesium-free Corning, USA 46-013-CM
Blue Cell Strainer 40 μm Corning, USA 352340
Costar 6-well Clear Not Treated  Corning, USA CLS3736
Coverslips
Digital Heating Shaking Drybath  Thermo Scientific Digital HS Drybath, USA 88870001
Dissecting forceps for microsurgery FT by DUMONT
DNase Roche, USA 4536282001
Dulbecco´s Modified Eagle´s Medium-high glucose (DMEM)  Merck, USA D6429
Electric shaver
FACS tube Thermo, USA 352058
Fetal bovine serum (FBS) PAN Biotech, Alemania P30-3306
Flow cytometer Cytoflex  Beckman Coulter
Hank’s balanced salt solution  Merck, USA H2387
L-glutamine Corning, USA  15393631
Liberase TM  Roche, USA 5401119001
Neubauer chamber Counting Chambers China 1103
Pentobarbital
Percoll  Merck, USA 17089101 density gradient centrifugation 
Poly-L-lysine solution  Merck, USA P8920
Scalpel No. 25  HERGOM, Mexico H23
Snaplock Microcentrifuge Tubes 2 mL Axygen, USA 10011-680
Stereoscopic microscope Velab, Mexico HG927831
Straight surgical scissors (10 cm) HERGOM, Mexico
Straight Vannas scissors HERGOM, Mexico
Triton X100 Merck, USA X100
Trypan blue Stain 0.4%  Merck, USA 15250-061
Vortex mixer DLAB, China 8031102000
Zombie Aqua Fixable Viability Kit BioLegend, USA 423102 amine-reactive fluorescent dye staining 

Referencias

  1. Schröder, H., Schröder, , Moser, , Huggenberger, , et al. . Neuroanatomy of the Mouse. , 59-78 (2020).
  2. Sengul, G., et al. Cytoarchitecture of the spinal cord of the postnatal (P4) mouse. Anat Rec. 295, 837-845 (2012).
  3. Bab, I., et al. . Microtomographic atlas of the mouse skeleton. VIII, 205 (2007).
  4. Nayak, D., et al. Microglia development and function. Annu Rev Immunol. 32, 367-402 (2014).
  5. Martinez, F. O., et al. Macrophage activation and polarization. Front Biosci. 13, 453-461 (2008).
  6. Masuda, T., et al. Microglia heterogeneity in the single-cell era. Cell Rep. 30 (5), 1271-1281 (2020).
  7. Prinz, M. Microglia biology: one century of evolving concepts. Cell. 179 (2), 292-311 (2019).
  8. de Haas, A. H., et al. Region-specific expression of immunoregulatory proteins on microglia in the healthy CNS. Glia. 56 (8), 888-894 (2008).
  9. Xuan, F. L., et al. Differences of microglia in the brain and the spinal cord. Front Cell Neurosci. 13, 504 (2019).
  10. Paolicelli, R. Microglia states and nomenclature: A field at its crossroads. Neuron. 110 (21), 3458-3483 (2022).
  11. Li, Q., et al. Spinal IL-36γ/IL-36R participates in the maintenance of chronic inflammatory pain through astroglial JNK pathway. Glia. 67 (3), 438-451 (2019).
  12. Prinz, M., et al. Microglia and central nervous system-associated macrophages-from origin to disease modulation. Annu Rev Immunol. 39, 251-277 (2021).
  13. Yip, P. K., et al. Rapid isolation and culture of primary microglia from adult mouse spinal cord. J Neurosci Methods. 183 (2), 223-237 (2009).
  14. Akhmetzyanova, E. R., et al. Severity- and time-dependent activation of microglia in spinal cord injury. Int J Mo. Sci. 24 (9), 1-16 (2023).
  15. Mahadevan, V. Anatomy of the vertebral column. Surgery. 36 (7), 327-332 (2018).
  16. Krukowski, K., et al. Temporary microglia-depletion after cosmic radiation modifies phagocytic activity and prevents cognitive deficits. Sci Rep. 8 (1), 1-13 (2018).
  17. Cardona, A., et al. Isolation of murine microglial cells for RNA analysis or flow cytometry. Nat Protoc. 1, 1947-1951 (2006).
  18. Schmidt, V. M., et al. Comparison of the enzymatic efficiency of Liberase TM and tumor dissociation enzyme: effect on the viability of cells digested from fresh and cryopreserved human ovarian cortex. Reprod Biol Endocrinol. 16 (57), 1-14 (2018).
  19. Kusminski, C. M., et al. MitoNEET-parkin effects in pancreatic α- and β-cells, cellular survival, and intrainsular cross talk. Diabetes. 65 (6), 1534-1555 (2016).

Play Video

Citar este artículo
Gutiérrez-Román, C. I., Meléndez Camargo, M. E., García Rojas, C. C., Jimenez Olvera, M., Gutiérrez Román, S. H., Medina-Contreras, O. Rapid and Efficient Enrichment of Mouse Spinal Cord Microglia. J. Vis. Exp. (199), e65961, doi:10.3791/65961 (2023).

View Video