Summary

T4 Bakteriofag och E. coli interaktion i murintarmen: En prototypisk modell för att studera värd-bakteriofagdynamik in vivo

Published: January 26, 2024
doi:

Summary

Bakteriofager (fager), virus som infekterar bakterier, är en integrerad del av tarmmikrobiomet. Även om dessa symbiotiska invånare driver bakteriell kondition och populationsdynamik, är lite förstått om hur de påverkar tarmhomeostas och sjukdomar. Detta protokoll studerar isolerade T4-fager i en musmodell, som kan anpassas till andra-bakteriepar.

Abstract

Bakteriofager (fager) är virus som infekterar bakterier med art- och stamspecificitet och är de vanligaste biologiska enheterna i alla kända ekosystem. Inom bakteriesamhällen, som de som finns i tarmmikrobiotan, är fager inblandade i att reglera mikrobiotans populationsdynamik och driva bakteriell evolution. Det har funnits ett förnyat intresse för fagforskning under det senaste decenniet, delvis på grund av den värdspecifika dödande förmågan hos lytiska fager, som erbjuder ett lovande verktyg för att motverka det ökande hotet från antimikrobiellt resistenta bakterier. Dessutom tyder nya studier som visar att fager fäster vid tarmslem på att de kan ha en skyddande roll för att förhindra bakterieinvasion i det underliggande epitelet. Det är viktigt att notera att störda fasom, precis som bakteriella mikrobiom, har förknippats med försämrade resultat vid sjukdomar som inflammatorisk tarmsjukdom. Tidigare studier har visat att fager kan modulera mikrobiomet hos djur och människor genom fekala filtrattransplantationer, vilket gynnar värdens hälsa. Med den senaste vågen av forskning kommer nödvändigheten av att upprätta och standardisera protokoll för att studera fager i samband med tarmmikrobiomet. Detta protokoll tillhandahåller en uppsättning procedurer för att studera isolerade T4-fager och deras bakterievärd, Escherichia coli, i samband med musens mag-tarmkanal. Metoderna som beskrivs här beskriver hur man utgår från ett faglysat, administrerar det till möss och bedömer effekter på bakteriella värd- och fagnivåer. Detta protokoll kan modifieras och tillämpas på andra-bakteriepar och ger en utgångspunkt för att studera värd-fagdynamik in vivo.

Introduction

Bakteriofager, eller fager, är virus som infekterar och dödar bakterier med art- och stamnivåspecificitet1. Fager spelar viktiga roller inom komplexa bakteriesamhällen som tarmmikrobiotan, där de har varit inblandade i att reglera populationsdynamik och driva bakteriell kondition2. Under det senaste decenniet har det funnits ett förnyat intresse för fagforskning på grund av ökningen av antimikrobiellt resistenta patogener3 och potentialen för fagterapi som en alternativ behandlingsstrategi. Under de senaste åren har lytiska fagcocktails använts intravenöst med viss framgång vid allvarliga, antibiotikaresistenta bakteriella septiska infektioner hos människor 3,4. Oral fagterapi har också föreslagits som ett potentiellt alternativ till antibiotika för att behandla tarminfektioner och inflammation. Dessutom har fager varit inblandade i framgången för fekala filtrattransplantationer (FFT), som är fekala mikrobiotapreparat som har filtrerats för att avlägsna bakterier, vid behandling av återkommande Clostridioides difficile-infektion (rCDI)5,6, inflammatoriska tarmsjukdomar (IBD)7,8 och nekrotiserande enterokolit hos för tidigt födda grisar9. Med tanke på dessa resultat är det viktigt att ta hänsyn till interaktioner både mellan fager och tarmmikrobiotan, och fager och däggdjursvärden, eftersom tillsats av nya fager i ett redan existerande samhälle kan ha indirekta effekter på samhället som helhet, och inte bara dess målbakterier 2,10.

Studien av faginteraktioner med deras målbakterier in vitro har visat sig vara användbar för att förstå mekanismerna och effekterna av- och bakterieinteraktioner i tarmen. I denna miljö har det visats att Escherichia coli-specifika T4-fager av ordningen Caudovirales kräver immunglobulin (Ig)-liknande domäner belägna i högantigena yttre kapsidproteiner (Hoc) på virionytan för att fästa vid tarmslem11. Dessutom har transwell-analyser visat att T4-fager kan interagera med epitelcellkulturer och translokera genom cellager genom makropinocytos12,13. Dessa resultat stöder hypotesen att fager kan interagera med sin metazoiska värd, även om de är oförmögna att infektera eukaryota celler. Dessa modeller, även om de är användbara, saknar hela skalan av komplexa interaktioner som uppstår i ett tarmekosystem som krävs för en omfattande utforskning av den tredelade interaktionen mellan fager, bakterier och metazovärden.

Musmodeller är ett viktigt verktyg för att undersöka fager i komplexa miljöer. En önskvärd tillämpning av fagadministrering är som en alternativ strategi för att behandla antimikrobiellt resistenta infektioner eller patogener associerade med kroniska inflammatoriska sjukdomar, inklusive IBD. Ny litteratur tyder dock på att fagbeteende in vitro inte fullt ut representerar in vivo-funktioner. Buttimer et al.14 visade att en fagcocktail kunde utarma de riktade bakterierna i ett förenklat humant mikrobiotakonsortium in vitro, men kunde inte replikeras in vivo i gnotobiotiska möss koloniserade med samma bakterie-fagkonsortium. Dessutom, i ett konventionellt musmikrobiom, ledde T7-till selektiv utarmning av dess måltarmbakterier, även om gradvis återhämtning observerades över tid, vilket tyder på utvecklad resistens15. Andra studier har visat samexistens av oralt administrerade fager och deras bakteriestammar in vivo 2,16. Utöver/bakterie-samexistens ledde fagadministrering till omfattande förändringar i den övergripande sammansättningenoch funktionen av mikrobiotasamhället. Detta är relevant i sjukdomsmiljöer eftersom flera studier har funnit samband mellan ökad relativ förekomst av Caudovirales och IBD 7,8,17 som var oberoende av förändringar i bakteriell förekomst7. Det är fortfarande okänt om detta är en drivkraft eller konsekvens av sjukdomspatogenesen.

Historiskt har fagforskningen fokuserat på relationen mellan en och dess målbakterie. Det är dock också viktigt att ta hänsyn till potentiella interaktioner mellan och slemhinnan, epitelet och immunsystemet hos den metazoiska värden. Dessa interaktioner spelar alla en viktig roll i det övergripande svaret på tarmfaginfektion. För att demonstrera detta har fager studerats med hjälp av bakteriefria (GF) möss för att belysa deras inverkan på immunsystemet utan inblandning av mikrobiotan8. I detta system detekterades fagnukleinsyror av toll-liknande receptorer (TLR) belägna i endosomer av fagocytiska immunceller (makrofager och dendritiska celler). Detta aktiverade nedströms signalering och stimulerade T-cellsberoende produktion av interferon (IFN)-γ8 eller typ I IFN18. Dessutom implicerade Fluckiger et al.19 minnes-CD8+ T-celler i igenkänningen av fagkodade (prophage) antigener, vilket resulterade i T-cellskorsreaktivitet med tumörantigener, vilket resulterade i minskad tumörbörda. Slutligen har fagspecifik antikroppsproduktion dokumenterats i musstudier där fager levererades till djurmodeller på ett kontinuerligt sätt genom dricksvatten 8,20, eller genom upprepad oral sondmatning under flera månader20, vilket visar fagproteinernas förmåga att främja humorala immunsvar. Även om dessa metoder för faginokulering möjliggör optimal och kontinuerlig priming av immunsystemet, kanske de inte representerar de naturligt förekommande interaktionerna mellan fager och tarmmiljön, eller kinetiken för oralt applicerad fagterapi. Hittills har ett begränsat antal studier undersökt fagens interaktioner med en enda bakterieart i monokoloniserade musmodeller21. Monokoloniserade möss visade sig dock vara avgörande för att dechiffrera mikrobspecifika effekter av enskilda arter på mag-tarmkanalen (GI) och immunutveckling 22,23,24, och de kan fortfarande visa sig vara användbara för att förstå tredelade interaktioner mellan fager, deras målbakterier och den metazoiska värden.

Spännande nog finns det fortfarande mycket att lära om samspelet mellan tarmfag och tarmkommensala bakterier, liksom de interaktioner som sker mellan metazovärden och fagerna som finns i den. Detta protokoll tillhandahåller en uppsättning procedurer för att studera isolerad T4-och dess bakteriella motsvarighet, E. coli (K-12, BW25113), med hjälp av en gnotobiotisk musmodell. Dessa standardiserade procedurer ger också en grund för att optimera andra/bakteriedyader genom att anpassa tillväxtparametrarna till de intressanta paren. De metoder som beskrivs här beskriver: (1) Beredning av T4-och vehikellysat för oral sondmatning av möss; (2) Oral administrering av T4-till E. coli monokoloniserade gnotobiotiska möss; (3) Övervakning av T4-fagnivåer i avföring och vävnad från möss över tid.

För de representativa resultaten som presenteras här förökades renade T4-faglysat från fagbankslager som underhålls av Rohwer Lab. -på-kran-metoden för förökning av T4-anpassades25, som refereras till i detta protokoll. Metoden ger högtiter, endotoxin-låga faglager inom tre dagar. Med hjälp av detta tillvägagångssätt samlades rutinmässigt 10 ml ≥ 1010 plackbildande enheter (pfu)/ml T4-med < 0,5 endotoxinenheter (EU)/ml. De rekommenderade endotoxinnivåerna för oral eller intravenös administrering till möss är ≤ 20 EU/ml respektive ≤ 5 EU/kg/timme (eller 0,1 EU administrerat under 1 timme för en mus på 20 g), vilket gör detta till en lämplig metod för fagberedning för inokulering in vivo . Alla faglager förvarades vid 4 °C i fagbuffert med saltlösning av magnesium (SM) (recept finns i steg 1.1.5.1). E. coli odlades i LB media. För olika-bakteriepar kan olika odlingssubstrat och tillväxtförhållanden anpassas från detta protokoll. Fager kan också hämtas från miljön, såsom avloppsvatten, havsvatten, jord och tarminnehåll och kan isoleras och renas enligt Sambrook och Russell26 före beredning med lämpliga tillväxt- och förökningsförhållanden för varje-värdpar av intresse25. Alternativt kan fager erhållas från kommersiella källor (se Materialförteckning) eller från fagbanker.

Protocol

Alla försök utfördes i enlighet med de riktlinjer som fastställts av UBC Animal Care Committee och Biosafety Committee-godkända protokoll (A23-0113, B19-0038). Möss inhystes vid University of British Columbia under patogenfria förhållanden vid Center for Disease Modeling. C57BL/6-möss föddes upp i anläggningen i en steril flexibel filmisolator, försedd med steril musdiet, vatten, strö och bomaterial. Mössen hölls på en 12 timmars dag/natt-cykel. Försöksmöss, både hanar och honor, åldersmatchades inom…

Representative Results

För att undersöka interaktionerna mellan T4-fagen/E. coli-dyaden i murintarmen bereddes, renades och renades T4-fagen och vehikellysaten (Figur 1A). T4-faglysat titrerades med plackanalys och späddes till 2 x 107 pfu/ml (2 x 106 pfu/mus) i SM-buffert. Vehikellysat titrerades också för att bekräfta att det inte fanns någon livskraftig fagförekomst och späddes ut i samma volym SM-buffert som T4-faglysatet. Endotoxinnivåerna kvantifierades i utspädda ly…

Discussion

Studiet av fager i mikrobiomet utgör en betydande utmaning jämfört med deras bakteriella motsvarigheter. Specifikt innehåller fager inte en bevarad fylogenetisk markör som är gemensam för alla fager och som är besläktade med 16S- och 18S-ribosomala underenheter som gör det enkelt att sekvensera och identifiera prokaryota respektive eukaryota arter42. Men med framsteg inom nästa generations sekvenseringsmetoder, inklusive ökande läslängder, genomströmning och minskande kostnader, kom…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna erkänner att marken de utförde denna forskning på är det traditionella, förfäderna och icke-överlåtna territoriet för xwməθkwəy̓əm (Musqueam) Nation. Marken den ligger på har alltid varit en plats för lärande för Musqueam-folket, som i årtusenden har fört vidare i sin kultur, historia och traditioner från en generation till nästa på denna plats. Vi uppmuntrar andra att lära sig mer om de hemländer där de bor och arbetar på https://native-land.ca. Författarna erkänner stöd från Natural Sciences and Engineering Council of Canada (NSERC) Canadian Graduate Scholarships – Master’s (NP), Michael Smith Health Research BC Trainee Award (RT-2023-3174, till MH), Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) Discovery Grants Program (RGPIN-2019-04591 till CT, RGPIN-2016-04282 till LCO), Canadian Institute for Advanced Research / Humans and the Microbiome (FL-001253 Appt 3362, till C.T.), Michael Smith Foundation for Health Research Scholar Award (18239, till C.T.), Canadian Institutes for Health Research (PJT-159458 till LCO) och Canadian Foundation for Innovation (34673 till LCO och 38277 till CT). Vi är tacksamma för tekniskt stöd från UBC Centre for Disease Modelling och ubcFLOW, som stöds av UBC GREx Biological Resilience Initiative, och till medlemmar i Osborne- och Tropini-laboratorierna för kritiska diskussioner och utvärdering av manuskriptet. Figur 1A och figur 2A skapades med hjälp av Biorender.com.

Materials

1-octanol (99%) Thermofisher CAAAA15977-AP
50 ml PES Steriflip Sterile Disposable Vacuum Filter Units Millipore Sigma  SCGP00525
Agarose (Low-EEO/Multi-Purpose/Molecular Biology Grade) Fisher BioReagents  BP160-500
Amicon® 100kDa Ultra-15 centrifugal filter device, Ultracel-100 Millipore Sigma UFC910008
BD Microtainer® Tubes, SST BD Medical 365967
Bioexclusion airtight cages (ISO cages)  Techiplast 1245ISOCAGE
C1000 Touch™ Thermal Cycler with 96-Well Fast Reaction Module BioRad 1851196
Calcium Chloride Dihydrate (White Crystals to Powder) Fisher BioReagents BP510-500
Cap Locks For 1.5ML Tube 100/pk Andwin Scientific  16812612
Chloroform (Ethanol as Preservative/Certified ACS) Fisher C298-500
Copper coated steel beads (4.5 mm) Crosman Corporation 0767
DNeasy Blood & Tissue Kit (50) Thermo Scientific  69504
DreamTaq Green PCR Master Mix (2X) Thermo Scientific  K1081
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) disodium salt solution, for molecular biology, 0.5 M in H2O Sigma Aldrich E7889
Fisher BioReagents™ Agar, Powder / Flakes, Fisher BioReagents™  Fisher Bioreagents BP1423-500
Fisher BioReagents™ Microbiology Media: LB Broth (Powder) – Lennox  Fisher Bioreagents BP1427-500
GeneRuler 100 bp DNA Ladder Thermo Scientific  SM0241
Green FastMix® qPCR mix, 1250 rxns QuantaBio 95072-012
HEPA filters for isocage lids, AUTOCLAVABLE H14 FILTERS FOR ISO LINE- IRRADIATED Techiplast UISOHEPAXTBOX-300
Magnesium sulfate heptahydrate Fisher BioReagents BP213-1
MaxQ 6000 Incubated Shaker Thermo Scientific  8354-30-0009
Microbiology Media: LB Broth (Powder) – Lennox Fisher BioReagents BP1427-500
Microcentrifuge Tubes with Locking Snap Cap, 2ml Fisher 14-666-315
Parafilm sealing film Bemis PM-996
Phage stocks Carolina Biological Supply  n/a
PicoLab® Mouse Diet 20 EXT LabDiet 5R58
Pierce™ Chromogenic Endotoxin Quant Kit Thermo Scientific  A39552S
RNase A (17,500 U) Qiagen 19101
RNase-free DNase Set Qiagen  79254
Sodium Bicarbonate (Fine White Powder) Fisher Chemical BP328-500
Sodium Chloride (Crystalline/Certified ACS) Fisher Chemical S271
Sonicator (probe model CL-18; power source model FB50) Fisher scentific  n/a
Sterile flexible film isolator  Class Biologically Clean  n/a
SYBR™ Safe DNA Gel Stain Invitrogen S33102
T100 Thermal Cycler  BioRad 1861096
T4 phage primer, forward (CCACACATAGCGCGAGTATAA) IDT n/a
T4 phage primer, forward (GAAACTCGGTCAGGCTATCAA) IDT n/a
TissueLyser II  Qiagen  85300
Tris-HCl, 1M Solution, pH 8.0, Molecular Biology Grade, Ultrapure Thermo Scientific  AAJ22638AE
Water, (DNASE, RNASE free) Fisher BioReagents BP2484100

Referencias

  1. Rohwer, F., Segall, A. M. A century of phage lessons. Nature. 528 (7580), 46-47 (2015).
  2. Hsu, B. B., et al. Dynamic modulation of the gut microbiota and metabolome by bacteriophages in a mouse model. Cell Host & Microbe. 25 (6), 803-814.e5 (2019).
  3. Gordillo Altamirano, F. L., Barr, J. J. Phage Therapy in the postantibiotic era. Clinical Microbiology Reviews. 32 (2), (2019).
  4. Schooley, R. T., et al. Development and use of personalized bacteriophage-based therapeutic cocktails to treat a patient with a disseminated resistant Acinetobacter baumannii infection. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 61 (10), (2017).
  5. Ott, S. J., et al. Efficacy of Sterile Fecal Filtrate Transfer for Treating Patients With Clostridium difficile Infection. Gastroenterology. 152 (4), 799-811.e7 (2017).
  6. Zuo, T., et al. Bacteriophage transfer during faecal microbiota transplantation in Clostridium difficile infection is associated with treatment outcome. Gut. 67 (4), 634-643 (2018).
  7. Norman, J. M., et al. Disease-specific alterations in the enteric virome in inflammatory bowel disease. Cell. 160 (3), 447-460 (2015).
  8. Gogokhia, L., et al. Expansion of bacteriophages is linked to aggravated intestinal inflammation and colitis. Cell Host & Microbe. 25 (2), 285-299.e8 (2019).
  9. Brunse, A., et al. Fecal filtrate transplantation protects against necrotizing enterocolitis. The ISME Journal. 16 (3), 686-694 (2022).
  10. Duerkop, B. A., Clements, C. V., Rollins, D., Rodrigues, J. L. M., Hooper, L. V. A composite bacteriophage alters colonization by an intestinal commensal bacterium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (43), 17621-17626 (2012).
  11. Barr, J. J., et al. Bacteriophage adhering to mucus provide a non-host-derived immunity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (26), 10771-10776 (2013).
  12. Nguyen, S., et al. Bacteriophage Transcytosis provides a mechanism to cross epithelial cell layers. mBio. 8 (6), (2017).
  13. Bichet, M. C., et al. Bacteriophage uptake by mammalian cell layers represents a potential sink that may impact phage therapy. iScience. 24 (4), 102287 (2021).
  14. Buttimer, C., et al. Impact of a phage cocktail targeting Escherichia coli and Enterococcus faecalis as members of a gut bacterial consortium in vitro and in vivo. Frontiers in Microbiology. 13, 936083 (2022).
  15. Li, Y., et al. Bacteriophages allow selective depletion of gut bacteria to produce a targeted-bacterium-depleted mouse model. Cell Reports Methods. 2 (11), 100324 (2022).
  16. Reyes, A., Wu, M., McNulty, N. P., Rohwer, F. L., Gordon, J. I. Gnotobiotic mouse model of phage-bacterial host dynamics in the human gut. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (50), 20236-20241 (2013).
  17. Federici, S., et al. Targeted suppression of human IBD-associated gut microbiota commensals by phage consortia for treatment of intestinal inflammation. Cell. 185 (16), 2879-2898.e4 (2022).
  18. Sweere, J. M., et al. Bacteriophage trigger antiviral immunity and prevent clearance of bacterial infection. Science (New York, N.Y.). 363 (6434), (2019).
  19. Fluckiger, A., et al. Cross-reactivity between tumor MHC class I-restricted antigens and an enterococcal bacteriophage. Science (New York, N.Y.). 369 (6506), 936-942 (2020).
  20. Majewska, J., et al. Induction of Phage-Specific Antibodies by Two Therapeutic Staphylococcal Bacteriophages Administered per os. Frontiers in Immunology. 10, 2607 (2019).
  21. Weiss, M., et al. In vivo replication of T4 and T7 bacteriophages in germ-free mice colonized with Escherichia coli. Virology. 393 (1), 16-23 (2009).
  22. Thomson, C. A., Morgan, S. C., Ohland, C., McCoy, K. D. From germ-free to wild: modulating microbiome complexity to understand mucosal immunology. Mucosal Immunology. 15 (6), 1085-1094 (2022).
  23. Al-Asmakh, M., Zadjali, F. Use of germ-free animal models in microbiota-related research. Journal of Microbiology and Biotechnology. 25 (10), 1583-1588 (2015).
  24. Ivanov, I. I., et al. Induction of intestinal Th17 cells by segmented filamentous bacteria. Cell. 139 (3), 485-498 (2009).
  25. Bonilla, N., et al. Phage on tap-a quick and efficient protocol for the preparation of bacteriophage laboratory stocks. PeerJ. 4, e2261 (2016).
  26. Sambrook, J., Russell, D. W. . Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 1, (2001).
  27. Kropinski, A. M., Mazzocco, A., Waddell, T. E., Lingohr, E., Johnson, R. P. Enumeration of bacteriophages by double agar overlay plaque assay. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J). 501, 69-76 (2009).
  28. Manikantha, B., Karthika, R., Murugadas, V., Vishnuvinayagam, S., Rao, B. M. Comparison of the single agar and double agar layer methods for enumeration of bacteriophages. Fishery Technology. 59, 60-63 (2022).
  29. Sanders, E. R. Aseptic laboratory techniques: plating methods. Journal of Visualized Experiments. 63, e3064 (2012).
  30. Louten, J. Chapter 7 – Detection and diagnosis of viral infections. Essential Human Virology. , 111-132 (2016).
  31. Richter, &. #. 3. 2. 1. ;., et al. Adsorption of bacteriophages on polypropylene labware affects the reproducibility of phage research. Scientific Reports. 11 (1), 7387 (2021).
  32. . Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Devices Available from: https://www.emdmillipore.com/CA/en/product/Amicon-Ultra-15-Centrifugal-Filter-Unit (2018)
  33. Hecker, W., Witthauer, D., Staerk, A. Validation of dry heat inactivation of bacterial endotoxins. PDA Journal of Pharmaceutical Science and Technology. 48 (4), 197-204 (1994).
  34. Jakočiūnė, D., Moodley, A. A Rapid bacteriophage DNA extraction method. Methods and Protocols. 1 (3), 27 (2018).
  35. Zucoloto, A. Z., Yu, I. L., McCoy, K. D., McDonald, B. Generation, maintenance, and monitoring of gnotobiotic mice. STAR Protocols. 2 (2), 100536 (2021).
  36. Ng, K. M., et al. Single-strain behavior predicts responses to environmental pH and osmolality in the gut microbiota. mBio. 14 (4), e0075323 (2023).
  37. McCallum, G., Tropini, C. The gut microbiota and its biogeography. Nature Reviews. Microbiology. , (2023).
  38. Bergstrom, K., Xia, L. The barrier and beyond: Roles of intestinal mucus and mucin-type O-glycosylation in resistance and tolerance defense strategies guiding host-microbe symbiosis. Gut Microbes. 14 (1), 2052699 (2022).
  39. Askar, M., Ashraf, W., Scammell, B., Bayston, R. Comparison of different human tissue processing methods for maximization of bacterial recovery. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 38 (1), 149-155 (2019).
  40. Redanz, S., Podbielski, A., Warnke, P. Improved microbiological diagnostic due to utilization of a high-throughput homogenizer for routine tissue processing. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 82 (3), 189-193 (2015).
  41. Bhinder, G., et al. The Citrobacter rodentium mouse model: studying pathogen and host contributions to infectious colitis. Journal of Visualized Experiments. 72, e50222 (2013).
  42. Reyes, A., Semenkovich, N. P., Whiteson, K., Rohwer, F., Gordon, J. I. Going viral: next-generation sequencing applied to phage populations in the human gut. Nature Reviews Microbiology. 10 (9), 607-617 (2012).
  43. Camarillo-Guerrero, L. F., Almeida, A., Rangel-Pineros, G., Finn, R. D., Lawley, T. D. Massive expansion of human gut bacteriophage diversity. Cell. 184 (4), 1098-1109.e9 (2021).
  44. Reyes, A., et al. Viruses in the faecal microbiota of monozygotic twins and their mothers. Nature. 466 (7304), 334-338 (2010).
  45. Bach, M. S., et al. Filamentous bacteriophage delays healing of Pseudomonas-infected wounds. Cell Reports. Medicine. 3 (6), 100656 (2022).
  46. Filyk, H. A., Osborne, L. C. The multibiome: The intestinal ecosystem’s influence on immune homeostasis, health, and disease. EBioMedicine. 13, 46-54 (2016).
  47. Rohwer, F., Merry, Y., Maughan, H., Hisakawa, N. Heather Life in Our Phage World: A Centennial Field Guide to the Earth’s Most Diverse Inhabitants. Wholon. , (2014).
  48. Glonti, T., Pirnay, J. P. In Vitro techniques and measurements of phage characteristics that are important for phage therapy success. Viruses. 14 (7), 1490 (2022).
  49. Fraser, J. S., Yu, Z., Maxwell, K. L., Davidson, A. R. Ig-like domains on bacteriophages: a tale of promiscuity and deceit. Journal of Molecular Biology. 359 (2), 496-507 (2006).
  50. Li, H., et al. The outer mucus layer hosts a distinct intestinal microbial niche. Nature Communications. 6, 8292 (2015).
  51. Bergström, A., et al. Nature of bacterial colonization influences transcription of mucin genes in mice during the first week of life. BMC Research Notes. 5, 402 (2012).
  52. Adams, M. H. . Bacteriophages. , (1959).
  53. Kutter, E., Sulakvelidze, A. . Bacteriophages: Biology and Applications. , (2004).
  54. Bao, H., et al. Dysbiosis and intestinal inflammation caused by Salmonella Typhimurium in mice can be alleviated by preadministration of a lytic phage. Microbiological Research. 260, 127020 (2022).

Play Video

Citar este artículo
Pett, N., Hunter, M., Carranza García, N. A., Seo, J. H., Collins, S. R., Rohwer, F., Osborne, L. C., Tropini, C. T4 Bacteriophage and E. coli Interaction in the Murine Intestine: A Prototypical Model for Studying Host-Bacteriophage Dynamics In Vivo. J. Vis. Exp. (203), e65906, doi:10.3791/65906 (2024).

View Video