Bakteriofager (fager), virus som infekterar bakterier, är en integrerad del av tarmmikrobiomet. Även om dessa symbiotiska invånare driver bakteriell kondition och populationsdynamik, är lite förstått om hur de påverkar tarmhomeostas och sjukdomar. Detta protokoll studerar isolerade T4-fager i en musmodell, som kan anpassas till andra-bakteriepar.
Bakteriofager (fager) är virus som infekterar bakterier med art- och stamspecificitet och är de vanligaste biologiska enheterna i alla kända ekosystem. Inom bakteriesamhällen, som de som finns i tarmmikrobiotan, är fager inblandade i att reglera mikrobiotans populationsdynamik och driva bakteriell evolution. Det har funnits ett förnyat intresse för fagforskning under det senaste decenniet, delvis på grund av den värdspecifika dödande förmågan hos lytiska fager, som erbjuder ett lovande verktyg för att motverka det ökande hotet från antimikrobiellt resistenta bakterier. Dessutom tyder nya studier som visar att fager fäster vid tarmslem på att de kan ha en skyddande roll för att förhindra bakterieinvasion i det underliggande epitelet. Det är viktigt att notera att störda fasom, precis som bakteriella mikrobiom, har förknippats med försämrade resultat vid sjukdomar som inflammatorisk tarmsjukdom. Tidigare studier har visat att fager kan modulera mikrobiomet hos djur och människor genom fekala filtrattransplantationer, vilket gynnar värdens hälsa. Med den senaste vågen av forskning kommer nödvändigheten av att upprätta och standardisera protokoll för att studera fager i samband med tarmmikrobiomet. Detta protokoll tillhandahåller en uppsättning procedurer för att studera isolerade T4-fager och deras bakterievärd, Escherichia coli, i samband med musens mag-tarmkanal. Metoderna som beskrivs här beskriver hur man utgår från ett faglysat, administrerar det till möss och bedömer effekter på bakteriella värd- och fagnivåer. Detta protokoll kan modifieras och tillämpas på andra-bakteriepar och ger en utgångspunkt för att studera värd-fagdynamik in vivo.
Bakteriofager, eller fager, är virus som infekterar och dödar bakterier med art- och stamnivåspecificitet1. Fager spelar viktiga roller inom komplexa bakteriesamhällen som tarmmikrobiotan, där de har varit inblandade i att reglera populationsdynamik och driva bakteriell kondition2. Under det senaste decenniet har det funnits ett förnyat intresse för fagforskning på grund av ökningen av antimikrobiellt resistenta patogener3 och potentialen för fagterapi som en alternativ behandlingsstrategi. Under de senaste åren har lytiska fagcocktails använts intravenöst med viss framgång vid allvarliga, antibiotikaresistenta bakteriella septiska infektioner hos människor 3,4. Oral fagterapi har också föreslagits som ett potentiellt alternativ till antibiotika för att behandla tarminfektioner och inflammation. Dessutom har fager varit inblandade i framgången för fekala filtrattransplantationer (FFT), som är fekala mikrobiotapreparat som har filtrerats för att avlägsna bakterier, vid behandling av återkommande Clostridioides difficile-infektion (rCDI)5,6, inflammatoriska tarmsjukdomar (IBD)7,8 och nekrotiserande enterokolit hos för tidigt födda grisar9. Med tanke på dessa resultat är det viktigt att ta hänsyn till interaktioner både mellan fager och tarmmikrobiotan, och fager och däggdjursvärden, eftersom tillsats av nya fager i ett redan existerande samhälle kan ha indirekta effekter på samhället som helhet, och inte bara dess målbakterier 2,10.
Studien av faginteraktioner med deras målbakterier in vitro har visat sig vara användbar för att förstå mekanismerna och effekterna av- och bakterieinteraktioner i tarmen. I denna miljö har det visats att Escherichia coli-specifika T4-fager av ordningen Caudovirales kräver immunglobulin (Ig)-liknande domäner belägna i högantigena yttre kapsidproteiner (Hoc) på virionytan för att fästa vid tarmslem11. Dessutom har transwell-analyser visat att T4-fager kan interagera med epitelcellkulturer och translokera genom cellager genom makropinocytos12,13. Dessa resultat stöder hypotesen att fager kan interagera med sin metazoiska värd, även om de är oförmögna att infektera eukaryota celler. Dessa modeller, även om de är användbara, saknar hela skalan av komplexa interaktioner som uppstår i ett tarmekosystem som krävs för en omfattande utforskning av den tredelade interaktionen mellan fager, bakterier och metazovärden.
Musmodeller är ett viktigt verktyg för att undersöka fager i komplexa miljöer. En önskvärd tillämpning av fagadministrering är som en alternativ strategi för att behandla antimikrobiellt resistenta infektioner eller patogener associerade med kroniska inflammatoriska sjukdomar, inklusive IBD. Ny litteratur tyder dock på att fagbeteende in vitro inte fullt ut representerar in vivo-funktioner. Buttimer et al.14 visade att en fagcocktail kunde utarma de riktade bakterierna i ett förenklat humant mikrobiotakonsortium in vitro, men kunde inte replikeras in vivo i gnotobiotiska möss koloniserade med samma bakterie-fagkonsortium. Dessutom, i ett konventionellt musmikrobiom, ledde T7-till selektiv utarmning av dess måltarmbakterier, även om gradvis återhämtning observerades över tid, vilket tyder på utvecklad resistens15. Andra studier har visat samexistens av oralt administrerade fager och deras bakteriestammar in vivo 2,16. Utöver/bakterie-samexistens ledde fagadministrering till omfattande förändringar i den övergripande sammansättningenoch funktionen av mikrobiotasamhället. Detta är relevant i sjukdomsmiljöer eftersom flera studier har funnit samband mellan ökad relativ förekomst av Caudovirales och IBD 7,8,17 som var oberoende av förändringar i bakteriell förekomst7. Det är fortfarande okänt om detta är en drivkraft eller konsekvens av sjukdomspatogenesen.
Historiskt har fagforskningen fokuserat på relationen mellan en och dess målbakterie. Det är dock också viktigt att ta hänsyn till potentiella interaktioner mellan och slemhinnan, epitelet och immunsystemet hos den metazoiska värden. Dessa interaktioner spelar alla en viktig roll i det övergripande svaret på tarmfaginfektion. För att demonstrera detta har fager studerats med hjälp av bakteriefria (GF) möss för att belysa deras inverkan på immunsystemet utan inblandning av mikrobiotan8. I detta system detekterades fagnukleinsyror av toll-liknande receptorer (TLR) belägna i endosomer av fagocytiska immunceller (makrofager och dendritiska celler). Detta aktiverade nedströms signalering och stimulerade T-cellsberoende produktion av interferon (IFN)-γ8 eller typ I IFN18. Dessutom implicerade Fluckiger et al.19 minnes-CD8+ T-celler i igenkänningen av fagkodade (prophage) antigener, vilket resulterade i T-cellskorsreaktivitet med tumörantigener, vilket resulterade i minskad tumörbörda. Slutligen har fagspecifik antikroppsproduktion dokumenterats i musstudier där fager levererades till djurmodeller på ett kontinuerligt sätt genom dricksvatten 8,20, eller genom upprepad oral sondmatning under flera månader20, vilket visar fagproteinernas förmåga att främja humorala immunsvar. Även om dessa metoder för faginokulering möjliggör optimal och kontinuerlig priming av immunsystemet, kanske de inte representerar de naturligt förekommande interaktionerna mellan fager och tarmmiljön, eller kinetiken för oralt applicerad fagterapi. Hittills har ett begränsat antal studier undersökt fagens interaktioner med en enda bakterieart i monokoloniserade musmodeller21. Monokoloniserade möss visade sig dock vara avgörande för att dechiffrera mikrobspecifika effekter av enskilda arter på mag-tarmkanalen (GI) och immunutveckling 22,23,24, och de kan fortfarande visa sig vara användbara för att förstå tredelade interaktioner mellan fager, deras målbakterier och den metazoiska värden.
Spännande nog finns det fortfarande mycket att lära om samspelet mellan tarmfag och tarmkommensala bakterier, liksom de interaktioner som sker mellan metazovärden och fagerna som finns i den. Detta protokoll tillhandahåller en uppsättning procedurer för att studera isolerad T4-och dess bakteriella motsvarighet, E. coli (K-12, BW25113), med hjälp av en gnotobiotisk musmodell. Dessa standardiserade procedurer ger också en grund för att optimera andra/bakteriedyader genom att anpassa tillväxtparametrarna till de intressanta paren. De metoder som beskrivs här beskriver: (1) Beredning av T4-och vehikellysat för oral sondmatning av möss; (2) Oral administrering av T4-till E. coli monokoloniserade gnotobiotiska möss; (3) Övervakning av T4-fagnivåer i avföring och vävnad från möss över tid.
För de representativa resultaten som presenteras här förökades renade T4-faglysat från fagbankslager som underhålls av Rohwer Lab. -på-kran-metoden för förökning av T4-anpassades25, som refereras till i detta protokoll. Metoden ger högtiter, endotoxin-låga faglager inom tre dagar. Med hjälp av detta tillvägagångssätt samlades rutinmässigt 10 ml ≥ 1010 plackbildande enheter (pfu)/ml T4-med < 0,5 endotoxinenheter (EU)/ml. De rekommenderade endotoxinnivåerna för oral eller intravenös administrering till möss är ≤ 20 EU/ml respektive ≤ 5 EU/kg/timme (eller 0,1 EU administrerat under 1 timme för en mus på 20 g), vilket gör detta till en lämplig metod för fagberedning för inokulering in vivo . Alla faglager förvarades vid 4 °C i fagbuffert med saltlösning av magnesium (SM) (recept finns i steg 1.1.5.1). E. coli odlades i LB media. För olika-bakteriepar kan olika odlingssubstrat och tillväxtförhållanden anpassas från detta protokoll. Fager kan också hämtas från miljön, såsom avloppsvatten, havsvatten, jord och tarminnehåll och kan isoleras och renas enligt Sambrook och Russell26 före beredning med lämpliga tillväxt- och förökningsförhållanden för varje-värdpar av intresse25. Alternativt kan fager erhållas från kommersiella källor (se Materialförteckning) eller från fagbanker.
Studiet av fager i mikrobiomet utgör en betydande utmaning jämfört med deras bakteriella motsvarigheter. Specifikt innehåller fager inte en bevarad fylogenetisk markör som är gemensam för alla fager och som är besläktade med 16S- och 18S-ribosomala underenheter som gör det enkelt att sekvensera och identifiera prokaryota respektive eukaryota arter42. Men med framsteg inom nästa generations sekvenseringsmetoder, inklusive ökande läslängder, genomströmning och minskande kostnader, kom…
The authors have nothing to disclose.
Författarna erkänner att marken de utförde denna forskning på är det traditionella, förfäderna och icke-överlåtna territoriet för xwməθkwəy̓əm (Musqueam) Nation. Marken den ligger på har alltid varit en plats för lärande för Musqueam-folket, som i årtusenden har fört vidare i sin kultur, historia och traditioner från en generation till nästa på denna plats. Vi uppmuntrar andra att lära sig mer om de hemländer där de bor och arbetar på https://native-land.ca. Författarna erkänner stöd från Natural Sciences and Engineering Council of Canada (NSERC) Canadian Graduate Scholarships – Master’s (NP), Michael Smith Health Research BC Trainee Award (RT-2023-3174, till MH), Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) Discovery Grants Program (RGPIN-2019-04591 till CT, RGPIN-2016-04282 till LCO), Canadian Institute for Advanced Research / Humans and the Microbiome (FL-001253 Appt 3362, till C.T.), Michael Smith Foundation for Health Research Scholar Award (18239, till C.T.), Canadian Institutes for Health Research (PJT-159458 till LCO) och Canadian Foundation for Innovation (34673 till LCO och 38277 till CT). Vi är tacksamma för tekniskt stöd från UBC Centre for Disease Modelling och ubcFLOW, som stöds av UBC GREx Biological Resilience Initiative, och till medlemmar i Osborne- och Tropini-laboratorierna för kritiska diskussioner och utvärdering av manuskriptet. Figur 1A och figur 2A skapades med hjälp av Biorender.com.
1-octanol (99%) | Thermofisher | CAAAA15977-AP | |
50 ml PES Steriflip Sterile Disposable Vacuum Filter Units | Millipore Sigma | SCGP00525 | |
Agarose (Low-EEO/Multi-Purpose/Molecular Biology Grade) | Fisher BioReagents | BP160-500 | |
Amicon® 100kDa Ultra-15 centrifugal filter device, Ultracel-100 | Millipore Sigma | UFC910008 | |
BD Microtainer® Tubes, SST | BD Medical | 365967 | |
Bioexclusion airtight cages (ISO cages) | Techiplast | 1245ISOCAGE | |
C1000 Touch™ Thermal Cycler with 96-Well Fast Reaction Module | BioRad | 1851196 | |
Calcium Chloride Dihydrate (White Crystals to Powder) | Fisher BioReagents | BP510-500 | |
Cap Locks For 1.5ML Tube 100/pk | Andwin Scientific | 16812612 | |
Chloroform (Ethanol as Preservative/Certified ACS) | Fisher | C298-500 | |
Copper coated steel beads (4.5 mm) | Crosman Corporation | 0767 | |
DNeasy Blood & Tissue Kit (50) | Thermo Scientific | 69504 | |
DreamTaq Green PCR Master Mix (2X) | Thermo Scientific | K1081 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) disodium salt solution, for molecular biology, 0.5 M in H2O | Sigma Aldrich | E7889 | |
Fisher BioReagents™ Agar, Powder / Flakes, Fisher BioReagents™ | Fisher Bioreagents | BP1423-500 | |
Fisher BioReagents™ Microbiology Media: LB Broth (Powder) – Lennox | Fisher Bioreagents | BP1427-500 | |
GeneRuler 100 bp DNA Ladder | Thermo Scientific | SM0241 | |
Green FastMix® qPCR mix, 1250 rxns | QuantaBio | 95072-012 | |
HEPA filters for isocage lids, AUTOCLAVABLE H14 FILTERS FOR ISO LINE- IRRADIATED | Techiplast | UISOHEPAXTBOX-300 | |
Magnesium sulfate heptahydrate | Fisher BioReagents | BP213-1 | |
MaxQ 6000 Incubated Shaker | Thermo Scientific | 8354-30-0009 | |
Microbiology Media: LB Broth (Powder) – Lennox | Fisher BioReagents | BP1427-500 | |
Microcentrifuge Tubes with Locking Snap Cap, 2ml | Fisher | 14-666-315 | |
Parafilm sealing film | Bemis | PM-996 | |
Phage stocks | Carolina Biological Supply | n/a | |
PicoLab® Mouse Diet 20 EXT | LabDiet | 5R58 | |
Pierce™ Chromogenic Endotoxin Quant Kit | Thermo Scientific | A39552S | |
RNase A (17,500 U) | Qiagen | 19101 | |
RNase-free DNase Set | Qiagen | 79254 | |
Sodium Bicarbonate (Fine White Powder) | Fisher Chemical | BP328-500 | |
Sodium Chloride (Crystalline/Certified ACS) | Fisher Chemical | S271 | |
Sonicator (probe model CL-18; power source model FB50) | Fisher scentific | n/a | |
Sterile flexible film isolator | Class Biologically Clean | n/a | |
SYBR™ Safe DNA Gel Stain | Invitrogen | S33102 | |
T100 Thermal Cycler | BioRad | 1861096 | |
T4 phage primer, forward (CCACACATAGCGCGAGTATAA) | IDT | n/a | |
T4 phage primer, forward (GAAACTCGGTCAGGCTATCAA) | IDT | n/a | |
TissueLyser II | Qiagen | 85300 | |
Tris-HCl, 1M Solution, pH 8.0, Molecular Biology Grade, Ultrapure | Thermo Scientific | AAJ22638AE | |
Water, (DNASE, RNASE free) | Fisher BioReagents | BP2484100 |