Denne protokol beskriver den kirurgiske teknik til implantering af et elektrodearray på abdominalvagusnerven hos rotter sammen med metoder til kronisk elektrofysiologitest og stimulering ved hjælp af den implanterede enhed.
Abdominal vagusnervestimulering (VNS) kan anvendes på den subdiaphragmatiske gren af vagusnerven hos rotter. På grund af sin anatomiske placering har den ingen respiratoriske og hjertemæssige virkninger, der ofte er forbundet med cervikal VNS. Manglen på respiratoriske og hjertemæssige virkninger uden for målet betyder, at intensiteten af stimulering ikke behøver at blive sænket for at reducere bivirkninger, der almindeligvis opleves under cervikal VNS. Få nyere undersøgelser viser de antiinflammatoriske virkninger af abdominal VNS i rottemodeller af inflammatorisk tarmsygdom, reumatoid arthritis og glykæmi reduktion i en rottemodel af type 2-diabetes. Rotte er en fantastisk model til at udforske potentialet i denne teknologi på grund af vagusnervens veletablerede anatomi, nervens store størrelse, der muliggør nem håndtering og tilgængeligheden af mange sygdomsmodeller. Her beskriver vi metoderne til rengøring og sterilisering af abdominal VNS-elektrodearray og kirurgisk protokol hos rotter. Vi beskriver også den teknologi, der kræves til bekræftelse af suprathreshold stimulering ved at registrere fremkaldte sammensatte aktionspotentialer. Abdominal VNS har potentialet til at tilbyde selektiv, effektiv behandling af en række tilstande, herunder inflammatoriske sygdomme, og applikationen forventes at udvide sig på samme måde som cervikal VNS.
Vagusnervestimulering (VNS) leveret på livmoderhalsstedet i nakken er USA’s Food and Drug Administration (FDA) -godkendte behandling af ildfast epilepsi, ildfast depression og post-iskæmisk slagtilfælderehabilitering 1 og Europa-Kommissionen godkendt til hjertesvigt i Europa2. Ikke-invasiv cervikal VNS er FDA-godkendt til migræne og hovedpine1. Dens anvendelse forventes at udvides, med nylige kliniske forsøg, der viser effekten af VNS i andre indikationer såsom Crohns sygdom3, reumatoid arthritis 4,5 og nedsat glukosetolerance og type 2-diabetes 6,7. Selvom det er lovende, kan cervikal VNS forårsage bradykardi og apnø på grund af aktivering uden for målet af nervefibrene, der inderverer lungerne og hjertet 8,9,10. Bivirkninger såsom hoste, smerter, stemmeændring, hovedpine og stigning i apnø-hypopnø-indeks er almindeligt rapporteret hos patienter, der får cervikal VNS11,12. Reduktion i stimuleringsstyrke er en almindelig strategi for at reducere disse bivirkninger, men reduceret ladning kan begrænse effekten af VNS-terapi ved ikke at aktivere terapeutiske fibre11. Til støtte for denne hypotese var responderraten for patienter, der fik højintensitetsstimulering til behandling af epilepsi, højere end for patienter, der fik stimulering med lav intensitet13.
Abdominal VNS påføres på den subdiaphragmatiske vagusnerve over lever- og cøliakigrene14 (figur 1). Vores tidligere undersøgelse viste, at abdominal VNS hos rotter ikke forårsager hjerte- eller åndedrætsbivirkninger forbundet med cervikal VNS10. Tidligere undersøgelser viser også antiinflammatoriske virkninger af abdominal VNS i en rottemodel af inflammatorisk tarmsygdom og reumatoid arthritis10,15 samt reduktion i glykæmi i en rottemodel af type 2-diabetes16. For nylig er abdominal VNS-teknologien blevet oversat til et første klinisk forsøg på mennesker til behandling af inflammatorisk tarmsygdom (NCT05469607).
Det perifere nerveelektrodearray, der bruges til at levere stimulering til abdominal vagusnerven (WO201909502017), er specialudviklet til brug hos rotter og består af to til tre platinelektrodepar placeret 4,7 mm fra hinanden, understøttet af en medicinsk silikone elastomermanchet, en sutureringsfane til at forankre arrayet til spiserøret, en blytråd og et perkutant stik, der skal monteres på lændehvirvelområdet (figur 2). Blytråden er tunneleret under huden på venstre side af dyret. Design af flere elektrodepar muliggør elektrisk stimulering af nerven samt registrering af elektrisk fremkaldte sammensatte aktionspotentialer (ECAP’er), hvilket bekræfter korrekt placering af implantatet på nerven og suprathreshold stimuleringsintensiteter. Abdominal VNS tolereres godt hos frit bevægelige rotter i måneder 10,15,16. Dette giver mulighed for vurdering af dets effektivitet på sygdomsmodeller.
Dette manuskript beskriver metoderne til elektrodearraysterilisering, abdominal vagusnerveimplantationskirurgi og kronisk stimulering og registrering af ECAP’er i vågne rotter til undersøgelse af effekten af abdominal VNS i en række sygdomsmodeller. Disse metoder blev oprindeligt udviklet til at studere effekten af abdominal VNS i rottemodellen for inflammatorisk tarmsygdom10 og er også med succes blevet brugt til en rottemodel af reumatoid arthritis15 og diabetes16.
Denne metode til abdominal VNS-implantatkirurgi og kronisk stimulering af vagusnerven og registrering af ECAP’er er blevet anvendt med succes og tolereret godt i 5 uger hos rotter efter implantation 10,15,16. Tilbagetrækning af mave, lever og tarm for at få et godt overblik over spiserøret og vagusnerven er et af de vigtigste trin i operationen. Når disse organer er trukket tilbage, bliver vagusnerven tilgængelig. Tilbagetr…
The authors have nothing to disclose.
Udviklingen af VNS-implantatet til rotter blev finansieret af Defense Advanced Research Projects Agency (DARPA) BTO under ledelse af Dr. Doug Weber og Dr. Eric Van Gieson gennem Space and Naval Warfare Systems Center (kontrakt nr. N66001-15-2-4060). Forskning rapporteret i denne publikation blev støttet af Bionics Institute Incubation Fund. Bionics Institute anerkender den støtte, de modtager fra den victorianske regering gennem sit operationelle infrastrukturstøtteprogram. Vi vil gerne takke Mr. Owen Burns for mekanisk design, Prof. John B Furness for anatomisk ekspertise, Prof. Robert K Shepherd for perifer grænseflade, neuromodulation og registrering ekspertise, Philippa Kammerer og Ms. Amy Morley for husdyrhold og testning, fru Fenella Muntz og Dr. Peta Grigsby for deres råd om postoperativ dyrepleje, og fru Jenny Zhou og elektrode fabrikation team fra NeoBionica for produktion af VNS arrays.
0.9% saline | Briemarpak | SC3050 | |
Baytril | Bayer | ||
Betadine | Sanofi-Aventis Healthcare | ||
Buprelieve (Buprenorphine) | Jurox | ||
Data acquisition device | National Instruments | USB-6210 | |
DietGel Boost (dietary gel supplement) | ClearH2O | ||
Dumont tweezer, style 5 | ProSciTech | T05-822 | |
Dumont tweezer, style N7, self-closing | ProSciTech | EMS72864-D | |
Elmasonic P sonicator | Elma | ||
Hartmann's solution | Baxter | AHB2323 | |
Hemostat | ProSciTech | TS1322-140 | |
HPMC/PAA Moisturising Eye Gel | Alcon | ||
Igor Pro-8 software | Wavemetrics, Inc | ||
Isoflo (Isoflurane) | Zoetis | ||
Isolated differential amplifier | World Precision Instruments | ISO-80 | |
Liquid pyroneg | Diversey | HH12291 | cleaning solution |
Marcaine (Bupivacaine) | Aspen | ||
Plastic drape | Multigate | 22-203 | |
Rat vagus nerve implant | Neo-Bionica | ||
Rimadyl (Carprofen) | Zoetis | ||
Silk suture 3-0 | Ethicon | ||
Silk suture 7-0 | Ethicon | ||
SteriClave autoclave | Cominox | 24S | |
Sterile disposable surgical gown | Zebravet | DSG-S | |
Suicide Nickel hooks | Jarvis Walker | ||
Ultrapure water | Merck Millipre | Milli-Q Direct | |
Underpads | Zebravet | UP10SM | |
Vannas scissors | ProSciTech | EMS72933-01 | |
Vicryl suture 4-0 | Ethicon |