Hier stellen wir ein Protokoll für ein automatisiertes Zellkultursystem vor. Dieses automatisierte Kultursystem reduziert den Arbeitsaufwand und kommt den Anwendern zugute, einschließlich Forschern, die mit dem Umgang mit induzierten pluripotenten Stammzellen (iPS-Zellen) nicht vertraut sind, von der Wartung von iPS-Zellen bis hin zur Differenzierung in verschiedene Zelltypen.
Es wird erwartet, dass humane induzierte pluripotente Stammzellen (hiPSCs) mit unendlicher Selbstproliferationsfähigkeit in zahlreichen Bereichen Anwendung finden, darunter die Aufklärung seltener Krankheiten, die Entwicklung neuer Medikamente und die regenerative Medizin zur Wiederherstellung geschädigter Organe. Trotzdem ist die gesellschaftliche Umsetzung von hiPSCs noch begrenzt. Dies liegt zum Teil daran, dass es schwierig ist, die Differenzierung in der Kultur zu reproduzieren, selbst mit fortgeschrittenem Wissen und ausgefeilten technischen Fähigkeiten, was auf die hohe Empfindlichkeit von iPS-Zellen gegenüber winzigen Umweltveränderungen zurückzuführen ist. Die Anwendung eines automatisierten Kultursystems kann dieses Problem lösen. Experimente mit hoher Reproduzierbarkeit, unabhängig von den Fähigkeiten eines Forschers, können nach einem gemeinsamen Verfahren über verschiedene Institute hinweg erwartet werden. Obwohl bereits mehrere automatisierte Kultursysteme entwickelt wurden, die iPSC-Kulturen aufrechterhalten und eine Differenzierung induzieren können, sind diese Systeme schwer, groß und kostspielig, da sie humanisierte, mehrgliedrige Roboterarme verwenden. Um die oben genannten Probleme zu verbessern, haben wir ein neues System entwickelt, das ein einfaches G-Y-Z-Achsen-Gleitschienensystem verwendet, das es kompakter, leichter und kostengünstiger macht. Darüber hinaus kann der Benutzer Parameter im neuen System einfach ändern, um neue Handhabungsaufgaben zu entwickeln. Sobald eine Aufgabe eingerichtet ist, muss der Benutzer nur noch den iPSC vorbereiten, die für die gewünschte Aufgabe benötigten Reagenzien und Verbrauchsmaterialien im Voraus bereitstellen, die Aufgabennummer auswählen und die Uhrzeit angeben. Wir bestätigten, dass das System iPS-Zellen über mehrere Passagen ohne Feederzellen in einem undifferenzierten Zustand halten und sich in verschiedene Zelltypen differenzieren kann, darunter Kardiomyozyten, Hepatozyten, neurale Vorläuferzellen und Keratinozyten. Das System wird hochgradig reproduzierbare Experimente zwischen Institutionen ermöglichen, ohne dass qualifizierte Forscher erforderlich sind, und es wird die soziale Implementierung von hiPSCs in einem breiteren Spektrum von Forschungsfeldern erleichtern, indem es die Hindernisse für neue Markteintritte verringert.
Dieser Artikel zielt darauf ab, aktuelle und detaillierte Handhabungsverfahren für ein automatisiertes Kultursystem für humane induzierte pluripotente Stammzellen (iPSC), das wir in Zusammenarbeit mit einem Unternehmen hergestellt haben, vorzustellen und repräsentative Ergebnisse zu zeigen.
Seit der Veröffentlichung des Artikels im Jahr 2007 erregt iPSC weltweit Aufmerksamkeit1. Aufgrund seiner größten Eigenschaft, sich in jede Art von Körperzellen differenzieren zu können, wird erwartet, dass es in verschiedenen Bereichen wie der regenerativen Medizin, der Aufklärung der Ursachen hartnäckiger Krankheiten und der Entwicklung neuer therapeutischer Medikamente eingesetzt wird 2,3. Darüber hinaus könnte die Verwendung von humanen iPSC-abgeleiteten somatischen Zellen Tierversuche reduzieren, die erheblichen ethischen Einschränkungen unterliegen. Obwohl ständig zahlreiche homogene iPS-Zellen benötigt werden, um neue Methoden mit iPS-Zellen zu erforschen, ist es zu aufwendig, diese zu verwalten. Darüber hinaus ist die Handhabung von iPSC aufgrund seiner hohen Empfindlichkeit, selbst gegenüber subtilen kulturellen und umweltbedingten Veränderungen, schwierig.
Um dieses Problem zu lösen, wird erwartet, dass automatisierte Kultursysteme anstelle von Menschen Aufgaben übernehmen. Einige Gruppen haben einige automatisierte humane pluripotente Stammzellkultursysteme für die Zellerhaltung und -differenzierung entwickelt und ihre Ergebnisse veröffentlicht 4,5,6. Diese Systeme sind mit mehrgelenkigen Roboterarmen ausgestattet. Roboterarme haben nicht nur den Vorteil, dass sie die Bewegungen des menschlichen Arms in hohem Maße nachahmen, sondern auch den Vorteil, dass sie höhere Kosten für die Arme, eine größere und schwerere Systemverpackung und zeitaufwändige Schulungsanstrengungen durch die Ingenieure erfordern, um die gezielten Bewegungen zu erhalten 7,8. Um die Einführung des Apparats in mehr Forschungseinrichtungen an den Punkten des wirtschaftlichen, räumlichen und personellen Verbrauchs zu erleichtern, haben wir ein neuartiges automatisiertes Kultursystem für die Aufrechterhaltung und Differenzierung von iPSC in verschiedene Zelltypen entwickelt9.
Unsere Begründung für das neue System war die Verwendung eines X-Y-Z-Achsen-Schienensystems anstelle von Roboterarmen mit mehreren Gelenken9. Um die komplexen handähnlichen Funktionen von Roboterarmen zu ersetzen, haben wir eine neue Idee auf dieses System angewendet, das automatisch drei Arten von spezifischen funktionalen Armspitzen wechseln kann. Hier zeigen wir auch, wie Benutzer Aufgabenpläne mit einfachen Aufträgen in der Software erstellen können, da während des gesamten Prozesses keine Anforderungen an die Beiträge der Ingenieure gestellt werden müssen.
Eines der Roboterkultursysteme hat die Herstellung von Embryoidkörpern unter Verwendung von 96-Well-Platten als 3D-Zellaggregate zur Differenzierung demonstriert4. Das hier beschriebene System kann keine 96-Well-Platten verarbeiten. Eine davon erreichte die derzeitige Qualität der guten Herstellungspraxis (cGMP) unter Verwendung einer Zelllinie, obwohl es sich nicht um eine humane pluripotente Stammzelle handelte5. Das hier beschriebene automatisierte Kultursystem wurde nun speziell mit dem Ziel entwickelt, Laborexperimente zu unterstützen (Abbildung 1). Es verfügt jedoch über genügend Systeme, um saubere Werte zu halten, die einer Sicherheitswerkbank der Stufe IV entsprechen.
Ein wichtiger Schritt im Protokoll besteht darin, dass ein Benutzer, wenn er Fehler findet, jederzeit auf die Schaltfläche “Abbrechen”, “Beenden” oder “Zurücksetzen” klicken und mit dem ersten Schritt beginnen kann. Die Software kann menschliche Fehler vermeiden, wie z. B. Doppelbuchungen, das Öffnen von Türen, während die Systemaufgaben aktiv sind, und mangelnden Nachschub. Ein weiterer kritischer Punkt für eine erfolgreiche und effiziente Differenzierung zur gewünschten somatischen Zelle ist die richtige Auswahl…
The authors have nothing to disclose.
Diese Studie wurde durch einen Zuschuss des New Business Promotion Center, Panasonic Production Engineering Co., Ltd., Osaka, Japan, unterstützt.
0.15% bovine serum albumin fraction V | Fuji Film Wako Chemical Inc., Miyazaki, Japan | 9048-46-8 | |
1% GlutaMAX | Thermo Fisher Scientific | 35050061 | |
10 cm plastic plates | Corning Inc., NY, United States | 430167 | |
253G1 | RKEN Bioresource Research Center | HPS0002 | |
2-mercaptoethanol | Thermo Fisher Scientific | 21985023 | |
Actinin mouse | Abcam | ab9465 | |
Activin A | Nacali Tesque | 18585-81 | |
Adenine | Thermo Fisher Scientific | A14906.30 | |
Albumin rabbit | Dako | A0001 | |
All-trans retinoic acid | Fuji Film Wako Chemical Inc. | 186-01114 | |
Automated culture system | Panasonic | ||
B-27 supplement | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | |
bFGF | Fuji Film Wako Chemical Inc. | 062-06661 | |
BMP4 | Thermo Fisher Scientific | PHC9531 | |
Bovine serum albumin | Merck | 810037 | |
CHIR-99021 | MCE, NJ, United States #HY-10182 | 252917-06-9 | |
Defined Keratinocyte-SFM | Thermo Fisher Scientific | 10744019 | Human keratinocyte medium |
Dexamethasone | Merck | 266785 | |
Dihexa | TRC, Ontario, Canada | 13071-60-8 | rac-1,2-Dihexadecylglycerol |
Disposable hemocytometer | CountessTM Cell Counting Chamber Slides, Thermo Fisher Scientific | C10228 | |
Dorsomorphin | Thermo Fisher Scientific | 1219168-18-9 | |
Dulbecco’s modified Eagle medium/F12 | Fuji Film Wako Chemical Inc. | 12634010 | |
EGF | Fuji Film Wako Chemical Inc. | 053-07751 | |
Essential 8 | Thermo Fisher Scientific | A1517001 | Human pluripotent stem cell medium |
Fetal bovine serum | Biowest, FL, United States | S140T | |
FGF-basic | Nacalai Tesque Inc. | 19155-07 | |
Forskolin | Thermo Fisher Scientific | J63292.MF | |
Glutamine | Thermo Fisher Scientific | 25030081 | Glutamine supplement |
Goat IgG(H+L) AlexaFluo546 | Thermo Scientific | A11056 | |
HNF-4A goat | Santacruz | 6556 | |
Hydrocortisone | Thermo Fisher Scientific | A16292.06 | |
Hydrocortisone 21-hemisuccinate | Merck | H2882 | |
iMatrix511 Silk | Nippi Inc., Tokyo, Japan | 892 021 | Cell culture matrix |
Insulin-transferrin-selenium | Thermo Fisher Scientific | 41400045 | |
Keratin 1 mouse | Santacruz | 376224 | |
Keratin 10 rabbit | BioLegend | 19054 | |
KMUR001 | Kansai Medical University | Patient-derived iPSCs | |
Knockout serum replacement | Thermo Fisher Scientific | 10828010 | |
L-ascorbic acid 2-phosphate | A8960, Merck | A8960 | |
Leibovitz’s L-15 medium | Fuji Film Wako Chemical Inc. | 128-06075 | |
Matrigel | Corning Inc. | 354277 | |
Mouse IgG(H+L) AlexaFluo488 | Thermo Scientific | A21202 | |
N-2 supplement | Thermo Fisher Scientific | 17502048 | |
Nestin mouse | Santacruz | 23927 | |
Neurobasal medium | Thermo Fisher Scientific | 21103049 | |
Neurofilament rabbit | Chemicon | AB1987 | |
Neutristem | Sartrius AG, Göttingen, Germany | 05-100-1A | cell culture medium |
Oct 3/4 mouse | BD | 611202 | |
PBS(-) | Nacalai Tesque Inc., Kyoto, Japan | 14249-24 | |
Rabbit IgG(H+L) AlexaFluo488 | Thermo Scientific | A21206 | |
Rabbit IgG(H+L) AlexaFluo546 | Thermo Scientific | A10040 | |
Recombinant human albumin | A0237, Merck, Darmstadt, Germany | A9731 | |
Rho kinase inhibitor, Y-27632 | Sellec Inc., Tokyo, Japan | 129830-38-2 | |
RIKEN 2F | RKEN Bioresource Research Center | HPS0014 | undifferentiated hiPSCs |
RPMI 1640 | Thermo Fisher Scientific #11875 | 12633020 | |
SB431542 | Thermo Fisher Scientific | 301836-41-9 | |
Sodium L-ascorbate | Merck | A4034-100G | |
SSEA-4 mouse | Millipore | MAB4304 | |
StemFit AK02N | Ajinomoto, Tokyo, Japan | AK02 | cell culture medium |
TnT rabbit | Abcam | ab92546 | |
TRA 1-81 mouse | Millipore | MAB4381 | |
Triiodothyronine | Thermo Fisher Scientific | H34068.06 | |
TripLETM express enzyme | Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, United States | 12604013 | |
Trypan blue solution | Nacalai Tesque, Kyoto, Japan | 20577-34 | |
Tryptose phosphate broth | Merck | T8782-500G | |
Wnt-C59 | Bio-techne, NB, United Kingdom | 5148 | |
β Tublin mouse | Promega | G712A |