Summary

Cuantificación basada en imágenes de alto rendimiento de la síntesis y distribución del ADN mitocondrial

Published: May 05, 2023
doi:

Summary

Se describe un procedimiento para estudiar la dinámica del metabolismo del ADN mitocondrial (ADNmt) en las células utilizando un formato de placa de múltiples pocillos e imágenes de inmunofluorescencia automatizadas para detectar y cuantificar la síntesis y distribución del ADNmt. Esto se puede utilizar aún más para investigar los efectos de varios inhibidores, tensiones celulares y silenciamiento génico en el metabolismo del ADNmt.

Abstract

La gran mayoría de los procesos celulares requieren un suministro continuo de energía, cuyo portador más común es la molécula de ATP. Las células eucariotas producen la mayor parte de su ATP en las mitocondrias por fosforilación oxidativa. Las mitocondrias son orgánulos únicos porque tienen su propio genoma que se replica y se transmite a la siguiente generación de células. En contraste con el genoma nuclear, hay múltiples copias del genoma mitocondrial en la célula. El estudio detallado de los mecanismos responsables de la replicación, reparación y mantenimiento del genoma mitocondrial es esencial para comprender el buen funcionamiento de las mitocondrias y las células enteras tanto en condiciones normales como de enfermedad. Aquí se presenta un método que permite la cuantificación de alto rendimiento de la síntesis y distribución de ADN mitocondrial (ADNmt) en células humanas cultivadas in vitro . Este enfoque se basa en la detección por inmunofluorescencia de moléculas de ADN sintetizadas activamente marcadas por la incorporación de 5-bromo-2′-desoxiuridina (BrdU) y la detección concurrente de todas las moléculas de ADNmt con anticuerpos antiADN. Además, las mitocondrias se visualizan con colorantes o anticuerpos específicos. El cultivo de células en un formato de múltiples pocillos y la utilización de un microscopio de fluorescencia automatizado facilitan el estudio de la dinámica del ADNmt y la morfología de las mitocondrias en una variedad de condiciones experimentales en un tiempo relativamente corto.

Introduction

Para la mayoría de las células eucariotas, las mitocondrias son orgánulos esenciales, ya que desempeñan un papel crucial en numerosos procesos celulares. En primer lugar, las mitocondrias son los principales proveedores de energía de las células1. Las mitocondrias también están involucradas en la regulación de la homeostasis celular (por ejemplo, redox2 intracelular y el balance de calcio3), la señalización celular 4,5, la apoptosis6, la síntesis de diferentes compuestos bioquímicos 7,8 y la respuesta inmune innata9. La disfunción mitocondrial está asociada a diversos estados patológicos y enfermedades humanas10.

El funcionamiento de las mitocondrias depende de la información genética localizada en dos genomas separados: el nuclear y el mitocondrial. El genoma mitocondrial codifica un pequeño número de genes en comparación con el genoma nuclear, pero todos los genes codificados por ADNmt son esenciales para la vida humana. La maquinaria de proteínas mitocondriales necesaria para mantener el ADNmt está codificada por el ADNn. Los componentes básicos del replisoma mitocondrial, así como algunos factores de biogénesis mitocondrial, ya han sido identificados (revisado en investigaciones anteriores11,12). Sin embargo, la replicación del ADN mitocondrial y los mecanismos de mantenimiento aún están lejos de ser entendidos. En contraste con el ADNn, el genoma mitocondrial existe en múltiples copias, lo que proporciona una capa adicional para regular la expresión génica mitocondrial. Actualmente se sabe mucho menos sobre la distribución y segregación del ADNmt dentro de los orgánulos, en qué medida estos procesos están regulados y, si lo están, qué proteínas están involucradas13. El patrón de segregación es crucial cuando las células contienen una población mixta de ADNmt mutado y de tipo salvaje. Su distribución desigual puede conducir a la generación de células con una cantidad perjudicial de ADNmt mutado.

Hasta ahora, los factores proteicos necesarios para el mantenimiento del ADNmt se han identificado principalmente mediante métodos bioquímicos, análisis bioinformáticos o mediante estudios asociados a enfermedades. En este trabajo, con el fin de garantizar una alta probabilidad de identificar factores que previamente han escapado a la identificación, se describe una estrategia diferente. El método se basa en el etiquetado del ADNmt durante la replicación o reparación con 5-bromo-2′-desoxiuridina (BrdU), un análogo nucleósido de la timidina. BrdU se incorpora fácilmente en las hebras de ADN nacientes durante la síntesis de ADN y, en general, se utiliza para monitorear la replicación del ADN nuclear14. Sin embargo, el procedimiento desarrollado aquí ha sido optimizado para detectar BrdU incorporado en el ADNmt utilizando la inmunofluorescencia de anticuerpos anti-BrdU.

El enfoque permite la cuantificación de alto rendimiento de la síntesis y distribución de ADNmt en células humanas cultivadas in vitro. Es necesaria una estrategia de alto rendimiento para realizar pruebas en diferentes condiciones experimentales en un tiempo relativamente corto; Por lo tanto, en el protocolo se propone utilizar un formato de pocillos múltiples para el cultivo celular y microscopía de fluorescencia automatizada para la obtención de imágenes. El protocolo incluye la transfección de células HeLa humanas con una biblioteca de ARNip y el posterior monitoreo de la replicación o reparación del ADNmt utilizando el etiquetado metabólico del ADN recién sintetizado con BrdU. Este enfoque se combina con la inmunotinción del ADN con la ayuda de anticuerpos anti-ADN. Ambos parámetros se analizan mediante microscopía de fluorescencia cuantitativa. Además, las mitocondrias se visualizan con un tinte específico. Para demostrar la especificidad del protocolo, se probó la tinción de BrdU en células desprovistas de ADNmt (células rho0), en células HeLa tras el silenciamiento de factores de mantenimiento de ADNmt bien conocidos y en células HeLa después del tratamiento con un inhibidor de la replicación del ADNmt. Los niveles de ADNmt también se midieron mediante un método independiente, a saber, qPCR.

Protocol

1. Preparación de la mezcla de siRNA Un día antes del inicio del experimento, células semilla (por ejemplo, HeLa) en un plato de 100 mm para que alcancen una confluencia del 70% -90% al día siguiente.NOTA: Todas las operaciones deben realizarse en condiciones estériles en una cámara de flujo laminar. Preparar la cantidad adecuada de siRNA diluido a una concentración de 140 nM en medio Opti-MEM (ver Tabla de materiales). Una placa de 96 pocillos se puede uti…

Representative Results

En la Figura 1 se muestra un esquema del procedimiento para el estudio de alto rendimiento de la dinámica de la síntesis y distribución del ADNmt. El uso de un formato de placa de múltiples pocillos permite el análisis simultáneo de muchas condiciones experimentales diferentes, como el silenciamiento de diferentes genes utilizando una biblioteca de ARNsi. Las condiciones utilizadas para el etiquetado de moléculas de ADN recién sintetizadas con BrdU permiten la detección de ADN marca…

Discussion

Históricamente, el etiquetado de ADN por incorporación de BrdU y detección de anticuerpos se ha utilizado en la replicación del ADN nuclear y la investigación del ciclo celular 14,27,28. Hasta ahora, todos los protocolos para detectar ADN marcado con BrdU han incluido un paso de desnaturalización del ADN (ácido o térmico) o digestión enzimática (DNasa o proteinasa) para permitir la exposición al epítopo y facilitar l…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por el Centro Nacional de Ciencias, Polonia (Número de subvención / premio: 2018/31 / D / NZ2 / 03901).

Materials

2′,3′-Dideoxycytidine (ddC) Sigma-Aldrich D5782
384  Well Cell Culture Microplates, black Greiner Bio-One #781946
5-Bromo-2′-deoxyuridine (BrdU) Sigma-Aldrich B5002-1G Dissolve BrdU powder in water to 20 mM stock solution and aliquot. Use 20 µM BrdU solution for labeling.
Adhesive sealing film Nerbe Plus 04-095-0060
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG1 secondary antibody Thermo Fisher Scientific A-21121
Alexa Fluor 555 goat anti-mouse IgM secondary antibody Thermo Fisher Scientific A-21426
BioTek 405 LS microplate washer Agilent
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A4503
Cell counting chamber Thoma Heinz Herenz REF:1080339
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Cytiva SH30243.01
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Thermo Fisher Scientific 41965-062
Fetal Bovine Serum (FBS) Thermo Fisher Scientific 10270-106
Formaldehyde solution Sigma-Aldrich F1635 Formaldehyde is toxic; please read the safety data sheet carefully.
Hoechst 33342 Thermo Fisher Scientific H3570
IgG1 mouse monoclonal anti-BrdU (IIB5) primary antibody Santa Cruz Biotechnology sc-32323
IgM mouse monoclonal anti-DNA (AC-30-10) primary antibody Progen #61014
LightCycler 480 System Roche
Lipofectamine RNAiMAX Transfection Reagent Thermo Fisher Scientific #13778150
MitoTracker Deep Red FM Thermo Fisher Scientific M22426 Mitochondria tracking dye 
Multidrop Combi Reagent Dispenser Thermo Fisher Scientific
Opti-MEM Thermo Fisher Scientific 51985-042
Orca-R2 (C10600) CCD Camera Hamamatsu
Penicillin-Streptomycin  Sigma-Aldrich P0781-100ML
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma-Aldrich P4417-100TAB
PowerUp SYBR Green Master Mix Thermo Fisher Scientific A25742
qPCR primer Fw B2M (reference) CAGGTACTCCAAAGATTCAGG 
qPCR primer Fw GPI (reference gene) GACCTTTACTACCCAGGAGA
qPCR primer Fw MT-ND1  TAGCAGAGACCAACCGAACC 
qPCR primer Fw POLG TGGAAGGCAGGCATGGTCAAACC
qPCR primer Fw TFAM GATGAGTTCTGCCTGCTTTAT
qPCR primer Fw TWNK GCCATGTGACACTGGTCATT
qPCR primer Rev B2M (reference) GTCAACTTCAATGTCGGATGG 
qPCR primer Rev GPI (reference gene) AGTAGACAGGGCAACAAAGT
qPCR primer Rev MT-ND1  ATGAAGAATAGGGCGAAGGG 
qPCR primer Rev POLG GGAGTCAGAACACCTGGCTTTGG
qPCR primer Rev TFAM GGACTTCTGCCAGCATAATA
qPCR primer Rev TWNK AACATTGTCTGCTTCCTGGC
ScanR microscope Olympus
siRNA Ctrl Dharmacon D-001810-10-5
siRNA POLG Invitrogen POLGHSS108223
siRNA TFAM Invitrogen TFAMHSS144252
siRNA TWNK Invitrogen C10orf2HSS125597
Suction device NeoLab 2-9335 Suction device for cell culture
Triton X-100 Sigma-Aldrich T9284-500ML
Trypsin Biowest L0931-500
UPlanSApo 20x 0.75 NA objective Olympus

Referencias

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Borowski, L. S., Kasztelan, K., Czerwinska-Kostrzewska, J., Szczesny, R. J. High-Throughput Image-Based Quantification of Mitochondrial DNA Synthesis and Distribution. J. Vis. Exp. (195), e65236, doi:10.3791/65236 (2023).

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