Questo studio descrive i passaggi per ottenere immagini ad alta risoluzione del cervello di topo neonatale combinando la micro-tomografia computerizzata (micro-CT) e un agente di contrasto in campioni ex vivo . Descriviamo le analisi morfometriche di base per quantificare le dimensioni e la forma del cervello in queste immagini.
Le neuroimmagini sono uno strumento prezioso per studiare la morfologia del cervello in esperimenti che utilizzano modelli animali. La risonanza magnetica per immagini (MRI) è diventata il metodo standard per i tessuti molli, anche se la sua bassa risoluzione spaziale pone alcuni limiti per i piccoli animali. In questo articolo, descriviamo un protocollo per ottenere informazioni tridimensionali (3D) ad alta risoluzione su cervelli e crani di topi neonati utilizzando la micro-tomografia computerizzata (micro-CT). Il protocollo include quei passaggi necessari per sezionare i campioni, colorare e scansionare il cervello e ottenere misurazioni morfometriche dell’intero organo e delle regioni di interesse (ROI). L’analisi delle immagini include la segmentazione delle strutture e la digitalizzazione delle coordinate dei punti. In sintesi, questo lavoro dimostra che la combinazione di micro-CT e soluzione di Lugol come agente di contrasto è un’alternativa adatta per l’imaging del cervello perinatale di piccoli animali. Questo flusso di lavoro di imaging ha applicazioni nella biologia dello sviluppo, nella biomedicina e in altre scienze interessate a valutare l’effetto di diversi fattori genetici e ambientali sullo sviluppo del cervello.
L’imaging con tomografia microcomputerizzata (micro-CT) è uno strumento prezioso per diversi campi di ricerca. In biologia, è particolarmente adatto per la ricerca sulle ossa a causa dell’assorbimento dei raggi X nei tessuti mineralizzati. A causa di questa caratteristica, diverse questioni riguardanti lo sviluppo osseo1, il metabolismo2 e l’evoluzione 3,4, tra gli altri argomenti, sono state affrontate con l’assistenza della micro-TC. Nel 2008, de Crespigny et al.5 hanno dimostrato che le immagini micro-CT di cervelli adulti di topi e conigli potevano essere ottenute utilizzando lo iodio come agente di contrasto. Questo lavoro ha aperto una nuova applicazione per questa tecnica di imaging, poiché lo iodio ha permesso l’acquisizione di immagini da tessuti molli che altrimenti sarebbero stati insensibili ai raggi X. Pertanto, l’obiettivo generale della combinazione di micro-TC e di un mezzo di contrasto a base di iodio è quello di ottenere immagini ad alta risoluzione, in cui i tessuti molli possano essere distinti e identificati a livello meso o macro anatomico.
Questa tecnica ha un notevole potenziale per studi che richiedono una dettagliata caratterizzazione fenotipica ex vivo di piccoli campioni, come gli embrioni di topo, che sono ampiamente utilizzati nei disegni sperimentali6. Il mezzo di contrasto con iodio in combinazione con l’imaging micro-CT è stato utilizzato per ottenere quantificazioni volumetriche degli organi7 e delle strutture tridimensionali (3D)di riferimento 8,9. Negli ultimi anni, la scansione micro-CT di campioni colorati è stata applicata per descrivere le caratteristiche fenotipiche cerebrali dei roditori10 e sono stati proposti diversi miglioramenti alla tecnica. Per i cervelli adulti, un protocollo di 48 ore di immersione nello iodio, con una precedente fase di perfusione con un idrogel, è risultato produrre immagini di alta qualità11. Gignac et al.12 hanno ampliato i limiti di questa tecnica dimostrando che i cervelli di ratto colorati con iodio potevano essere processati per eseguire tecniche istologiche di routine. Allo stesso modo, queste procedure dimostrano risultati promettenti per i cervelli di roditori embrionali e pre-svezzamento 8,13,14,15.
Sebbene le neuroscienze abbiano ampiamente applicato tecniche basate sul microscopio per valutare diversi aspetti strutturali e funzionali dello sviluppo del cervello, tali studi sono più adatti per caratterizzare specifiche popolazioni cellulari o strutture spazialmente limitate. Al contrario, l’imaging micro-CT consente la descrizione di intere strutture e l’acquisizione di modelli 3D che conservano informazioni spaziali rilevanti, complementari alle tecniche microscopiche. La risonanza magnetica per immagini (MRI) è anche una tecnica standard applicata per esplorare le caratteristiche strutturali dei piccoli animali 16,17,18. Tuttavia, la micro-CT, con l’uso di un mezzo di contrasto, presenta due vantaggi principali per i campioni fissi ex vivo: gli scanner micro-CT sono in gran parte meno costosi e facili da usare, e consentono una risoluzione spaziale più elevata rispetto alla MRI12.
Questo lavoro ha lo scopo di descrivere la procedura per ottenere immagini ad alta risoluzione dal cervello di topo neonatale utilizzando la scansione micro-CT dopo la colorazione con la soluzione di Lugol, un agente di contrasto a base di iodio. Viene presentato un protocollo completo, che inizia con le fasi preliminari come la raccolta del campione e la fissazione dei tessuti, e passa attraverso la colorazione, l’acquisizione di immagini micro-CT e l’elaborazione standard. L’elaborazione delle immagini include la segmentazione di un volume 3D dell’intera testa, così come del cervello, e la selezione di piani anatomici specifici per digitalizzare le coordinate dei punti che potrebbero poi essere utilizzate nelle analisi morfometriche. Sebbene l’attenzione si concentri sul cervello neonatale del topo, strategie simili possono essere applicate ad altri tessuti molli. Pertanto, il protocollo qui presentato è abbastanza flessibile da poter essere applicato, con lievi modifiche, ad altri tipi di campioni.
In questo lavoro, viene introdotto un protocollo conciso per la scansione dei tessuti cerebrali neonatali di topi utilizzando la micro-TC con un agente di contrasto. Inoltre, include procedure semplici per ottenere risultati quantitativi e qualitativi. Sulla base di questi metodi, è possibile eseguire ulteriori analisi alternative o complementari.
Come mostrato nel protocollo, le immagini micro-CT possono essere analizzate in diversi modi. In studi precedenti, il nostro gruppo ha stimato la v…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo Wei Liu per la sua assistenza tecnica. Questo lavoro è finanziato da ANPCyT PICT 2017-2497 e PICT 2018-4113.
µCT 35 | Scanco Medical AG | Note that Scanco does not offer the µCT 35 anymore. Their smallest scanner is now the µCT 45 | |
Avizo | Visualization Sciences Group, VSG | ||
C57BL/6 Mice | Bioterio Facultad de Ciencias Veterinarias Universidad Nacional de La Plata | ||
Conical tubes | Daigger | CH-CI4610-1856 | |
Flux cabinet | Esco | AC2-458 | |
Glass beaker | Glassco | GL-229.202.10 | |
Glass bottle | Simax | CFB017 | |
Glass funnel | HDA | VI1108 | |
HCl | Carlo Erba | 403872 | Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
I2 | Cicarelli | 804211 | When preparing I2KI, manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
KI | Cicarelli | PA131542.1210 | When preparing I2KI, manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
Magnetic stirring | Arcano | 4925 | |
NaOH | Cicarelli | 1580110 | Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
Orbital shaker | Biomint | BM021 | |
Paraformaldehyde | Biopack | 2000959400 | Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
Paton spatula | Glassco | GL-377.303.01 | |
PBS | Biopack | 2000988800 | |
Plastic Pasteur pipette | Daigger | 9153 | |
R | R Project | The package geomorph for R was used in the protocol (https://cran.r-project.org/web/packages/geomorph/index.html) | |
Scissors | Belmed | ||
Sodium azide | Biopack | 2000163500 | |
Thermometer | Daigger | 7650 |