여기에서는 자기 공명 유도 집속 초음파를 사용하여 생체 내 마우스 교모세포종 모델에서 초음파 역학 치료를 수행하는 방법을 자세히 설명하는 프로토콜을 설명합니다.
초음파 역학 요법 (SDT)은 초음파 처리 중 감도를 높이기 위해 종양에 초음파 감작제를 사용할 수있는 집속 초음파 (FUS)의 적용입니다. 안타깝게도 교모세포종(GBM)에 대한 현재 임상 치료법이 부족하여 환자들의 장기 생존율이 낮습니다. SDT는 교모세포종을 효과적이고 비침습적이며 종양에 특이적인 방식으로 치료할 수 있는 유망한 방법입니다. 초음파 감작제는 주변 뇌 실질에 비해 종양 세포에 우선적으로 진입합니다. 초음파 감작제의 존재 하에 FUS를 적용하면 반응성 산화 종이 생성되어 세포 사멸이 발생합니다. 이 치료법은 이전에 전임상 연구에서 효과적인 것으로 나타났지만 확립된 표준화된 매개변수가 부족합니다. 전임상 및 임상적 사용을 위해 이 치료 전략을 최적화하기 위해서는 표준화된 방법이 필요합니다. 이 논문에서는 MRgFUS(Magnetic Resonance-Guided FUS)를 사용하여 전임상 교모세포종 설치류 모델에서 SDT를 수행하는 프로토콜에 대해 자세히 설명합니다. MRgFUS는 침습적 수술(예: 개두술) 없이 뇌종양을 특이적으로 표적화할 수 있기 때문에 이 프로토콜의 중요한 기능입니다. 여기에 사용된 벤치탑 장치는 MRI 이미지에서 표적을 클릭하여 3차원의 특정 위치에 초점을 맞출 수 있으므로 표적을 간단하게 선택할 수 있습니다. 이 프로토콜은 연구자들에게 MRgFUS SDT에 대한 표준화된 전임상 방법을 제공하며, 중개 연구를 위한 매개변수를 변경하고 최적화할 수 있는 유연성을 제공합니다.
교모세포종(GBM)은 100,000명당 3.21명의 발병률을 보이는 매우 공격적인 뇌종양의 한 형태이며 가장 흔한 악성 뇌종양이다1. 현재 표준 치료에는 외과적 절제, 방사선 및 화학 요법이 포함됩니다2. 종양의 침습성 및 침윤성 특성으로 인해 완전한 종양 절제는 드뭅니다. 종양 가장자리에 잔류 조직이 있으면 종양 재발률이 높고5년 후 생존율이 6% 미만으로 낮다(1).
이러한 예후로 인해 연구자들은 이 치명적인 질병과 싸우기 위한 새로운 치료 옵션을 모색하고 있습니다. 초음파 역학 치료(SDT)는 저강도 집속 초음파(FUS)와 초음파 감작제를 결합하여 표적 세포에서 세포독성 효과를 생성하는 비침습적 치료법입니다3. 예를 들어, 5-아미노레불린산(5-ALA)과 같은 포르피린 기반 초음파 감작제는 종양 세포에 우선적으로 흡수되며 집속 초음파에 노출될 때 반응성 산화종(ROS) 생성을 손상 수준으로 증가시킵니다. 세포에서 과도하게 발현된 ROS 수준은 세포 구조를 손상시키고 세포 사멸을 유발할 수 있습니다. 5-ALA는 종양 세포에 우선적으로 흡수되기 때문에 치료 부위 내의 건강한 조직은 손상되지 않습니다 3,4. 예비 시험관 내 연구에 따르면 많은 암세포가 SDT 처리로 용해되지만 세포 사멸 속도는 세포주에 따라 다릅니다. 예비 생체 내 연구에서도 SDT가 세포사멸을 유발할 수 있음을 확인하면서 유사한 결과가 나왔다5.
이 프로토콜은 벤치탑 FUS 연구 플랫폼을 사용하여 두개내 이식된 교모세포종 세포를 사용하는 설치류 모델의 SDT 치료를 위한 효과적인 기술과 매개변수를 설명하는 것을 목표로 합니다. 연구원은 이 프로토콜을 사용하여 중개 FUS 연구를 위한 SDT를 수행하고 최적화할 수 있습니다.
교모세포종 환자에게는 새로운 치료법과 효과적인 치료법이 필요하다. 이 프로토콜은 현재 임상 번역을 위해 광범위한 조사를 진행 중인 교모세포종에 대한 전임상 FUS 매개 치료법을 설명했습니다. SDT는 흥미로운 잠재력을 가지고 있지만 전임상 환경에서 이해하고 최적화해야 할 것이 여전히 많습니다.
이 프로토콜의 가장 중요한 구성 요소 중 하나는 MR 유도 FUS를 활용하여 종양을 표적으로 삼아 효능을 극대화하는 것입니다. 팬텀을 사용하여 축 MRI 슬라이스의 각 픽셀에 좌표를 할당할 수 있는 3D 좌표 공간을 생성할 수 있습니다. 그런 다음 MR 이미지에서 초음파 처리 위치를 선택하는 간단한 절차를 통해 변환기가 조준할 위치를 알려줍니다. 사용되는 전임상 FUS 시스템은 매우 다재다능하며 영상 확인 없이는 표적화하기 어려운 더 깊은 종양을 포함하여 종양과 같은 특정 병리의 위치를 표적화해야 할 때 적용할 수 있습니다. 가돌리늄을 조영제로 사용하면 종양을 명확하게 시각화할 수 있어 사용자가 표적을 선택할 때 정보에 입각한 결정을 내릴 수 있습니다. SDT가 다른 많은 치료법에 비해 갖는 장점은 종양 특이적 치료법이라는 것입니다. 저강도 FUS는 종양 조직만을 표적으로 삼아야 하며, 건강한 뇌 실질은 상대적으로 건드리지 않아야 한다 3,8.
이 실험의 결과는 이 프로토콜의 장점이 SDT에 대한 문헌의 다른 발견과 유사한 치료 결과로 이어질 수 있음을 강조합니다. 그림 5 는 치료일 후 24시간 이내에 치료된 코호트에서 종양 성장이 느려졌음을 보여줍니다. 이 작은 표본 크기를 사용하면 중요하지 않지만 동물 수가 많을수록 유의성이 발생할 수 있습니다. 이러한 종양 성장 지연은 Wu et al.(2019)의 선구적인 논문에서 밝혀진 것과 유사한데, 이 논문은 치료된 동물에서 시간이 지남에 따라 종양 성장이 느려지고 생존 시간이 증가한 것으로 나타났다9.
이 프로토콜을 설계할 때 고려 사항에는 동물 균주, 종양 유형 및 초음파 감작제 선택이 포함되었습니다. 흉선성 누드 마우스는 여러 가지 이유로 이 프로토콜에 선택되었습니다. 첫째, 누드 마우스는 머리카락이 없기 때문에 감쇠를 방지하기 때문에 초음파 처리가 더 쉽습니다. 또한 면역 체계가 없기 때문에 환자 유래 이종이식(PDX)을 이식할 수 있으므로 종양 모델이 임상 상황과 더 유사합니다. 무흉선 모델을 사용하는 것의 단점은 면역 체계를 특성화할 수 없기 때문에 SDT에서 생성된 면역 반응은 이 연구에서 측정되지 않는다는 것입니다10. 선택된 종양 라인은 공격적이고 빠르게 성장하는 PDX 라인입니다. 종양의 확립을 확인해야 하지만 종양 부담이 두개골 반구를 채우지 않아야 하기 때문에 치료 시간이 매우 중요합니다. 세포주마다 전임상 실험을 위한 최적의 크기의 종양을 얻기 위해 서로 다른 배양 시간이 필요합니다. 이 프로토콜에서 5-ALA는 교모세포종 종양에서 우선적으로 흡수되기 때문에 초음파감작제로 사용되었으며, 이는 이전 실험(미공개 데이터)에서 이 세포주에 대해 시험관 내에서 확인되었습니다. 다른 초음파 감작제를 치환하고 테스트하여 효능 및 안전성에 가장 적합한 화합물을 결정할 수 있습니다. 마지막으로, 치료는 5-ALA 주사 후 3시간 후에 시작되었는데, 이는 이전 문헌에서 이 주사 용량(5)이 최적의 시기임을 보여주었다.
이 프로토콜에서 선택된 FUS 파라미터(각 타겟 위치에서 515kHz에서 2분 동안 10W/cm2)는 이전 문헌 및 초기 실험 4,9의 검토를 기반으로 결정되었습니다. 전체 종양에 걸쳐 ROS 효과를 생성하기 위해 전체 종양을 덮는 초음파 처리 지점의 그리드를 선택했습니다. 여기에 사용된 강도는 다른 간행물보다 높지만, 짧은 시간 범위에서, 최대 25W/cm2의 강도가 심각한 부작용 없이 마우스 모델에서 성공적으로 사용되었기 때문에, 이는 온도와 관련된 어떠한 악영향도 초래하지 않을 것으로 예상된다11. 중요한 것은 표준화되거나 최적화된 FUS 파라미터 세트가 문헌에 발표되지 않았다는 것입니다. 따라서 여기에 보고된 특정 값을 조정하여 최적의 매개변수 세트를 결정할 수 있으며, 이를 통해 안전성을 유지하면서 종양 조직을 최대한 줄일 수 있습니다. 또한 세포주에 따라 혈관 형성 및 저산소증 수준이 다르기 때문에 이 치료법을 조정해야 할 수도 있습니다. SDT 치료 후 24시간 이내에 종양 성장이 전반적으로 감소한 것으로 나타났지만(그림 5), 이 치료의 최대 효과를 결정하기 위해서는 파라미터를 최적화하고 더 많은 동물을 테스트해야 합니다. 치료 후 MRI 스캔에서는 건강한 조직에서 FUS 치료로 인해 생성된 병변이 나타나지 않으며 그 효과는 종양 조직에 국한되어 있습니다(그림 6). 또한 SDT를 혈액-뇌장벽의 일시적인 투과와 같은 다른 FUS 기술과 결합하여 종양에서 5-ALA 흡수를 극대화할 수 있는 기회도 있다12. 이 프로토콜은 구조적 수준에서 안전성과 효능을 확인하기 위해 다양한 조직학 기술을 수행함으로써 추가로 보완될 수 있습니다. 헤마톡실린 및 에오신(H&E) 염색을 수행하여 구조적 손상 또는 종양 손상13을 확인할 수 있으며, 말단 데옥시뉴클레오티딜 전이효소 dUTP 닉엔드 라벨링(TUNEL) 염색을 수행하여 세포 사멸14을 확인할 수 있다. 어쨌든, 이 프로토콜은 SDT로 치료된 종양과 치료되지 않은 종양의 성장률을 비교하고 초음파 처리 전후의 종양 절편을 비교함으로써 명백한 치료 후 24시간에도 변화가 눈에 띄는 안전한 종양별 치료를 제공합니다.
모든 프로토콜에는 항상 고려해야 할 단점이나 한계가 있습니다. 현재 프로토콜의 주요 한계는 시간과 비용입니다. 한편, 이 프로토콜의 장점 중 하나는 자동화된 집중 조준입니다. 이 집중 절차를 수행하려면 각 개별 동물에 대해 MRI 스캔을 수행하여 종양의 표적화가 정확한지 확인해야 하며, 이 과정은 시간과 비용이 많이 소요될 수 있습니다. 또한 원하는 초점의 수에 따라 이 프로토콜을 수행하는 데 걸리는 시간이 몇 마리의 동물에 대해서도 몇 시간이 걸릴 수 있으므로 실험 동물의 수가 줄어들 수 있습니다. 이러한 단점에도 불구하고, 이 표적 비침습적 프로토콜은 개복 수술 옵션과 비교할 때 여전히 실현 가능한 선호 사항으로 남아 있습니다.
결론적으로, 이 프로토콜은 전임상 마우스 모델에서 건강한 신경 조직을 유지하면서 치료 후 24시간 이내에 뇌의 종양 성장을 줄이는 SDT 치료의 능력을 보여주었습니다. 이 치료법을 임상적으로 적합하게 만들기 위해서는 SDT의 효과에 대한 연구와 ROS 생성을 증가시키기 위한 다양한 매개변수의 최적화가 필요합니다. SDT를 비침습적 치료 모델로 사용하기 위한 새로운 방법을 모색해야 합니다.
The authors have nothing to disclose.
저자들은 미국 국립과학재단(NSF)의 STTR Phase 1 Award(#: 1938939), ASME DARPA(Defense Advanced Research Projects Agency) Award(#: N660012024075), 그리고 NIH(National Institutes of Health) NCATS(National Center for Advancing Translational Sciences)가 관리하는 Johns Hopkins Institute for Clinical and Translational Research(ICTR)의 Clinical Research Scholars Program(KL2)의 자금 지원을 인정합니다. 세포는 Mayo Foundation for Medical Education and Research에서 구입하여 제공했습니다.
0.5% Trypsin-EDTA | Thermo Fisher Scientific | 15400054 | |
1 mL Syringes | BD | 309597 | |
10 µL Hamilton syringe | Hamilton Company | 49AL65 | |
10 µL Pipette tips | USAScientific | ||
1000 mL Flask | Corning | MP-34514-25 | |
15 mL conical tubes | Corning | CLS430791 | |
200 Proof ethanol | PharmCo | 111000200 | |
5 mL pipettes | Falcon | 357543 | |
50 mL Conical tubes | Corning | 430290 | |
500 mL filter | Corning | 431097 | |
5-Aminolevulinic acid hydrochloride | Research Products International | A11250 | |
7T PET-MR system | Bruker | Biospec 70/30 | |
Aluminum foil | Reynolds Brand | ||
Amplifier | FUS Instruments | 2175 | |
Athymic nude mice | Charles River Laboratories | Strain Code 490 | |
Bone drill | Foredom | HP4-917 | |
Centrifuge | Thermo Fisher Scientific | 75004261 | |
Charcoal isoflourane waste container | Patterson scientific | 78909457 | |
Computer | FUS Instruments | 2269 | |
Cover glass | Fisherbrand | 12-545J | |
Desktop monitor | ASUS | VZ239H | |
D-Luciferin | Gold Biotechnology | LUCK-1G | |
DMEM | Thermo Fisher Scientific | 11965092 | |
Electronic shaver | Wahl | 93235-002 | |
Eppendorf tubes | Posi-Click | 1149K01 | |
Fetal bovine serum | Thermo Fisher Scientific | 16000044 | |
Formalin | Thermo Fisher Scientific | SF100-20 | |
Function generator | Siglent | QS0201X-E01B | |
Gadolinium contrast agent (Gadavist) | McKesson Corporation | 2068062 | |
Gauze | Henry Schein | 101-4336 | |
Heat lamp | |||
Heat pad | Kent Scientific | RT-0501 | |
Hemocytometer | Electron Microscopy Sciences | 63514-12 | |
Induction chamber | Patterson scientific | 78933388 | |
Isofluorane vaporizer | Patterson scientific | 78916954 | |
Isoflurane | Covetrus | 29405 | |
Isoflurane system | Patterson Scientific | 78935903 | |
IVIS spectrum | Perkin Elmer | 124262 | |
Lightfield microscope | BioTek | Cytation 5 | |
Nair | Church and Dwight Co. | 42010553 | |
Ophthalmic ointment | Puralube vet ointment | ||
P-20 pippette | Rainin | 17008650 | |
Patient derived xenographs | Mayo Clinic | M59 | |
Penicillin/Streptomyosin | Thermo Fisher Scientific | 10378016 | |
Phosphate buffered saline | Thermo Fisher Scientific | 70-011-069 | |
Pippetter | Drummond | 4-000-101 | |
Povidone-iodine | Covetrus | PI050CV | |
RK-50 MRgFUS system | FUS Instruments | 2182 | |
Scale | |||
Scalpel blade | Covetrus | 7319 | |
Scalpel handle | Fine Science Tools | 91003-12 | |
Screwdriver set | Jakemy | JM-8160 | |
Skin marker | Time Out | D538,851 | |
Staple remover | MikRon | ACR9MM | |
Stapler | MikRon | ACA9MM | |
Staples | Clay Adams | 427631 | |
Stereotactic frame | Kopf Instruments | 5000 | |
Stereotactic MRI prototype plastic imaging fixture | FUS Instruments | ||
T-25 culture flask | Corning | 430641U | |
Transducer and matching box | FUS Instruments | T515H750-118 | |
Ultrasonic degasser | FUS Instruments | 2259 | |
Ultrasound gel | ParkerLabs | 01-08 | |
Water bath | FUS Instruments | ||
Xylazine | Covetrus | 1XYL006 |