Summary

Modèle animal de poisson zèbre pour l’étude des réactions allergiques en réponse aux biomolécules de salive des tiques

Published: September 16, 2022
doi:

Summary

Ici, le poisson zèbre (Danio rerio) est utilisé comme modèle pour étudier les réactions allergiques et les réponses immunitaires liées au syndrome alpha-Gal (AGS) en évaluant les réactions allergiques à la salive des tiques et à la consommation de viande de mammifère.

Abstract

Les tiques sont des arthropodes vecteurs qui causent des maladies par transmission d’agents pathogènes et dont les piqûres pourraient être liées à des réactions allergiques ayant un impact sur la santé humaine dans le monde entier. Chez certaines personnes, des taux élevés d’anticorps anti-immunoglobuline E dirigés contre le glycane Galα1-3Galβ1-(3)4GlcNAc-R (α-Gal) ont été induits par des piqûres de tiques. Les réactions anaphylactiques médiées par les glycoprotéines et les glycolipides contenant le glycane α-Gal, présent dans la salive des tiques, sont liées au syndrome alpha-Gal (AGS) ou à l’allergie à la viande chez les mammifères. Le poisson zèbre (Danio rerio) est devenu un modèle vertébré largement utilisé pour l’étude de différentes pathologies. Dans cette étude, le poisson zèbre a été utilisé comme modèle pour l’étude des réactions allergiques en réponse à la consommation de viande de α-Gal et de mammifères car, comme les humains, ils ne synthétisent pas ce glycane. À cette fin, les modèles comportementaux et les réactions allergiques hémorragiques de type anaphylactique en réponse à la salive de tiques Ixodes ricinus et à la consommation de viande de mammifère ont été évalués. Cette approche expérimentale permet d’obtenir des données valides qui soutiennent le modèle animal du poisson zèbre pour l’étude des allergies transmises par les tiques, y compris l’AGS.

Introduction

Les tiques sont des vecteurs d’agents pathogènes qui causent des maladies et sont également la cause de réactions allergiques, affectant la santé des humains et des animaux dans le mondeentier 1,2. Lors de l’alimentation des tiques, les biomolécules contenues dans la salive des tiques, en particulier les protéines et les lipides, facilitent l’alimentation de ces ectoparasites, évitant ainsi les défenses de l’hôte3. Certaines biomolécules salivaires avec des modifications du glycane Galα1-3Galβ1-(3)4GlcNAc-R (α-Gal) entraînent la production d’anticorps IgE anti-α-Gal élevés après la piqûre de tique, seulement chez certains individus, connu sous le nom de syndrome de α-Gal (AGS)4. Il s’agit d’une maladie associée à une allergie médiée par les IgE qui peut entraîner une anaphylaxie aux piqûres de tiques, à la consommation de viande de mammifères non primates et à certains médicaments tels que le cétuximab5. Les réactions au α-Gal sont souvent graves et peuvent parfois être fatales 6,7,8,9,10,11,12,13,14,15.

Le α-Gal se trouve chez tous les mammifères, à l’exception des singes de l’Ancien Monde, des singes et des humains qui n’ont pas la capacité de synthétiser α-Gal13. Cependant, les agents pathogènes tels que les bactéries et les protozoaires expriment ce glycane à leur surface, ce qui peut induire la production de grandes quantités d’anticorps IgM/IgG anti-α-Gal et peut constituer un mécanisme de protection contre ces agents pathogènes16,17. Cependant, la production d’anticorps anti-α-Gal augmente le risque de développer des allergies aux anti-α-Gal médiées par les IgE 7,13. Les anticorps naturels anti-α-Gal produits chez l’homme, principalement des sous-types IgM/IgG, pourraient être associés à cette modification présente dans les bactéries du microbiote intestinal16. L’AGS peut être un diagnostic clinique difficile, car la principale méthode de diagnostic à l’heure actuelle est basée sur des antécédents cliniques de réactions allergiques retardées, en particulier associées à des allergies alimentaires (c.-à-d. prurit, urticaire localisé ou œdème de Quincke récurrent à l’anaphylaxie, à l’urticaire et aux symptômes gastro-intestinaux) et la mesure des taux d’anticorps IgE anti-α-Gal9. Les résultats actuels suggèrent que les piqûres de tiques constituent l’un des principaux risques liés à l’apparition d’AGS 18,19, à une augmentation de 20 fois ou plus des taux d’IgE à α-Gal après une piqûre de tique 19, à des antécédents de piqûres de tiques chez les patients atteints d’AGS20,21,22, à l’existence d’anticorps réactifs aux antigènes à tiques chez les patients atteints d’AGS 19, et que les IgE anti-α-Gal sont fortement liées aux taux d’IgE anti-tiques19,23, mais que d’autres études sont nécessaires pour évaluer quelles biomolécules sont réellement impliquées.

En outre, un autre scénario possible est celui des patients qui présentent de fortes réactions allergiques aux piqûres de tiques et des taux élevés d’anticorps anti-α-Gal IgE, mais qui sont tolérants à la consommation de viande de mammifères12. Par conséquent, l’allergie à la viande chez les mammifères pourrait être un type particulier d’allergie liée aux piqûres de tiques. Les principales espèces de tiques associées à l’AGS sont Amblyomma americanum (États-Unis), Amblyomma sculptum (Brésil), Amblyomma testudinarium et Haemaphysalis longicornis (Japon), Ixodes holocyclus (Australie) et Ixodes ricinus (principal vecteur de la borréliose de Lyme en Europe )11,24.

Le seul modèle qui a été utilisé pour évaluer la production d’IgE liée aux piqûres de tiques est le modèle murin génétiquement modifié avec le gène de la α-1,3-galactosyltransférase assommée (α-Gal KO)25,26 parce que, comme d’autres mammifères, les souris expriment également α-Gal sur les protéines et les lipides et ne produisent pas d’IgE à α-Gal. Cependant, le poisson zèbre (Danio rerio) est un modèle utile pour la recherche biomédicale appliquée aux mammifères car il partage de nombreuses similitudes anatomiques avec les mammifères et, comme les humains, est également incapable de synthétiser α-Gal. Étant donné que le α-Gal n’est pas produit naturellement chez le poisson zèbre, il s’agit d’un modèle abordable, facile à manipuler et permettant une taille d’échantillon élevée pour l’étude des réactions allergiques liées au α-Gal.

Dans cette étude, le poisson zèbre est utilisé comme organisme modèle pour caractériser et décrire les réactions allergiques locales, les modèles comportementaux et les mécanismes moléculaires associés à la réponse à la sensibilisation percutanée à la salive des tiques26,27 et à la consommation subséquente de viande de mammifère. À cette fin, les poissons sont exposés à la salive des tiques par injection intradermique, puis sont nourris avec des aliments pour chiens, qui contiennent des produits dérivés de viande de mammifères adaptés à l’usage animal qui contiennent α-Gal27, puis les réactions allergiques connexes possibles sont évaluées. Cette méthode peut être appliquée à l’étude d’autres biomolécules liées aux processus allergiques, en particulier ceux liés à l’AGS.

Protocol

Toutes les méthodes décrites ici ont été approuvées par le Comité d’éthique de l’expérimentation animale de l’Université de Castille-La Manche dans le cadre de l’étude « Évaluation de la réponse immunitaire au vaccin inactivé contre M. bovis et provocation avec M. marinum dans le numéro de modèle du poisson zèbre PR-2017-05-12 ». Les tiques ont été obtenues à partir de la colonie de laboratoire, où des échantillons représentatifs de tiques de…

Representative Results

Le protocole présenté ici est basé sur plusieurs aspects d’expériences précédemment publiées27,30 et de résultats réalisés dans notre laboratoire où le modèle de poisson zèbre est établi et validé pour l’étude de l’AGS et de la réponse immunitaire au α-Gal car les humains et les poissons-zèbres ne synthétisent pas cette molécule13. Ce modèle permet la caractérisation et l’évaluation d’une variété de réa…

Discussion

Le poisson zèbre est un modèle rentable et facile à manipuler qui a également été un outil très pratique pour l’étude des mécanismes moléculaires de la réponse immunitaire, des maladies pathogènes, des tests de nouveaux médicaments, de la vaccination et de la protection contre les infections33,34,35. L’étude sur le comportement du poisson zèbre est utile car des études antérieures ont montré que certaines e…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous tenons à remercier les membres du groupe SaBio pour leur collaboration dans la conception expérimentale et l’assistance technique avec l’installation expérimentale sur les poissons et Juan Galcerán Sáez (IN-CSIC-UMH, Espagne) pour avoir fourni le poisson zèbre. Ce travail a été soutenu par Ministerio de Ciencia e Innovación/Agencia Estatal de Investigación MCIN/AEI/10.13039/501100011033, Espagne et EU-FEDER (Grant BIOGAL PID2020-116761GB-I00). Marinela Contreras est financée par le Ministerio de Ciencia, Innovación y Universidades, Espagne, subvention IJC2020-042710-I.

Materials

1.5 mL tube VWR 525-0990
All Prep DNA/RNA Qiagen 80284
Aquatics facilities
BCA Protein Assay Kit  Thermo Fisher Scientific 23225
Disection set VWR 631-1279
Dog Food – Red Classic Acana
ELISA plates-96 well Thermo Fisher Scientific 10547781
Gala1-3Gal-BSA 3 (α-Gal)  Dextra NGP0203
iScript Reverse Transcription Supermix Supermix 1708840
Microliter syringes Hamilton 7638-01
Plate reader any
Phosphate buffered saline Sigma P4417-50TAB
pilocarpine hydrochloride  Sigma P6503
Pipette tip P10  VWR 613-0364
Pipette tip P1000 VWR 613-0359
Premium food tropical fish DAPC
Sponge Animal Holder  Made from scrap foam
Stereomicroscope any
Thermal Cycler Real-Time PCR any
Tricaine methanesulphonate (MS-222) Sigma E10521

Referencias

  1. de la Fuente, J., Estrada-Pena, A., Venzal, J. M., Kocan, K. M., Sonenshine, D. E. Overview: Ticks as vectors of pathogens that cause disease in humans and animals. Frontiers in Bioscience: A Journal and Virtual Library. 13 (18), 6938-6946 (2008).
  2. de la Fuente, J., et al. Tick-pathogen interactions and vector competence: identification of molecular drivers for tick-borne diseases. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 7, 114 (2017).
  3. Villar, M., et al. Characterization of tick salivary gland and saliva alphagalactome reveals candidate alpha-gal syndrome disease biomarkers. Expert Review of Proteomics. 18 (12), 1099-1116 (2021).
  4. Chmelař, J., Kotál, J., Kovaříková, A., Kotsyfakis, M. The use of tick salivary proteins as novel therapeutics. Frontiers in Physiology. 10, 812 (2019).
  5. Chung, C. H., et al. Cetuximab-induced anaphylaxis and IgE specific for galactose-alpha-1,3-galactose. The New England Journal of Medicine. 358 (11), 1109-1117 (2008).
  6. Van Nunen, S. A., O’Connor, K. S., Clarke, L. R., Boyle, R. X., Fernando, S. L. An association between tick bite reactions and red meat allergy in humans. The Medical Journal of Australia. 190 (9), 510-511 (2009).
  7. Cabezas-Cruz, A., et al. Environmental and molecular drivers of the α-Gal syndrome. Frontiers in Immunology. 10, 1210 (2019).
  8. de la Fuente, J., Pacheco, I., Villar, M., Cabezas-Cruz, A. The alpha-Gal syndrome: new insights into the tick-host conflict and cooperation. Parasites & Vectors. 12 (1), 154 (2019).
  9. Platts-Mills, T. A. E., et al. On the cause and consequences of IgE to galactose-α-1,3-galactose: A report from the National Institute of Allergy and Infectious Diseases workshop on understanding IgE-mediated mammalian meat allergy. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 145 (4), 1061-1071 (2020).
  10. Commins, S. P., et al. Delayed anaphylaxis, angioedema, or urticaria after consumption of red meat in patients with IgE antibodies specific for galactose-alpha-1,3-galactose. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 123 (2), 426-433 (2009).
  11. Platts-Mills, T. A. E., Schuyler, A. J., Tripathi, A., Commins, S. P. Anaphylaxis to the carbohydrate side chain alpha-gal. Immunology and Allergy Clinics of North America. 35 (2), 247-260 (2015).
  12. Mateos-Hernández, L., et al. Tick-host conflict: immunoglobulin E antibodies to tick proteins in patients with anaphylaxis to tick bite. Oncotarget. 8 (13), 20630-20644 (2017).
  13. Galili, U. Evolution in primates by "Catastrophic-selection" interplay between enveloped virus epidemics, mutated genes of enzymes synthesizing carbohydrate antigens, and natural anti-carbohydrate antibodies. American Journal of Physical Anthropology. 168 (2), 352-363 (2019).
  14. Hilger, C., Fischer, J., Wölbing, F., Biedermann, T. Role and mechanism of galactose-alpha-1,3-galactose in the elicitation of delayed anaphylactic reactions to red meat. Current Allergy and Asthma Reports. 19 (1), 3 (2019).
  15. Cabezas-Cruz, A., Valdés, J., de la Fuente, J. Cancer research meets tick vectors for infectious diseases. The Lancet. Infectious Diseases. 14 (10), 916-917 (2014).
  16. Yilmaz, B., et al. Gut microbiota elicits a protective immune response against malaria transmission. Cell. 159 (6), 1277-1289 (2014).
  17. Cabezas-Cruz, A., et al. Regulation of the immune response to α-Gal and vector-borne diseases. Trends in Parasitology. 31 (10), 470-476 (2015).
  18. Weins, A. B., Eberlein, B., Biedermann, T. Diagnostics of alpha-gal syndrome: Current standards, pitfalls and perspectives. Der Hautarzt; Zeitschrift Fur Dermatologie, Venerologie, Und Verwandte Gebiete. 70 (1), 36-43 (2019).
  19. Commins, S. P., et al. The relevance of tick bites to the production of IgE antibodies to the mammalian oligosaccharide galactose-α-1,3-galactose. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 127 (5), 1286-1293 (2011).
  20. Fischer, J., Yazdi, A. S., Biedermann, T. Clinical spectrum of α-Gal syndrome: from immediate-type to delayed immediate-type reactions to mammalian innards and meat. Allergo Journal International. 25 (2), 55-62 (2016).
  21. Hodžić, A., et al. Infection with Toxocara canis inhibits the production of IgE antibodies to α-Gal in humans: towards a conceptual framework of the hygiene hypothesis. Vaccines. 8 (2), 167 (2020).
  22. Kiewiet, M. B. G., et al. Clinical and serological characterization of the α-Gal syndrome-importance of atopy for symptom severity in a European cohort. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. In Practice. 8 (6), 2027-2034 (2020).
  23. Steinke, J. W., Platts-Mills, T. A. E., Commins, S. P. The alpha-gal story: lessons learned from connecting the dots. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 135 (3), 589-596 (2015).
  24. Hashizume, H., et al. Repeated Amblyomma testudinarium tick bites are associated with increased galactose-α-1,3-galactose carbohydrate IgE antibody levels: A retrospective cohort study in a single institution. Journal of the American Academy of Dermatology. 78 (6), 1135-1141 (2018).
  25. Chandrasekhar, J. L., et al. Cutaneous exposure to clinically relevant lone star ticks promotes IgE production and hypersensitivity through CD4+ T cell- and MyD88-dependent pathways in mice. Journal of Immunology. 203 (4), 813-824 (2019).
  26. Araujo, R. N., et al. Amblyomma sculptum tick saliva: α-Gal identification, antibody response and possible association with red meat allergy in Brazil. International Journal for Parasitology. 46 (3), 213-220 (2016).
  27. Contreras, M., et al. Allergic reactions and immunity in response to tick salivary biogenic substances and red meat consumption in the zebrafish model. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 10, 78 (2020).
  28. Poole, N. M., Mamidanna, G., Smith, R. A., Coons, L. B., Cole, J. A. Prostaglandin E(2) in tick saliva regulates macrophage cell migration and cytokine profile. Parasites & Vectors. 6 (2), 261 (2013).
  29. Seibel, H., Baßmann, B., Rebl, A. Blood will tell: what hematological analyses can reveal about fish welfare. Frontiers in Veterinary Science. 8, 616955 (2021).
  30. Pacheco, I., et al. Vaccination with alpha-gal protects against mycobacterial infection in the zebrafish model of tuberculosis. Vaccines. 8 (2), 195 (2020).
  31. Gupta, T., Mullins, M. C. Dissection of organs from the adult zebrafish. Journal of Visualized Experiments. (37), e1717 (2010).
  32. Lu, M. -. W., et al. The interferon response is involved in nervous necrosis virus acute and persistent infection in zebrafish infection model. Molecular Immunology. 45 (4), 1146-1152 (2008).
  33. Saralahti, A., et al. Adult zebrafish model for pneumococcal pathogenesis. Developmental and Comparative Immunology. 42 (2), 345-353 (2014).
  34. Gore, A. V., Pillay, L. M., Venero Galanternik, M., Weinstein, B. M. The zebrafish: A fintastic model for hematopoietic development and disease. Wiley Interdisciplinary Reviews. Developmental Biology. 7 (3), 312 (2018).
  35. Katoch, S., Patial, V. Zebrafish: An emerging model system to study liver diseases and related drug discovery. Journal of Applied Toxicology. 41 (1), 33-51 (2021).
  36. Kalueff, A. V., et al. Towards a comprehensive catalog of zebrafish behavior 1.0 and beyond. Zebrafish. 10 (1), 70-86 (2013).
  37. Xin, N., Jiang, Y., Liu, S., Zhou, Y., Cheng, Y. Effects of prednisolone on behavior and hypothalamic-pituitary-interrenal axis activity in zebrafish. Environmental Toxicology and Pharmacology. 75, 103325 (2020).
  38. Aleström, P., et al. Zebrafish: Housing and husbandry recommendations. Laboratory Animals. 54 (3), 213-224 (2020).

Play Video

Citar este artículo
Contreras, M., González-García, A., de la Fuente, J. Zebrafish Animal Model for the Study of Allergic Reactions in Response to Tick Saliva Biomolecules. J. Vis. Exp. (187), e64378, doi:10.3791/64378 (2022).

View Video