Summary

יצירת מיקרו-וננו-פלסטיק מסרטי פלסטיק חקלאיים לתעסוקה במחקרי יסוד

Published: July 27, 2022
doi:

Summary

אנו מראים את ההיווצרות והאפיון הממדי של מיקרו וננו-פלסטיקים (MPs ו-NPs, בהתאמה) באמצעות תהליך מדורג של כרסום מכני, השחזה וניתוח הדמיה.

Abstract

מיקרופלסטיק (MPs) וננו-פלסטיק (NPs) המפוזרים במערכות אקולוגיות חקלאיות עלולים להוות איום חמור על הביוטה בקרקע ובנתיבי מים סמוכים. בנוסף, כימיקלים כמו חומרי הדברה שנספגים על ידי NPs יכולים לפגוע באורגניזמים בקרקע ועלולים להיכנס לשרשרת המזון. בהקשר זה, שימוש חקלאי בפלסטיק כגון יריעות חיפוי מפלסטיק תורם באופן משמעותי לזיהום הפלסטיק במערכות אקולוגיות חקלאיות. עם זאת, רוב המחקרים הבסיסיים על גורל ורעילות אקולוגית משתמשים בחומרי MP אידיאליים ומייצגים בצורה גרועה, כגון מיקרוספרות פוליסטירן.

לכן, כפי שמתואר כאן, פיתחנו הליך רב-שלבי בקנה מידה מעבדתי כדי ליצור באופן מכני חברי פרלמנט ו-NPs מייצגים למחקרים כאלה. החומר הפלסטי הוכן מסרטי חיפוי פלסטיק מסחריים של פוליבוטיראט אדיפט-קו-טרפתלט (PBAT) שהוטבעו באמצעות טיפול קריוגני (CRYO) או בליה סביבתית (W), ומכדורי PBAT שלא טופלו. החומרים הפלסטיים טופלו לאחר מכן על ידי כרסום מכני ליצירת חברי פרלמנט בגודל של 46-840 מיקרומטר, המחקים את השחיקה של שברי פלסטיק על ידי רוח ומכונות מכניות. לאחר מכן סוננו חברי הפרלמנט למספר שברים בגודל כדי לאפשר ניתוח נוסף. לבסוף, חלק המסננת של 106 מיקרומטר היה נתון לטחינה רטובה כדי ליצור NPs של 20-900 ננומטר, תהליך המחקה את תהליך הפחתת הגודל האיטי עבור חברי פרלמנט יבשתיים. הממדים והצורה של MPs נקבעו באמצעות ניתוח תמונה של סטריאומיקרוגרפים, ופיזור אור דינמי (DLS) שימש להערכת גודל החלקיקים עבור NPs. חברי פרלמנט ו- NPs שנוצרו בתהליך זה היו בעלי צורות לא סדירות, אשר עולה בקנה אחד עם התכונות הגיאומטריות של חברי פרלמנט שהתאוששו משדות חקלאיים. בסך הכל, שיטת הקטנת גודל זו הוכחה כיעילה ליצירת חברי פרלמנט ו-NPs המורכבים מפלסטיק מתכלה כגון פוליבוטילן אדיפט-קו-טרפתלט (PBAT), המייצג חומרי חיפוי המשמשים לייצור גידולים חקלאיים מיוחדים.

Introduction

בעשורים האחרונים, הייצור העולמי הגובר במהירות של פלסטיק וסילוק לא תקין והיעדר מיחזור של פסולת פלסטיק הובילו לזיהום סביבתי שהשפיע על מערכות אקולוגיות ימיות ויבשתיות 1,2,3. חומרים פלסטיים חיוניים לחקלאות בת זמננו, במיוחד לגידול ירקות, פירות קטנים וגידולים מיוחדים אחרים. השימוש בהם כסרטי חיפוי, כיסויי מנהרות גבוהים ונמוכים, סרט טפטוף ויישומים אחרים נועד לשפר את היבול ואת איכותו, להפחית את עלויות הייצור ולקדם שיטות חקלאות בנות קיימא 4,5. עם זאת, התעסוקה המתרחבת של “פלסטיקולטורה” העלתה חששות לגבי היווצרות, הפצה ושימור של חתיכות פלסטיק בסביבות חקלאיות. לאחר תהליך פיצול מתמשך הנגרם על ידי התפכחות סביבתית במהלך חיי השירות, שברי פלסטיק גדולים יותר יוצרים מיקרו וננו-פלסטיק (MNPs), אשר נשארים בקרקע או נודדים לנתיבי מים סמוכים באמצעות נגר מים ורוח 6,7,8. גורמים סביבתיים כגון קרינה אולטרה סגולה (UV) דרך אור השמש, כוחות מכניים של מים וגורמים ביולוגיים מפעילים התפשטות פלסטיק של פלסטיק המפוזר בסביבה, וכתוצאה מכך פירוק של שברי פלסטיק גדולים יותר לחלקיקי פלסטיק מאקרו או מזו 9,10. איחוי נוסף יוצר מיקרופלסטיק (MPs) וננו-פלסטיק (NPs), המשקף חלקיקים בגודל ממוצע (קוטר נומינלי; דפ) של 1-5000 מיקרומטר ו 1-1000 ננומטר, בהתאמה11. עם זאת, מגבלת d p העליונה עבור NPs (כלומר, גבול תחתון עבור חברי פרלמנט) אינה מוסכמת באופן אוניברסלי ובמספר מאמרים, זה מופיע כ- 100 ננומטר12.

MNPs מפסולת פלסטיק מהווים איום גלובלי מתפתח על בריאות הקרקע ושירותי המערכת האקולוגית. ספיחה של מתכות כבדות ממים מתוקים על ידי חברי פרלמנט הובילה לריכוז גבוה פי 800 של מתכות כבדות בהשוואה לסביבה13. יתר על כן, חברי פרלמנט במערכות אקולוגיות ימיות מציבים גורמי עקה ומזהמים מרובים על ידי שינוי חדירת האור, גרימת דלדול חמצן וגרימת הידבקות לבוטה שונים, כולל חדירה והצטברות באורגניזמים ימיים14.

מחקרים אחרונים מצביעים על כך ש-MNPs יכולים להשפיע על הגיאוכימיה של הקרקע ועל הביוטה, כולל קהילות מיקרוביאליות וצמחים15,16,17. יתר על כן, NPs מאיימים על מארג המזון17,18,19,20. מאחר ש-MNPs עוברים בקלות הובלה אנכית ואופקית בקרקע, הם יכולים לשאת מזהמים נספגים כגון חומרי הדברה, פלסטייזרים ומיקרואורגניזמים דרך האדמה אל מי תהום או מערכות אקולוגיות ימיות כגון נהרות ונחלים21,22,23,24. פלסטיק חקלאי קונבנציונלי כגון יריעות חיפוי עשוי מפוליאתילן, אשר יש להסיר מהשדה לאחר השימוש ולהשליך במזבלות. עם זאת, הסרה לא שלמה מובילה להצטברות משמעותית של פסולת פלסטיק בקרקעות 9,25,26. לחלופין, בולי פלסטיק מתכלים בקרקע (BDMs) מיועדים להיות מעובדים בקרקע לאחר השימוש, שם הם יתפרקו עם הזמן. עם זאת, BDMs נמשכים באופן זמני באדמה ובהדרגה מתפרקים ומתפרקים לחברי פרלמנטו-NPs 9,27.

מחקרים אקוטוקסיקולוגיים סביבתיים וגורליים רבים משתמשים בחומרי מודל אידיאליים ולא מייצגים של חברי פרלמנט ו-NPs. ה- MNPs הפונדקאיים הנפוצים ביותר הם מיקרו או ננו-כדורים פוליסטירן חד-ממדיים, שאינם משקפים את ה- MNPs בפועל המתגוררים בסביבה12,28. כתוצאה מכך, הבחירה של חברי פרלמנט ו-NPs לא מייצגים עלולה לגרום למדידות ותוצאות לא מדויקות. בהתבסס על היעדר מודלים מתאימים של ΜNPs למחקרים סביבתיים יבשתיים, המחברים היו מוטיבציה להכין מודלים כאלה מפלסטיק חקלאי. בעבר דיווחנו על היווצרות של MNPs מ BDMs וכדורי פוליאתילן באמצעות כרסום מכני והשחזה של כדורי פלסטיק וחומרי סרט ואת המאפיינים הממדיים והמולקולריים של MNPs29. המאמר הנוכחי מספק פרוטוקול מפורט יותר להכנת MNPs שניתן ליישם באופן רחב יותר על כל סוגי הפלסטיק החקלאיים, כגון יריעות חיפוי או חומרי ההזנה הכדוריים שלהם (איור 1). כאן, כדי לשמש דוגמה, בחרנו בסרט חיפוי ובכדורים כדוריים של הפולימר המתכלה פוליבוטילן אדיפט טרפתלט (PBAT) כדי לייצג את הפלסטיק החקלאי.

Protocol

1. עיבוד חברי פרלמנט מכדורי פלסטיק באמצעות טיפול מקדים קריוגני וכרסום הערה: מתודולוגיה זו מבוססת על הליך שתואר במקום אחר, תוך שימוש בסרט PBAT המורכב מאותו חומר ששימש למחקר זה29. שוקלים דגימות כדורי פולימר של ~ 1 גרם ומעבירים לצנצנת זכוכית של 50 מ”ל. <l…

Representative Results

כדי לאמת את שיטת הפרוצדורה הניסויית ואת הניתוח, חברי פרלמנט ו- NPs נוצרו מכדורים וחומרי פילם והושוו לפי גודל וצורה באמצעות תמונות מיקרוסקופיות. השיטה המתוארת באיור 1 יצרה ביעילות חברי פרלמנט ו-NPs מכדורי פלסטיק מתכלים ומסרטים; זה הושג באמצעות קירור קריוגני, כרסום, טחינה רטובה …

Discussion

שיטה זו מתארת תהליך יעיל שתואר לראשונה בפרסום קודם29, להכנת MNPs שמקורם בכופתיות ויריעות חיפוי למחקרים סביבתיים. תהליך הקטנת הגודל כלל קירור קריוגני (לסרט בלבד), כרסום יבש ושלבי השחזה רטובים, לייצור MNPs מודל. יישמנו שיטה זו כדי להכין MNPs ממגוון רחב של חומרי הזנה פולימריים, כולל פולי…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מחקר זה מומן על ידי מכללת הרברט לחקלאות, המחלקה להנדסת ביו-מערכות וקרקע, והברית המדעית באוניברסיטת טנסי, נוקסוויל. יתר על כן, המחברים מודים על התמיכה הכספית הניתנת באמצעות מענק USDA 2020-67019-31167 עבור מחקר זה. חומרי ההזנה הראשוניים להכנת MNPs של סרט חיפוי מתכלה מבוסס PBAT סופקו בחביבות על ידי BioBag Americas, Inc. (Dunevin, FL, ארה”ב), וכדורי PBAT על ידי Mobius, LLC (לנואר סיטי, טנסי).

Materials

Aluminum dish, 150 mL  Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 08-732-103 Drying of collected NPs
Aluminum dish, 500 mL VWR International, Radnor, PA, USA 25433-018 Collecting NPs after wet-grinding
Centrifuge Fisher Scientific, Waltham, MA, USA Centrific 228 Container for centrifugation
Delivery tube, #20, 840 µm Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383M30 Sieving of the first fraction during milling
Delivery tube, #60, 250 µm Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383M45 Sieving of the second fraction (3x)  during milling
Thermomixer,  5350 Mixer Eppendorf North America, Enfield, CT, USA 05-400-200 Analysis of sieving experiments
FT-IR Spectrum Two, spectrometer with attenuated total reflectance (ATR) Perkin Elmer, Waltham, MA, USA L1050228  Measuring FTIR spectra
Glass beaker, 1000 mL DWK Life Sciences, Milville, NJ, USA 02-555-113 Stirring of MPs-water slurry before grinding
Glass front plate Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA 3383N55  Front cover plaste for Wiley Mini Mill
Glass jar, 50 mL Uline, Pleasant Prairie, WI, USA S-15846P Collective MPs after milling
Glove Box, neoprene Bel-Art-SP Scienceware, Wayne, NJ, USA BEL-H500290000 22-Inch, Size 10
Zetasizer Nano ZS 90 size analyzer Malvern Panalytical, Worcestershire, UK  Zetasizer Nano ZS Measuring nanoplastics dispersed in DI-water
Microscope camera Nikon, Tokyo, 108-6290, Japan Nikon Digital Sight 10 Combined with Olympus microscope to receive digital images
Microscope Olympus, Shinjuku, Tokyo, Japan Model SZ 61 Imaging of MPs
Nitrogen jar, low form dewar flasks Cole-Palmer, Vernon Hills, IL, USA UX-03771-23 Storage of liquid nitrogen during cryogenic cooling
Accurate Blend 200, 12-speed blender Oster, Boca Raton, FL, USA 6684 Initiating the size reduction of cryogenically treated plastic film
PBAT film, – BioAgri™ (Mater-Bi®) BioBag Americas, Inc, Dunedin, FL, USA 0.7 mm thick Feedstock to form MPs and NPs, agricultural mulch film
PBAT pellets Mobius, LLC, Lenoir City, TN, USA Diameter 3 mm Feedstock to form microplastics (MPs) and nanoplastics (NPs) trough milling and grinding
Plastic centrifuge tubes, 50 mL Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 06-443-18 Centrifugation of slurry after wet-grinding
Plastic jar, 1000 mL, pre-cleaned, straight sided Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 05-719-733 Collection of NPs during and after wet grinding
Polygon stir bars, diameterø=8 mm, length=50.8 mm   Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 14-512-127 Stirring of MPs slurry prior to wet-grinding
Scissors, titanium bonded Westcott, Shelton, CT, USA 13901 Cutting of initial PBAT film feedstocks
Square glass cell with square aperture and cap, 12 mm O.D. Malvern Panalytical, Worcestershire, UK  PCS1115 Measuring of NPs particle size
Stainless steel bottom, 3 inch, pan Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 8401 For sieving after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 140 (106 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1308 For sieving after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 20 (850 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1296 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 325 (45 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1313 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel sieve, 3 inch, No. 60 (250 µm) Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 1303 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel top cover, 3 inch Hogentogler & Co. Inc, Columbia, MD, USA 8406 Sieving of MPs after Wiley-milling
Stainless steel tweezers Global Industrial, Port Washington, NY, USA T9FB2264892 Transferring of  frozen film particles from jar into blender
Vacuum oven, model 281A Fisher Scientific, Waltham, MA, USA 13-262-50 Vacuum oven to dry NPs after wet-grinding
Friction grinding machine, Supermass Colloider Masuko Sangyo, Tokyo, Japan MKCA6-2J Grinding machine to form NPs from MPs
Wet-grinding stone, grit size: 297 μm -420 μm Masuko Sangyo, Tokyo, Japan MKE6-46DD Grinding stone to form NPs from MPs
Wiley Mini Mill, rotary cutting mill Thomas Scientific, Swedesboro, NJ, USA NC1346618 Size reduction of pellets and film into MPs and NPs
Software
FTIR-Spectroscopy software Perkin Elmer, Waltham, MA, USA Spectrum 10  Collection of spectra from the initial plastic, MPs and NPs
Image J, image processing program National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA Version 1.53n Analysis of digital images received from microscopy 
Microscope software, ds-fi1 software Malvern Panalytical , Malvern, UK Firmware DS-U1 Ver3.10 Recording of digital images
Microsoft, Windows,  Excel 365, spreadsheet software Microsoft, Redmond, WA, USA Office 365 Calculating the average particle size and creating FTIR spectra images
JMP software, statistical software SAS Institute Inc., Cary, NC, 1989-2021 Version 15 Statistical analysis of particle size and perform best fit of data set
Unscrambler software Camo Analytics, Oslo, Norway Version 9.2 Normalizing and converting FTIR spectra into .csv fromat

Referencias

  1. Jin, Z., Dan, L. Review on the occurrence, analysis methods, toxicity and health effects of micro-and nano-plastics in the environment. Environmental Chemistry. (1), 28-40 (2021).
  2. Kumar, M., et al. Current research trends on micro-and nano-plastics as an emerging threat to global environment: a review. Journal of Hazardous Materials. 409, 124967 (2021).
  3. Alimba, C. G., Faggio, C., Sivanesan, S., Ogunkanmi, A. L., Krishnamurthi, K. Micro (nano)-plastics in the environment and risk of carcinogenesis: Insight into possible mechanisms. Journal of Hazardous Materials. 416, 126143 (2021).
  4. Serrano-Ruiz, H., Martin-Closas, L., Pelacho, A. M. Biodegradable plastic mulches: Impact on the agricultural biotic environment. Science of The Total Environment. 750, 141228 (2021).
  5. Hayes, D. G., et al. Biodegradable plastic mulch films for sustainable specialty crop production. Polymers for Agri-Food Applications. , 183-213 (2019).
  6. Viaroli, S., Lancia, M., Re, V. Microplastics contamination of groundwater: Current evidence and future perspectives. A review. Science of The Total Environment. , 153851 (2022).
  7. Rillig, M. C., Lehmann, A. Microplastic in terrestrial ecosystems. Science. 368 (6498), 1430-1431 (2020).
  8. Anunciado, M. B., et al. Effect of environmental weathering on biodegradation of biodegradable plastic mulch films under ambient soil and composting conditions. Journal of Polymers and the Environment. 29 (9), 2916-2931 (2021).
  9. Yang, Y., et al. Kinetics of microplastic generation from different types of mulch films in agricultural soil. Science of The Total Environment. 814, 152572 (2022).
  10. Hayes, D. G., et al. Effect of diverse weathering conditions on the physicochemical properties of biodegradable plastic mulches. Polymer Testing. 62, 454-467 (2017).
  11. Schwaferts, C., Niessner, R., Elsner, M., Ivleva, N. P. Methods for the analysis of submicrometer-and nanoplastic particles in the environment. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 112, 52-65 (2019).
  12. Gigault, J., et al. Current opinion: what is a nanoplastic. Environmental Pollution. 235, 1030-1034 (2018).
  13. Naqash, N., Prakash, S., Kapoor, D., Singh, R. Interaction of freshwater microplastics with biota and heavy metals: a review. Environmental Chemistry Letters. 18 (6), 1813-1824 (2020).
  14. Manzoor, S., Naqash, N., Rashid, G., Singh, R. Plastic material degradation and formation of microplastic in the environment: A review. Materials Today: Proceedings. , 3254-3260 (2022).
  15. de Souza Machado, A. A., et al. Impacts of microplastics on the soil biophysical environment. Environmental Science & Technology. 52 (17), 9656-9665 (2018).
  16. Jacques, O., Prosser, R. A probabilistic risk assessment of microplastics in soil ecosystems. Science of The Total Environment. 757, 143987 (2021).
  17. Kwak, J. I., An, Y. -. J. Microplastic digestion generates fragmented nanoplastics in soils and damages earthworm spermatogenesis and coelomocyte viability. Journal of Hazardous Materials. 402, 124034 (2021).
  18. Wahl, A., et al. Nanoplastic occurrence in a soil amended with plastic debris. Chemosphere. 262, 127784 (2021).
  19. Vighi, M., et al. Micro and nano-plastics in the environment: research priorities for the near future. Reviews of Environmental Contamination and Toxicology Volume 257. , 163-218 (2021).
  20. Pironti, C., et al. Microplastics in the environment: intake through the food web, human exposure and toxicological effects. Toxics. 9 (9), 224 (2021).
  21. Zurier, H. S., Goddard, J. M. Biodegradation of microplastics in food and agriculture. Current Opinion in Food Science. 37, 37-44 (2021).
  22. Horton, A. A., Dixon, S. J. Microplastics: An introduction to environmental transport processes. Wiley Interdisciplinary Reviews: Water. 5 (2), 1268 (2018).
  23. Panno, S. V., et al. Microplastic contamination in karst groundwater systems. Groundwater. 57 (2), 189-196 (2019).
  24. Su, Y., et al. Delivery, uptake, fate, an transport of engineered nanoparticles in plants: a critical review and data analysis. Environmental Science: Nano. 6 (8), 2311-2331 (2019).
  25. Yu, Y., Griffin-LaHue, D. E., Miles, C. A., Hayes, D. G., Flury, M. Are micro-and nanoplastics from soil-biodegradable plastic mulches an environmental concern. Journal of Hazardous Materials Advances. 4, 100024 (2021).
  26. Hayes, D. G. Enhanced end-of-life performance for biodegradable plastic mulch films through improving standards and addressing research gaps. Current Opinion in Chemical Engineering. 33, 100695 (2021).
  27. Qin, M., et al. A review of biodegradable plastics to biodegradable microplastics: Another ecological threat to soil environments. Journal of Cleaner Production. 312, 127816 (2021).
  28. Phuong, N. N., et al. Is there any consistency between the microplastics found in the field and those used in laboratory experiments. Environmental Pollution. 211, 111-123 (2016).
  29. Astner, A., et al. Mechanical formation of micro-and nano-plastic materials for environmental studies in agricultural ecosystems. Science of The Total Environment. 685, 1097-1106 (2019).
  30. Rist, S., Hartmann, N. B. Aquatic ecotoxicity of microplastics and nanoplastics: lessons learned from engineered nanomaterials. Freshwater Microplastics. , 25-49 (2018).
  31. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  32. Raju, S., et al. Improved methodology to determine the fate and transport of microplastics in a secondary wastewater treatment plant. Water Research. 173, 115549 (2020).
  33. Caputo, F., et al. Measuring particle size distribution and mass concentration of nanoplastics and microplastics: addressing some analytical challenges in the sub-micron size range. Journal of Colloid and Interface Science. 588, 401-417 (2021).
  34. Xu, M., et al. Polystyrene microplastics alleviate the effects of sulfamethazine on soil microbial communities at different CO2 concentrations. Journal of Hazardous Materials. 413, 125286 (2021).
  35. Ding, L., et al. Insight into interactions of polystyrene microplastics with different types and compositions of dissolved organic matter. Science of The Total Environment. 824, 153883 (2022).
  36. Abbasimaedeh, P., Ghanbari, A., O’Kelly, B. C., Tavanafar, M., Irdmoosa, K. G. Geomechanical behaviour of uncemented expanded polystyrene (EPS) beads-clayey soil mixtures as lightweight fill. Geotechnics. 1 (1), 38-58 (2021).
  37. Li, Z., Li, Q., Li, R., Zhou, J., Wang, G. The distribution and impact of polystyrene nanoplastics on cucumber plants. Environmental Science and Pollution Research. 28 (13), 16042-16053 (2021).
  38. Sobhani, Z., Panneerselvan, L., Fang, C., Naidu, R., Megharaj, M. Chronic and transgenerational effects of polystyrene microplastics at environmentally relevant concentrations in earthworms (Eisenia fetida). Environmental Toxicology and Chemistry. 40 (8), 2240-2246 (2021).
  39. Lionetto, F., Esposito Corcione, C., Rizzo, A., Maffezzoli, A. Production and characterization of polyethylene terephthalate nanoparticles. Polymers. 13 (21), 3745 (2021).
  40. Dümichen, E., et al. Analysis of polyethylene microplastics in environmental samples, using a thermal decomposition method. Water Research. 85, 451-457 (2015).
  41. Robotti, M., et al. Attrition and cryogenic milling production for low pressure cold gas spray and composite coatings characterization. Advanced Powder Technology. 27 (4), 1257-1264 (2016).
  42. Ducoli, S., et al. A different protein corona cloaks "true-to-life" nanoplastics with respect to synthetic polystyrene nanobeads. Environmental Science: Nano. 9 (4), 1414-1426 (2022).
  43. El Hadri, H., Gigault, J., Maxit, B., Grassl, B., Reynaud, S. Nanoplastic from mechanically degraded primary and secondary microplastics for environmental assessments. NanoImpact. 17, 100206 (2020).
  44. Eitzen, L., et al. The challenge in preparing particle suspensions for aquatic microplastic research. Environmental research. 168, 490-495 (2019).
  45. Ekvall, M. T., et al. Nanoplastics formed during the mechanical breakdown of daily-use polystyrene products. Nanoscale advances. 1 (3), 1055-1061 (2019).
  46. Caldwell, J., et al. Fluorescent plastic nanoparticles to track their interaction and fate in physiological environments. Environmental Science: Nano. 8 (2), 502-513 (2021).
  47. Zeb, A., et al. Evaluating the knowledge structure of micro-and nanoplastics in terrestrial environment through scientometric assessment. Applied Soil Ecology. 177, 104507 (2022).
  48. Ji, Z., et al. Effects of pristine microplastics and nanoplastics on soil invertebrates: A systematic review and meta-analysis of available data. Science of The Total Environment. 788, 147784 (2021).
  49. de Alkimin, G. D., Gonçalves, J. M., Nathan, J., Bebianno, M. J. Impact of micro and nanoplastics in the marine environment. Assessing the Effects of Emerging Plastics on the Environment and Public Health. , 172-225 (2022).
  50. Pires, A., Cuccaro, A., Sole, M., Freitas, R. Micro (nano) plastics and plastic additives effects in marine annelids: A literature review. Environmental Research. , 113642 (2022).
  51. Hurley, R. R., Nizzetto, L. Fate and occurrence of micro (nano) plastics in soils: Knowledge gaps and possible risks. Current Opinion in Environmental Science & Health. 1, 6-11 (2018).
check_url/es/64112?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Astner, A. F., Hayes, D. G., O’Neill, H. M., Evans, B. R., Pingali, S. V., Urban, V. S., Young, T. M. Forming Micro-and Nano-Plastics from Agricultural Plastic Films for Employment in Fundamental Research Studies. J. Vis. Exp. (185), e64112, doi:10.3791/64112 (2022).

View Video