Summary

Koherent Anti-Stokes Raman-spektroskopi (CARS) Ansökan om avbildningsmyelinering i hjärnskivor

Published: July 22, 2022
doi:

Summary

Att visualisera myelinisering är ett viktigt mål för många forskare som studerar nervsystemet. CARS är en teknik som är kompatibel med immunofluorescens som naturligt kan avbilda lipider i vävnad som hjärnan som belyser specialiserade strukturer som myelin.

Abstract

Koherent anti-Stokes Raman-spektroskopi (CARS) är en teknik som klassiskt används av kemister och fysiker för att producera en sammanhängande signal om signaturvibrationer av molekyler. Dessa vibrationssignaturer är emellertid också karakteristiska för molekyler i anatomisk vävnad som hjärnan, vilket gör den alltmer användbar och tillämplig för neurovetenskapliga applikationer. Till exempel kan CARS mäta lipider genom specifikt spännande kemiska bindningar inom dessa molekyler, vilket möjliggör kvantifiering av olika aspekter av vävnad, såsom myelin som är involverat i neurotransmission. Dessutom, jämfört med andra tekniker som vanligtvis används för att kvantifiera myelin, kan CARS också ställas in för att vara kompatibelt med immunofluorescerande tekniker, vilket möjliggör sammärkning med andra markörer såsom natriumkanaler eller andra komponenter för synaptisk överföring. Myeliniseringsförändringar är en i sig viktig mekanism vid demyeliniserande sjukdomar som multipel skleros eller andra neurologiska tillstånd som bräckligt X-syndrom eller autismspektrumstörningar är ett framväxande forskningsområde. Sammanfattningsvis kan CARS användas på innovativa sätt för att svara på pressande frågor inom neurovetenskap och ge bevis för underliggande mekanismer relaterade till många olika neurologiska tillstånd.

Introduction

Åtgärdspotentialer är den grundläggande enheten för information i hjärnan, och handlingspotentialutbredning genom axoner utgör en pelare i informationsbehandling 1,2,3. Neuroner tar vanligtvis emot afferenta ingångar från flera andra neuroner och integrerar dessa ingångar inom ett givet smalt tidsfönster 4,5. Därför har verkningsmekanismerna potentiell förökning i axoner fått en betydande uppmärksamhet från utredare.

Vid förökning genom en axon regenereras en åtgärdspotential upprepade gånger längs axonen för att säkerställa tillförlitlig förökning6. I de flesta neuroner av käkade ryggradsdjur (gnathostomer) är axoner omgivna av en mantel av myelin, som är en lipidrik substans som produceras av närliggande oligodendrocyter eller Schwann-celler, som är typer av gliaceller (granskad i 7,8). Denna myelinmantel isolerar axonen elektriskt, minskar dess kapacitans och möjliggör utbredning av åtgärdspotential effektivt, snabbt och med lägre energiförbrukning. Myelin täcker inte axonen enhetligt, men den mantlar axonen i segment som har korta luckor mellan dem, kallade Ranviers noder (granskad i 9,10). Både myelineringstjocklek, som styr nivån på elektrisk isolering av en axon, och avståndet mellan Ranviers noder, som styr frekvensen med vilken åtgärdspotentialer regenereras längs en axon, påverkar hastigheten på åtgärdspotentialutbredningen (granskad i11).

Det finns en stor mängd litteratur som tyder på att myeliniseringstjockleken påverkar hastigheten på åtgärdspotentialutbredningen i axoner12,13,14. Dessutom kan förändringar i axonmyelinisering resultera i ett antal CNS-underskott 15,16,17,18,19,20,21. Det är därför inte förvånande att fokus för många forskningsinsatser involverar mätning och karakterisering av axonmyelinisering. Mätningar av myelintjocklek har oftast gjorts med elektronmikroskopi, en teknik som kräver en betydande mängd vävnadsberedning och är utmanande att använda i kombination med immunhistokemi. Det finns dock också en snabbare och enklare teknik för att mäta axonmyelinisering som bygger på Coherent Anti-Stokes Raman Spectroscopy (CARS). En CARS-laser kan ställas in på olika frekvenser och när den är inställd på frekvenser som är lämpliga för att excitera lipider kan myelin avbildas utan behov av ytterligare etiketter22. Lipidavbildningen kan kombineras med standardimmunhistokemi så att lipider kan avbildas tillsammans med flera fluorescerande kanaler23. Avbildningsmyelinering med CARS är betydligt snabbare än elektronmikroskopi och har en upplösning som, om än lägre än EM, är tillräcklig för att upptäcka även små skillnader i myelinering i samma typ av axoner.

Protocol

Alla experiment följde alla tillämpliga lagar, National Institutes of Health riktlinjer och godkändes av University of Colorado Anschutz Institutional Animal Care and Use Committee. 1. Djur Använd C57BL/6J (stock #000664) möss (Mus musculus ) erhållna från Jackson Laboratory eller mongoliska gerbiler (Meriones unguiculatus) som ursprungligen erhållits från Charles River. 2. Vävnadsberedning<…

Representative Results

En av de största fördelarna med CARS-mikroskopi jämfört med andra tekniker är kompatibiliteten med fluorescerande avbildning23. Figur 1 visar CARS-spektra jämfört med Nissl taggade med immunofluorescerande markör som visar liten / ingen överlappning i spektra. Figur 2 illustrerar laseruppsättningen för CARS i kombination med konfokalmikroskopi. Figur 3 visar två representativa bilder, en som en en…

Discussion

En växande mängd litteratur betonar myelins roll i hjärnans funktion 13,16,21,28. Dessutom vet vi att myelineringstjocklek och myeliniseringsmönster kan förändras vid flera neurologiska tillstånd som multipel skleros (granskad i29), åldrande (granskad i 30), autism20,31 och många andra.

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Stöds av NIH R01 DC 17924, R01 DC 18401 (Klug) och NIH 1R15HD105231-01, T32DC012280 och FRAXA (McCullagh). CARS-avbildningen utfördes i Advanced Light Microscopy Core-delen av NeuroTechnology Center vid University of Colorado Anschutz Medical Campus som delvis stöds av NIH P30 NS048154 och NIH P30 DK116073.

Materials

Anesthetic:
1 mL disposable syringe with needle 27 GA x 0.5" Exel int 260040
Fatal + Vortech
Surgery:
Spring Scissors – 8mm Cutting Edge Fine Science Tools 15024-10
Standard tweezers Fine Science Tools 11027-12
Perfusion:
4% Paraformaldehyde Fisher Chemical SF994 (CS)
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14063-11
Kelly hemostats Fine Science Tools 13019-14
Millipore H2O
Needle tip, 23 GA x 1" BD precision glide 305193
Phosphate buffered saline (PBS):
Potassium chloride Sigma P9333
Potassium phosphate monobase Sigma P5655
pump with variable flow or equivalent
Sodium chloride Fisher Chemical s271-1
Sodiumphosphate dibasic Sigma S7907
Dissection:
50 mL vial with 4% PFA
Bochem Chemical Spoon 180mm Bochem 230331000
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14063-11
Noyes Spring Scissors Fine Science Tools 15011-12
Pair of fine (Graefe) tweezers Fine Science Tools 11050-10
Shallow glass or plastic tray, approximately 10" x 10"
Standard tweezers Fine Science Tools 11027-12
Surgical Scissors – Blunt Fine Science Tools 14000-20
Slicing:
Agar, plant RPI 9002-18-0
Vibratome Leica VT1000s
well plate Alkali Sci. TPN1048-NT
Staining:
AB Media: 1n 1,000 mL of Millipore H2O
Phosphate buffered (PB):
Potassium Phosphate Monobase Sigma P5655
Sodium Phosohate Dibasic Sigma S7907
BSA (Bovine serum albumin) Sigma life science A2153-100g
Sodium Chloride Fisher Chemical s271-1
Triton X-100 Sigma – Aldrich x100-500ml
Nissl 435/455 Invitrogen N21479
CARS:
APE picoemerald laser Angewandte Physik & Elektronik GmbH
bandpass filter (420-520 nm) Chroma Technology HQ470/100m-2P
bandpass filter (500-530 nm) Chroma Technology HQ515/30m-2P
bandpass filters (640-680 nm) Chroma Technology HQ660/40m-2P
Confocal microscope Olympus FV1000
Cut Transfer pipet Fisher 13-711-7M
dichroic longpass 565 nm Chroma Technology 565dcxr
dichroic longpass 585 nm Chroma Technology 585dcxr
dichroic shortpass 750 nm Chroma Technology T750spxrxt
glass bottom culture dish MatTek P35G-0-10-C
glass weight (10 mm x 10 mm boro rod) Allen Scientific Glass Inc
multiphoton shortpass emission filter 680 nm Chroma Technology ET680sp-2p8
PBS

Referencias

  1. Cole, K., Curtis, H. Electric impedance of the squid giant axon during activity. The Journal of General Physiology. 22 (5), 649-670 (1939).
  2. Cole, K. S., Curtis, H. J. Membrane potential of the squid giant axon during current flow. Journal of General Physiology. 24 (4), 551-563 (1941).
  3. Alcami, P., El Hady, A. Axonal computations. Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 413 (2019).
  4. Neumann, E., Nachmansohn, D. Nerve excitability-Toward an integrating concept. Aharon Katzir Memorial Volume. , 99-166 (1975).
  5. Waxman, S. G. Integrative properties and design principles of axons. International Review of Neurobiology. 18, 1-40 (1975).
  6. Fitzhugh, R. Computation of impulse initiation and saltatory conduction in a myelinated nerve fiber. Biophysical Journal. 2 (1), 11-21 (1962).
  7. Zalc, B. The acquisition of myelin: a success story. Novartis Foundation Symposium. 276, 275-281 (2006).
  8. Salzer, J. L., Zalc, B. Myelination. Current Biology. 26 (20), 971-975 (2016).
  9. Boullerne, A. I. The history of myelin. Experimental Neurology. 283, 431-445 (2016).
  10. Kuhn, S., Gritti, L., Crooks, D., Dombrowski, Y. Oligodendrocytes in development, myelin generation and beyond. Cells. 8 (11), 1424 (2019).
  11. Saab, A. S., Nave, K. -. A. Myelin dynamics: protecting and shaping neuronal functions. Current Opinion in Neurobiology. 47, 104-112 (2017).
  12. Chomiak, T., Hu, B. What is the optimal value of the g-Ratio for myelinated fibers in the rat CNS? A theoretical approach. PLOS ONE. 4 (11), 7754 (2009).
  13. Ford, M. C., et al. Tuning of Ranvier node and internode properties in myelinated axons to adjust action potential timing. Nature Communications. 6, 8073 (2015).
  14. Stange-Marten, A., et al. Input timing for spatial processing is precisely tuned via constant synaptic delays and myelination patterns in the auditory brainstem. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (24), 4851-4858 (2017).
  15. Bu, J., Banki, A., Wu, Q., Nishiyama, A. Increased NG2+ glial cell proliferation and oligodendrocyte generation in the hypomyelinating mutant shiverer. Glia. 48 (1), 51-63 (2004).
  16. Pacey, L. K. K., et al. Delayed myelination in a mouse model of fragile X syndrome. Human Molecular Genetics. 22 (19), 3920-3930 (2013).
  17. Green, A. J., et al. Clemastine fumarate as a remyelinating therapy for multiple sclerosis (ReBUILD): a randomised, controlled, double-blind, crossover trial. Lancet. 390 (10111), 2481-2489 (2017).
  18. Jeon, S. J., Ryu, J. H., Bahn, G. H. Altered translational control of fragile X mental retardation protein on myelin proteins in neuropsychiatric disorders. Biomolecules & Therapeutics. 25 (3), 231-238 (2017).
  19. Barak, B., et al. Neuronal deletion of Gtf2i, associated with Williams syndrome, causes behavioral and myelin alterations rescuable by a remyelinating drug. Nature Neuroscience. 22 (5), 700-708 (2019).
  20. Phan, B. N., et al. A myelin-related transcriptomic profile is shared by Pitt-Hopkins syndrome models and human autism spectrum disorder. Nature Neuroscience. 23 (3), 375-385 (2020).
  21. Lucas, A., Poleg, S., Klug, A., McCullagh, E. A. Myelination deficits in the auditory brainstem of a mouse model of fragile X syndrome. Frontiers in Neuroscience. 15, 1536 (2021).
  22. Wang, H., Fu, Y., Zickmund, P., Shi, R., Cheng, J. -. X. Coherent anti-stokes raman scattering imaging of axonal myelin in live spinal ttissues. Biophysical Journal. 89 (1), 581-591 (2005).
  23. Kim, S. -. H., et al. Multiplex coherent anti-stokes raman spectroscopy images intact atheromatous lesions and concomitantly identifies distinct chemical profiles of atherosclerotic lipids. Circulation Research. 106 (8), 1332-1341 (2010).
  24. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments. (65), e3564 (2012).
  25. Tu, L., et al. Free-floating Immunostaining of Mouse Brains. Journal of Visualized Experiments. (176), e62876 (2021).
  26. . Fluorescence SpectraViewer Available from: https://www.thermofisher.com/order/fluorescence-spectraviewer (2022)
  27. Held, H. Die centrale gehörleitung. Arch Anat Physiol Anat Abt. 17, 201-248 (1893).
  28. Sherman, D. L., Brophy, P. J. Mechanisms of axon ensheathment and myelin growth. Nature Reviews Neuroscience. 6 (9), 683-690 (2005).
  29. Gruchot, J., et al. The molecular basis for remyelination failure in multiple sclerosis. Cells. 8 (8), 825 (2019).
  30. Rivera, A. D., et al. Epidermal growth factor pathway in the age-related decline of oligodendrocyte regeneration. Frontiers in Cellular Neuroscience. 16, 838007 (2022).
  31. Kútna, V., O’Leary, V. B., Hoschl, C., Ovsepian, S. V. Cerebellar demyelination and neurodegeneration associated with mTORC1 hyperactivity may contribute to the developmental onset of autism-like neurobehavioral phenotype in a rat model. Autism Research: Official Journal of the International Society for Autism Research. 15 (5), 791-805 (2022).
  32. Ozsvár, A., et al. Quantitative analysis of lipid debris accumulation caused by cuprizone induced myelin degradation in different CNS areas. Brain Research Bulletin. 137, 277-284 (2018).
  33. Prineas, J. W., Graham, J. S. Multiple sclerosis: capping of surface immunoglobulin G on macrophages engaged in myelin breakdown. Annals of Neurology. 10 (2), 149-158 (1981).
  34. Bégin, S., et al. Automated method for the segmentation and morphometry of nerve fibers in large-scale CARS images of spinal cord tissue. Biomedical Optics Express. 5 (12), 4145-4161 (2014).

Play Video

Citar este artículo
McCullagh, E. A., Poleg, S., Stich, D., Moldovan, R., Klug, A. Coherent Anti-Stokes Raman Spectroscopy (CARS) Application for Imaging Myelination in Brain Slices. J. Vis. Exp. (185), e64013, doi:10.3791/64013 (2022).

View Video