Summary

Coherent Anti-Stokes Raman spektroskopi (CARS) Søknad om bildebehandling av myelinasjon i hjerneskiver

Published: July 22, 2022
doi:

Summary

Visualisering av myelinisering er et viktig mål for mange forskere som studerer nervesystemet. CARS er en teknikk som er kompatibel med immunfluorescens som naturlig kan avbilde lipider i vev som hjernen som belyser spesialiserte strukturer som myelin.

Abstract

Koherent anti-Stokes Raman-spektroskopi (CARS) er en teknikk som klassisk brukes av kjemikere og fysikere for å produsere et sammenhengende signal om signaturvibrasjoner av molekyler. Imidlertid er disse vibrasjonssignaturene også karakteristiske for molekyler i anatomisk vev som hjernen, noe som gjør den stadig mer nyttig og anvendelig for nevrovitenskapsapplikasjoner. For eksempel kan CARS måle lipider ved spesielt spennende kjemiske bindinger i disse molekylene, noe som muliggjør kvantifisering av forskjellige aspekter av vev, for eksempel myelin involvert i nevrotransmisjon. I tillegg, sammenlignet med andre teknikker som vanligvis brukes til å kvantifisere myelin, kan CARS også settes opp for å være kompatible med immunfluorescerende teknikker, noe som muliggjør sammerking med andre markører som natriumkanaler eller andre komponenter i synaptisk overføring. Myeliniseringsendringer er en iboende viktig mekanisme i demyeliniserende sykdommer som multippel sklerose eller andre nevrologiske tilstander som Fragilt X-syndrom eller autismespekterforstyrrelser er et fremvoksende forskningsområde. Avslutningsvis kan CARS brukes på innovative måter for å svare på presserende spørsmål i nevrovitenskap og gi bevis for underliggende mekanismer relatert til mange forskjellige nevrologiske forhold.

Introduction

Handlingspotensialer er den grunnleggende informasjonsenheten i hjernen, og handlingspotensialutbredelse gjennom aksoner danner en søyle i informasjonsbehandling 1,2,3. Nevroner mottar vanligvis afferente innganger fra flere andre nevroner og integrerer disse inngangene innenfor et gitt smalt tidsvindu 4,5. Derfor har virkningsmekanismene potensiell forplantning i aksoner fått betydelig oppmerksomhet fra etterforskere.

Ved forplantning gjennom et akson regenereres et handlingspotensial gjentatte ganger langs aksonet for å sikre pålitelig forplantning6. I de fleste nevroner av kjeve vertebrater (gnathostomer) er axoner omgitt av en skjede av myelin, som er en lipidrik substans produsert av nærliggende oligodendrocytter eller Schwann-celler, som er typer glialceller (gjennomgått i 7,8). Denne myelinskjeden isolerer aksonet elektrisk, reduserer kapasitansen og tillater handlingspotensialutbredelse effektivt, raskt og med lavere energiforbruk. Myelin dekker ikke aksonet jevnt, men det kapper aksonet i segmenter som har korte hull mellom dem, kalt nodene til Ranvier (gjennomgått i 9,10). Både myeliniseringstykkelsen, som styrer nivået av elektrisk isolasjon av et akson, og avstanden mellom nodene til Ranvier, som styrer frekvensen som handlingspotensialer regenereres langs et akson, påvirker hastigheten på handlingspotensialutbredelsen (gjennomgått i11).

Det er en stor mengde litteratur som tyder på at myeliniseringstykkelsen påvirker hastigheten på virkningspotensialutbredelsen i aksoner12,13,14. Videre kan endringer i aksonmyelinisering resultere i en rekke CNS-underskudd 15,16,17,18,19,20,21. Det er derfor ikke overraskende at fokus for mange forskningsinnsatser innebærer måling og karakterisering av aksonmyelinisering. Målinger av myelintykkelse har oftest blitt gjort med elektronmikroskopi, en teknikk som krever en betydelig mengde vevspreparering og er utfordrende å bruke i kombinasjon med immunhistokjemi. Imidlertid er det også en raskere og enklere teknikk for å måle aksonmyelinisering som er basert på Coherent Anti-Stokes Raman Spectroscopy (CARS). En CARS-laser kan stilles inn på forskjellige frekvenser, og når den er innstilt på frekvenser som er egnet til å opphisse lipider, kan myelin avbildes uten behov for ytterligere etiketter22. Lipidavbildningen kan kombineres med standard immunhistokjemi slik at lipider kan avbildes sammen med flere fluorescerende kanaler23. Imaging myelinisering med CARS er betydelig raskere enn elektronmikroskopi og har en oppløsning som er, om enn lavere enn EM, tilstrekkelig til å oppdage selv små forskjeller i myelinisering i samme type axoner.

Protocol

Alle eksperimenter overholdt alle gjeldende lover, National Institutes of Health retningslinjer, og ble godkjent av University of Colorado Anschutz Institutional Animal Care and Use Committee. 1. Dyr Bruk C57BL/6J (lager #000664) mus (Mus musculus ) hentet fra The Jackson Laboratory eller mongolske gerbils (Meriones unguiculatus) opprinnelig hentet fra Charles. 2. Forberedelse av vev For t…

Representative Results

En av de største fordelene med CARS-mikroskopi i forhold til andre teknikker er kompatibiliteten med fluorescerende bildebehandling23. Figur 1 viser CARS-spektrene sammenlignet med Nissl merket med immunfluorescerende markør som viser liten/ingen overlapping i spektra. Figur 2 illustrerer laseroppsettet for CARS i kombinasjon med konfokalmikroskopi. Figur 3 viser to representative bilder, ett som en enkelt …

Discussion

En voksende litteratur understreker myelins rolle i hjernefunksjonen 13,16,21,28. Videre vet vi at myeliniseringstykkelse og myeliniseringsmønster kan endres i flere nevrologiske tilstander som multippel sklerose (gjennomgått i29), aldring (gjennomgått i 30), autisme20,31 og mange andre.</sup…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Støttes av NIH R01 DC 17924, R01 DC 18401 (Klug) og NIH 1R15HD105231-01, T32DC012280 og FRAXA (McCullagh). CARS-avbildningen ble utført i Advanced Light Microscopy Core-delen av NeuroTechnology Center ved University of Colorado Anschutz Medical Campus, delvis støttet av NIH P30 NS048154 og NIH P30 DK116073.

Materials

Anesthetic:
1 mL disposable syringe with needle 27 GA x 0.5" Exel int 260040
Fatal + Vortech
Surgery:
Spring Scissors – 8mm Cutting Edge Fine Science Tools 15024-10
Standard tweezers Fine Science Tools 11027-12
Perfusion:
4% Paraformaldehyde Fisher Chemical SF994 (CS)
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14063-11
Kelly hemostats Fine Science Tools 13019-14
Millipore H2O
Needle tip, 23 GA x 1" BD precision glide 305193
Phosphate buffered saline (PBS):
Potassium chloride Sigma P9333
Potassium phosphate monobase Sigma P5655
pump with variable flow or equivalent
Sodium chloride Fisher Chemical s271-1
Sodiumphosphate dibasic Sigma S7907
Dissection:
50 mL vial with 4% PFA
Bochem Chemical Spoon 180mm Bochem 230331000
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14063-11
Noyes Spring Scissors Fine Science Tools 15011-12
Pair of fine (Graefe) tweezers Fine Science Tools 11050-10
Shallow glass or plastic tray, approximately 10" x 10"
Standard tweezers Fine Science Tools 11027-12
Surgical Scissors – Blunt Fine Science Tools 14000-20
Slicing:
Agar, plant RPI 9002-18-0
Vibratome Leica VT1000s
well plate Alkali Sci. TPN1048-NT
Staining:
AB Media: 1n 1,000 mL of Millipore H2O
Phosphate buffered (PB):
Potassium Phosphate Monobase Sigma P5655
Sodium Phosohate Dibasic Sigma S7907
BSA (Bovine serum albumin) Sigma life science A2153-100g
Sodium Chloride Fisher Chemical s271-1
Triton X-100 Sigma – Aldrich x100-500ml
Nissl 435/455 Invitrogen N21479
CARS:
APE picoemerald laser Angewandte Physik & Elektronik GmbH
bandpass filter (420-520 nm) Chroma Technology HQ470/100m-2P
bandpass filter (500-530 nm) Chroma Technology HQ515/30m-2P
bandpass filters (640-680 nm) Chroma Technology HQ660/40m-2P
Confocal microscope Olympus FV1000
Cut Transfer pipet Fisher 13-711-7M
dichroic longpass 565 nm Chroma Technology 565dcxr
dichroic longpass 585 nm Chroma Technology 585dcxr
dichroic shortpass 750 nm Chroma Technology T750spxrxt
glass bottom culture dish MatTek P35G-0-10-C
glass weight (10 mm x 10 mm boro rod) Allen Scientific Glass Inc
multiphoton shortpass emission filter 680 nm Chroma Technology ET680sp-2p8
PBS

Referencias

  1. Cole, K., Curtis, H. Electric impedance of the squid giant axon during activity. The Journal of General Physiology. 22 (5), 649-670 (1939).
  2. Cole, K. S., Curtis, H. J. Membrane potential of the squid giant axon during current flow. Journal of General Physiology. 24 (4), 551-563 (1941).
  3. Alcami, P., El Hady, A. Axonal computations. Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 413 (2019).
  4. Neumann, E., Nachmansohn, D. Nerve excitability-Toward an integrating concept. Aharon Katzir Memorial Volume. , 99-166 (1975).
  5. Waxman, S. G. Integrative properties and design principles of axons. International Review of Neurobiology. 18, 1-40 (1975).
  6. Fitzhugh, R. Computation of impulse initiation and saltatory conduction in a myelinated nerve fiber. Biophysical Journal. 2 (1), 11-21 (1962).
  7. Zalc, B. The acquisition of myelin: a success story. Novartis Foundation Symposium. 276, 275-281 (2006).
  8. Salzer, J. L., Zalc, B. Myelination. Current Biology. 26 (20), 971-975 (2016).
  9. Boullerne, A. I. The history of myelin. Experimental Neurology. 283, 431-445 (2016).
  10. Kuhn, S., Gritti, L., Crooks, D., Dombrowski, Y. Oligodendrocytes in development, myelin generation and beyond. Cells. 8 (11), 1424 (2019).
  11. Saab, A. S., Nave, K. -. A. Myelin dynamics: protecting and shaping neuronal functions. Current Opinion in Neurobiology. 47, 104-112 (2017).
  12. Chomiak, T., Hu, B. What is the optimal value of the g-Ratio for myelinated fibers in the rat CNS? A theoretical approach. PLOS ONE. 4 (11), 7754 (2009).
  13. Ford, M. C., et al. Tuning of Ranvier node and internode properties in myelinated axons to adjust action potential timing. Nature Communications. 6, 8073 (2015).
  14. Stange-Marten, A., et al. Input timing for spatial processing is precisely tuned via constant synaptic delays and myelination patterns in the auditory brainstem. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (24), 4851-4858 (2017).
  15. Bu, J., Banki, A., Wu, Q., Nishiyama, A. Increased NG2+ glial cell proliferation and oligodendrocyte generation in the hypomyelinating mutant shiverer. Glia. 48 (1), 51-63 (2004).
  16. Pacey, L. K. K., et al. Delayed myelination in a mouse model of fragile X syndrome. Human Molecular Genetics. 22 (19), 3920-3930 (2013).
  17. Green, A. J., et al. Clemastine fumarate as a remyelinating therapy for multiple sclerosis (ReBUILD): a randomised, controlled, double-blind, crossover trial. Lancet. 390 (10111), 2481-2489 (2017).
  18. Jeon, S. J., Ryu, J. H., Bahn, G. H. Altered translational control of fragile X mental retardation protein on myelin proteins in neuropsychiatric disorders. Biomolecules & Therapeutics. 25 (3), 231-238 (2017).
  19. Barak, B., et al. Neuronal deletion of Gtf2i, associated with Williams syndrome, causes behavioral and myelin alterations rescuable by a remyelinating drug. Nature Neuroscience. 22 (5), 700-708 (2019).
  20. Phan, B. N., et al. A myelin-related transcriptomic profile is shared by Pitt-Hopkins syndrome models and human autism spectrum disorder. Nature Neuroscience. 23 (3), 375-385 (2020).
  21. Lucas, A., Poleg, S., Klug, A., McCullagh, E. A. Myelination deficits in the auditory brainstem of a mouse model of fragile X syndrome. Frontiers in Neuroscience. 15, 1536 (2021).
  22. Wang, H., Fu, Y., Zickmund, P., Shi, R., Cheng, J. -. X. Coherent anti-stokes raman scattering imaging of axonal myelin in live spinal ttissues. Biophysical Journal. 89 (1), 581-591 (2005).
  23. Kim, S. -. H., et al. Multiplex coherent anti-stokes raman spectroscopy images intact atheromatous lesions and concomitantly identifies distinct chemical profiles of atherosclerotic lipids. Circulation Research. 106 (8), 1332-1341 (2010).
  24. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments. (65), e3564 (2012).
  25. Tu, L., et al. Free-floating Immunostaining of Mouse Brains. Journal of Visualized Experiments. (176), e62876 (2021).
  26. . Fluorescence SpectraViewer Available from: https://www.thermofisher.com/order/fluorescence-spectraviewer (2022)
  27. Held, H. Die centrale gehörleitung. Arch Anat Physiol Anat Abt. 17, 201-248 (1893).
  28. Sherman, D. L., Brophy, P. J. Mechanisms of axon ensheathment and myelin growth. Nature Reviews Neuroscience. 6 (9), 683-690 (2005).
  29. Gruchot, J., et al. The molecular basis for remyelination failure in multiple sclerosis. Cells. 8 (8), 825 (2019).
  30. Rivera, A. D., et al. Epidermal growth factor pathway in the age-related decline of oligodendrocyte regeneration. Frontiers in Cellular Neuroscience. 16, 838007 (2022).
  31. Kútna, V., O’Leary, V. B., Hoschl, C., Ovsepian, S. V. Cerebellar demyelination and neurodegeneration associated with mTORC1 hyperactivity may contribute to the developmental onset of autism-like neurobehavioral phenotype in a rat model. Autism Research: Official Journal of the International Society for Autism Research. 15 (5), 791-805 (2022).
  32. Ozsvár, A., et al. Quantitative analysis of lipid debris accumulation caused by cuprizone induced myelin degradation in different CNS areas. Brain Research Bulletin. 137, 277-284 (2018).
  33. Prineas, J. W., Graham, J. S. Multiple sclerosis: capping of surface immunoglobulin G on macrophages engaged in myelin breakdown. Annals of Neurology. 10 (2), 149-158 (1981).
  34. Bégin, S., et al. Automated method for the segmentation and morphometry of nerve fibers in large-scale CARS images of spinal cord tissue. Biomedical Optics Express. 5 (12), 4145-4161 (2014).

Play Video

Citar este artículo
McCullagh, E. A., Poleg, S., Stich, D., Moldovan, R., Klug, A. Coherent Anti-Stokes Raman Spectroscopy (CARS) Application for Imaging Myelination in Brain Slices. J. Vis. Exp. (185), e64013, doi:10.3791/64013 (2022).

View Video