Summary

Компьютерное числовое управление Микромелирование микрофлюидного акрилового устройства с поэтапным ограничением для иммуноанализа на основе магнитных наночастиц

Published: June 23, 2022
doi:

Summary

Микрофлюидика является мощным инструментом для разработки диагностических тестов. Тем не менее, часто требуется дорогостоящее оборудование и материалы, а также трудоемкие методы изготовления и обработки. Здесь мы подробно описываем протокол изготовления акрилового микрофлюидного устройства для магнитных иммуноанализов на основе микро- и наночастиц в недорогих и простых в использовании условиях.

Abstract

Микрофлюидные системы значительно улучшили методы иммунологического анализа. Тем не менее, многие методы микропроизводства требуют специализированного, дорогостоящего или сложного оборудования, что делает изготовление дорогостоящим и несовместимым с массовым производством, что является одним из наиболее важных предварительных условий для проведения тестов в местах оказания медицинской помощи (POCT) в условиях ограниченных ресурсов. В данной работе описан процесс изготовления акрилового (полиметилметакрилата, ПММА) устройства для тестирования ферментативного иммунологического анализа с наночастицами с использованием метода микромоделирования с числовым программным управлением (ЧПУ). Функционирование микрофлюидного устройства показано путем выполнения иммуноанализа для обнаружения коммерческого антитела с использованием лизоцима в качестве модельного антигена, конъюгированного с магнитными наночастицами 100 нм. Это устройство интегрирует физическое ступенчатое ограничение высотой всего 5 мкм, используемое для захвата магнитных микрочастиц, которые составляют магнитную ловушку, путем размещения внешнего магнита. Таким образом, магнитной силы на иммуноподдержку конъюгированных наночастиц достаточно, чтобы захватить их и противостоять лобовому сопротивлению потока. Это микрофлюидное устройство особенно подходит для недорогого массового производства без потери точности для эффективности иммуноанализа.

Introduction

В последние годы микрофлюидика играет важную роль в методах иммунологического анализа1. Технология миниатюризации имеет много выдающихся преимуществ по сравнению с традиционными иммуноанализами, таких как снижение расхода образцов и реагентов, более короткое время инкубации, эффективный обмен решениями, а также более высокая интеграция и автоматизация2.

Кроме того, микрофлюидные системы в иммуноанализах в сочетании с магнитными наночастицами в качестве иммуноподдержки значительно сокращают время инкубации, достигая высокой чувствительности обнаружения за счет увеличения отношения поверхности к объему3. Броуновское движение частиц улучшает кинетику реакции при образовании комплекса антиген-антитело 4,5. Кроме того, магнитные свойства наночастиц обеспечивают универсальность для интеграции в различные конфигурации микрофлюидных устройств, что делает их идеальным кандидатом для передачи сигналов и захвата молекул в миниатюрных системах биозондирования на кристалле5. Однако магнитные силы значительно слабее, чем силы сопротивления в нанометровом масштабе из-за высокого отношения поверхности к объему6. Поэтому захват наночастиц для важнейших этапов иммуноанализа, таких как промывка и обнаружение, может быть сложной задачей, а обычного магнита недостаточно4.

Эффективным способом манипулирования наночастицами является использование микрофлюидной магнитной ловушки, образованной микрочастицами железа, которые упакованы в микрофлюидную структуру3. Поэтому, когда внешний магнит приближается, в намагниченной пористой среде создается сложное взаимодействие между магнитной и потоковой силами. Магнитная сила, действующая на наночастицы, достаточно сильна, чтобы захватить их и противостоять лобовому сопротивлению потока 3,4,7. Этот подход требует методов микрофабрикации, которые достигают разрешения порядка нескольких микрометров для создания микрометрических структур, которые удерживают микрочастицы.

Современные методы микропроизводства позволяют изготавливать структуры с высоким разрешением от нескольких микрон до сотен нанометров8. Однако многие из этих методов требуют специализированного, дорогого или сложного оборудования. Одной из основных трудностей является потребность в чистом помещении для изготовления пресс-форм, которая остается дорогостоящей и трудоемкой 8,9. В последнее время микрофлюидные инженеры преодолели этот недостаток, разработав множество альтернативных методов изготовления с различными преимуществами, такими как снижение затрат, более быстрое время выполнения работ, более дешевые материалы и инструменты и повышенная функциональность8. Таким образом, разработка новых методов микропроизводства принесла недорогие, нечистые методы, которые достигают разрешения до 10 мкм8. Рисунок может быть использован непосредственно на подложке без создания дорогостоящего шаблона формования, что позволяет избежать трудоемкого процесса. Методы прямого изготовления включают фрезерование с ЧПУ, лазерную абляцию и прямую литографию8. Все эти методы пригодны для получения каналов с высоким соотношением сторон в широком спектре материалов, независимо от их твердости9, что позволяет создавать новые и выгодные геометрии, физическое поведение и качества в микрофлюидных устройствах8.

Микромелирование с ЧПУ создает микромасштабные структуры с использованием режущих инструментов, которые удаляют сыпучий материал с подложки и является эффективным методом изготовления для микрофлюидных устройств10,11. Метод микромелирования может быть полезен в микрофлюидных приложениях для создания микроканалов и функций непосредственно на рабочей поверхности, предлагая ключевое преимущество: заготовка может быть изготовлена за короткое время (менее 30 минут), что значительно сокращает время обработки от проектирования до прототипа12. Кроме того, широкая доступность режущей фурнитуры из различных материалов, размеров и форм делает фрезерные станки с ЧПУ подходящим инструментом, который позволил изготавливать различные функции во многих типах недорогих одноразовых материалов13.

Среди всех материалов, обычно используемых в микромелировании, термопласты остаются ведущим выбором из-за их многочисленных благоприятных свойств и совместимости с биологическими приложениями10,14. Термопласты являются привлекательной подложкой для микрофлюидных систем благодаря своим значительным преимуществам для разработки недорогих одноразовых аналитических систем9. Кроме того, эти материалы очень поддаются крупномасштабным производственным процессам, что делает их пригодными для коммерциализации и массового производства. По этим причинам термопласты, такие как ПММА, считались надежными и прочными материалами с первых лет микрофлюидики10. Были описаны различные протоколы для изготовления закрытых каналов в термопластах, таких как связь растворителя15, тепловая связь16 и связь поверхности17 ультрафиолетовой (УФ)/озоновой обработки.

Во многих случаях разрешение позиционирования, достигаемое с помощью обычных микромельничных машин, недостаточно для некоторых микрофлюидных применений, требующих структур размером менее 10 мкм. Высококачественное микромелье имеет достаточное разрешение. К сожалению, из-за высоких цен его использование ограничено горсткой пользователей12. Ранее наша исследовательская группа сообщала о изготовлении и манипулировании недорогим инструментом, который позволяет обрабатывать конструкции менее 10 мкм, преодолевая разрешение обычных фрезерных станков12. Светильник представляет собой платформу, изготовленную методом 3D-печати с простой электроникой, содержащую три пьезоэлектрических привода. Поверхность содержит шарнирные соединения, которые позволяют поднимать ее, когда пьезоэлектрические элементы действуют одновременно. Смещение по оси Z можно контролировать с разрешением 500 нм и точностью ±1,5 мкм12.

В этой статье представлены этапы производственного процесса акрилового устройства (ПММА) с помощью метода микромоделирования. Конструкция чипа состоит из основного канала шириной 200 мкм и высотой 200 мкм и бокового канала с теми же размерами для продувки потока реагентов. В центральной области канал прерывается физическим ограничением высотой всего 5 мкм, изготовленным с помощью 3D-печатной пьезоэлектрической платформы, изготовленной этой группой12, для захвата магнитных микрочастиц, которые составляют магнитную ловушку для наночастиц, путем размещения внешнего магнита. Показана работа микрофлюидного устройства путем проведения иммуноанализа для обнаружения коммерческого антитела с использованием лизоцима в качестве модельного антигена, конъюгированного с магнитными наночастицами 100 нм. Это устройство сочетает в себе различные особенности, которые делают его уникальным4: использование магнитных наночастиц в качестве иммунной поддержки сокращает общее время теста с часов до минут; использование фторогенного фермента для обнаружения позволяет установить пределы обнаружения, сопоставимые со стандартными иммуноферментными анализами (ИФА); и использование термопластика в качестве материала для изготовления делает его совместимым с массовым производством, чего не было в случае магнитных ловушек3 предыдущих микрофлюидных наночастиц, и делает его отличным кандидатом для разработки POCT.

Protocol

1. Микромельчивание Поверхностное шлифованиеВключите микромельничную машину и пьезоэлектрический контроллер. Запустите соответствующее программное обеспечение управления12. Выберите необходимые концевые фрезы (диаметры 200 мкм и 800 мкм). Поместит?…

Representative Results

Удалось создать высоковоспроизводимый протокол изготовления, который улучшает разрешение обычной техники микромосячения. Используя этот протокол, достигается изготовление канала высотой до 5 мкм, который работает как поэтапное ограничение в канале высотой 200 мкм. Простая конструкци?…

Discussion

Акриловое микрофлюидное устройство для иммуноанализа с использованием наночастиц в качестве иммуноподдержки было изготовлено с использованием метода микромельчивания. Метод прямого изготовления на подложке имеет то преимущество, что позволяет избежать использования мастер-формы, …

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана компанией Conacyt, Мексика, в рамках гранта, 312231 “Programa de Apoyos para Actividades Científicas, Tecnológicas y de Innovación”, а также AMEXCID и Министерством иностранных дел Мексики (SRE) в рамках гранта “Prueba serológica rápida, barata y de alta sensibilidad para SARS-CoV-2”. JAHO благодарит Conacyt Mexico за стипендию PhD.

Materials

0.008 Endmill KYOCERA SGS  2204 2FL 0.008×1/8×0.12×1-1/12
0.032 Endmill KYOCERA SGS  2228 2FL 0.032×1/8×0.48×1-1/12
Carbonyl-iron microparticles  Sigma-Aldrich 44890 7 μm 
Chloroform Fermont 6201 Health Hazard: Moderate
Flammability: None
Reactivity: None
Contact Hazard: Moderate 
CMOS camera Moment Teledyne Photometrics Sensor Technology: CMOS
Quantum Efficiency: 73%
Pixel Size: 4.5 µm x 4.5 µm
Supported Interfaces: USB 3.2 Gen 2
Dr Engrave Software Roland DGA Corporation Engraving software to design and create the engraving path on the surface
Extraction hood Unknown Unknown
Flexible Plastic Tubing Tygon AAD04103 ID = 0.020, OD = 0.060
Fluorescence microsope  ZEISS Axio Vert.A1
High Precision Dispense Needle Loctite 98612
Homemade piezoelectric controller application LabView  See reference 12 for more details.
Loctite 495 instant adhesive Henkel 49503 Apply with micropipette tip or dispensing needle 
MagJET Separation Rack thermoscientific 12 x 1.5 mL
Mechanic press Home-made
Milling Machine Roland MDX-50
Piezoelectric platform  Home-made See reference 12
Polymethylmethacrylate – Sheet – PMMA, Acrylic Goodfellow ME303018/1 Thickness: 1.3 mm, Transparency: Clear/Transparent
PVCamTest software Teledyne Photometrics Version 3.10.107  Image acquisition software
Stereo microscope Nikon SMZ 7457
SuperMag Carboxyl Beads Ocean NanoTech KSC0100 100 nm
Syringe pump kd Scientific  KDS200 Can hold up to two syringes
Utrasonic bath Branson 2800
VPanel software  Windows OS Version 1.0.3.0 Software for controlling the micromilling machine

Referencias

  1. Ng, A. H. C., Uddayasankar, U., Wheeler, A. R. Immunoassays in microfluidic systems. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 397 (3), 991-1007 (2010).
  2. Berlanda, S. F., Breitfeld, M., Dietsche, C. L., Dittrich, P. S. Recent advances in microfluidic technology for bioanalysis and diagnostics. Analytical Chemistry. 93 (1), 311-331 (2021).
  3. Teste, B., et al. Microchip integrating magnetic nanoparticles for allergy diagnosis. Lab on a Chip. 11 (24), 4207-4213 (2011).
  4. Guevara-Pantoja, P. E., Sánchez-Domínguez, M., Caballero-Robledo, G. A. Micro-nanoparticles magnetic trap: Toward high sensitivity and rapid microfluidic continuous flow enzyme immunoassay. Biomicrofluidics. 14 (1), 014111 (2020).
  5. Khizar, S., et al. Magnetic nanoparticles in microfluidic and sensing: From transport to detection. Electrophoresis. 41 (13-14), 1206-1224 (2020).
  6. Podaru, G., Chikan, V. CHAPTER 1: Magnetism in nanomaterials: Heat and force from colloidal magnetic particles. Magnetic Nanomaterials: Applications in Catalysis and Life Sciences. , 1-24 (2017).
  7. Reynoso-Hernández, K. B., Guevara-Pantoja, P. E., Caballero-Robledo, G. A. Capture efficiency of magnetic nanoparticles through the compaction effect of a microparticles column. Physical Review E. 104 (2), 024603 (2021).
  8. Gale, B. K., et al. A review of current methods in microfluidic device fabrication and future commercialization prospects. Inventions. 3 (3), 60 (2018).
  9. Liu, K., Fan, Z. H. Thermoplastic microfluidic devices and their applications in protein and DNA analysis. Analyst. 136 (7), 1288-1297 (2011).
  10. Guckenberger, D. J., de Groot, T. E., Wan, A. M. D., Beebe, D. J., Young, E. W. K. Micromilling: A method for ultra-rapid prototyping of plastic microfluidic devices. Lab on a Chip. 15 (11), 2364-2378 (2015).
  11. Guevara-Pantoja, P. E., Jiménez-Valdés, R. J., García-Cordero, J. L., Caballero-Robledo, G. A. Pressure-actuated monolithic acrylic microfluidic valves and pumps. Lab on a Chip. 18 (4), 662-669 (2018).
  12. Guevara-Pantoja, P. E., Chavez-Pineda, O. G., Solis-Serrano, A. M., Garcia-Cordero, J. L., Caballero-Robledo, G. A. An affordable 3D-printed positioner fixture improves the resolution of conventional milling for easy prototyping of acrylic microfluidic devices. Lab on a Chip. 20 (17), 3179-3186 (2020).
  13. Friedrich, C. R., Vasile, M. J. Development of the micromilling process for high-aspect-ratio microstructures. Journal of Microelectromechanical Systems. 5 (1), 33-38 (1996).
  14. Malayath, G., Sidpara, A. M., Deb, S. Study of different materials response in micro milling using four edged micro end mill tools. Journal of Manufacturing Processes. 56, 169-179 (2020).
  15. Jiang, J., et al. A single low-cost microfabrication approach for polymethylmethacrylate, polystyrene, polycarbonate and polysulfone based microdevices. RSC Advances. 5 (45), 36036-36043 (2015).
  16. Sun, Y., Kwok, Y. C., Nguyen, N. T. Low-pressure, high-temperature thermal bonding of polymeric microfluidic devices and their applications for electrophoretic separation. Journal of Micromechanics and Microengineering. 16 (8), 1681-1688 (2006).
  17. Tsao, C. W., Hromada, L., Liu, J., Kumar, P., DeVoe, D. L. Low temperature bonding of PMMA and COC microfluidic substrates using UV/ozone surface treatment. Lab on a Chip. 7 (4), 499-505 (2007).
  18. Bamshad, A., Nikfarjam, A., Khaleghi, H. A new simple and fast thermally-solvent assisted method to bond PMMA-PMMA in micro-fluidics devices. Journal of Micromechanics and Microengineering. 26 (6), 065017 (2016).
  19. Ogilvie, I. R. G., et al. Reduction of surface roughness for optical quality microfluidic devices in PMMA and COC. Journal of Micromechanics and Microengineering. 20 (6), 065016 (2010).

Play Video

Citar este artículo
Hernández-Ortiz, J. A., Guevara-Pantoja, P. E., Andrade-Medina, M., Carrillo-Tripp, M., Caballero-Robledo, G. A. Computer Numerical Control Micromilling of a Microfluidic Acrylic Device with a Staggered Restriction for Magnetic Nanoparticle-Based Immunoassays. J. Vis. Exp. (184), e63899, doi:10.3791/63899 (2022).

View Video