Summary

استخدام مطياف حركة الأيونات الدورية لتجارب التنقل الأيوني الترادفي

Published: January 20, 2022
doi:

Summary

يعد مطياف الحركة الأيونية (IMS) مكملا مثيرا للاهتمام لقياس الطيف الكتلي لتوصيف الجزيئات الحيوية ، لا سيما لأنه حساس للأيزومريا. يصف هذا البروتوكول تجربة IMS (IMS / IMS) جنبا إلى جنب ، والتي تسمح بعزل الجزيء وتوليد ملفات تعريف التنقل لشظاياه.

Abstract

التوصيف الدقيق للهياكل الكيميائية مهم لفهم آلياتها البيولوجية الأساسية وخصائصها الوظيفية. يعد قياس الطيف الكتلي (MS) أداة شائعة ولكنها ليست كافية دائما للكشف تماما عن جميع الميزات الهيكلية. على سبيل المثال ، على الرغم من أن الكربوهيدرات ذات صلة بيولوجية ، إلا أن توصيفها معقد بسبب مستويات عديدة من الأيزومريا. يعد مطياف الحركة الأيونية (IMS) مكملا مثيرا للاهتمام لأنه حساس لتشكيلات الأيونات ، وبالتالي للأيزومرية.

وعلاوة على ذلك، أدت التطورات الأخيرة إلى تحسين هذه التقنية تحسينا كبيرا: فالجيل الأخير من أدوات نظام الرصد الدولي الدوري يوفر قدرات إضافية مقارنة بأدوات نظام الرصد الدولي الخطي، مثل زيادة قدرة الحل أو إمكانية إجراء تجارب التنقل الأيوني جنبا إلى جنب (IMS/IMS). خلال IMS / IMS ، يتم اختيار أيون بناء على حركته الأيونية ، مجزأة ، وإعادة تحليلها للحصول على معلومات حركة الأيونات حول شظاياه. وأظهرت الأعمال التي أجريت مؤخرا أن ملامح التنقل للشظايا الواردة في بيانات نظام الرصد الدولي/نظام الرصد الدولي هذه يمكن أن تكون بمثابة بصمة لجليكان معين ويمكن استخدامها في استراتيجية الشبكات الجزيئية لتنظيم مجموعات بيانات الغليكوميكس بطريقة ذات صلة هيكلية.

وبالتالي فإن الهدف من هذا البروتوكول هو وصف كيفية توليد بيانات IMS/IMS، من إعداد العينات إلى معايرة المقطع العرضي النهائي للتصادم (CCS) لبعد الحركة الأيونية الذي ينتج عنه أطياف قابلة للتكرار. وإذا أخذنا على سبيل المثال جليكان تمثيلي واحد، سيبين هذا البروتوكول كيفية بناء تسلسل تحكم IMS/IMS على أداة نظام إدارة معلومات إدارية دورية، وكيفية حساب تسلسل التحكم هذا لترجمة وقت وصول نظام الرصد الدولي إلى وقت الانجراف (أي وقت الفصل الفعال المطبق على الأيونات)، وكيفية استخراج معلومات التنقل ذات الصلة من البيانات الأولية. تم تصميم هذا البروتوكول لشرح النقاط الحرجة لتجربة IMS / IMS بوضوح ، وبالتالي مساعدة مستخدمي IMS الدوريين الجدد على إجراء عمليات اكتساب مباشرة وقابلة للتكرار.

Introduction

التوصيف الكيميائي الكامل للجزيئات الحيوية هو المفتاح لفهم خصائصها البيولوجية والوظيفية الأساسية. تحقيقا لهذه الغاية ، تطورت علوم “omics” في السنوات الأخيرة ، بهدف توصيف واسع النطاق للهياكل الكيميائية بتركيزات بيولوجية. في علم البروتينات والأيض ، أصبح التصلب العصبي المتعدد أداة أساسية لكشف عدم التجانس الهيكلي الموجود في الوسائط البيولوجية – لا سيما بفضل حساسيته وقدرته على توفير المعلومات الهيكلية من خلال MS (MS / MS). في استراتيجيات MS / MS ، يتم اختيار الأيون وفقا لكتلته ، ثم يتم تجزئته ، وأخيرا ، يتم الحصول على كتل شظاياه لإنشاء بصمة للجزيء. ويمكن استخدام أطياف MS/MS، على وجه الخصوص، لمطابقة قواعد البيانات الطيفية1،2، أو إعادة بناء الهياكل الأصلية مؤقتا3،4. على افتراض أن الأطياف المتشابهة تنتمي إلى مركبات مماثلة ، يمكن أيضا استخدام بيانات MS / MS لبناء شبكات جزيئية (MNs) تربط الأنواع ذات الصلة من خلال درجة التشابه 5,6.

ومع ذلك ، بسبب الخاصية المتأصلة في MS للكشف عن نسبة الكتلة إلى الشحنة (m / z) للأيونات ، فإن التقنية عمياء عن عدد من الميزات الهيكلية التي تقع ضمن نطاق الأيزومرية (الاستريو). على سبيل المثال ، تتكون الكربوهيدرات من عدة وحدات فرعية أحادية السكاريد ، وكثير منها عبارة عن أيزومرات مجسمة أو حتى إبيمرات (على سبيل المثال ، Glc مقابل Gal أو Glc مقابل Man). ترتبط هذه الوحدات الفرعية بروابط جليكوزيدية ، والتي يمكن أن تختلف حسب موضع الارتباط (regioisomerism) والتكوين الستيري للكربون الشاذ (anomerism). هذه الخصائص تجعل من الصعب على التصلب المتعدد المستقل التمييز بين أيزومرات الكربوهيدرات7، ويمكن معالجة الأيزومرية الريجيوميرية فقط باستخدام طرق التنشيط عالية الطاقة8،9،10. وعلى الرغم من أن الاشتقاق هو خيار لتعطيل تكافؤ المجموعات الأيزومرية النمطية11، فإنه يتطلب إعدادا مكثفا للعينات. وثمة خيار آخر أكثر وضوحا هو إقران التصلب المتعدد ببعد تحليلي حساس للأيزومرية، مثل نظام الرصد الدولي.

نظرا لأن هذا البروتوكول مصمم للمستخدمين الذين هم بالفعل على دراية بالمفاهيم الأساسية لنظام IMS ، ولأن المراجعات التفصيلية متوفرة في مكان آخر12,13 ، يتم تقديم نظرة عامة موجزة فقط على مبادئ IMS هنا. IMS هي طريقة فصل الطور الغازي التي تعتمد على تفاعل الأيونات مع غاز عازل ومجال كهربائي ، مما يؤدي في النهاية إلى فصل الأيونات وفقا لتشكيلاتها في الطور الغازي. يمكن العثور على مبادئ مختلفة لنظام الرصد الدولي مقترنة ب MS على الأدوات التجارية: بعضها يعمل في حقول كهربائية عالية ومنخفضة بالتناوب (IMS غير متماثلة المجال ، FAIMS) ، في حين أن معظمها يعمل ضمن حد المجال المنخفض – ولا سيما IMS أنبوب الانجراف (DTIMS ، المجال الكهربائي المتناقص خطيا) ، وموجة السفر IMS (TWIMS ، موجات الجهد المتماثلة) ، و IMS المحاصرة (TIMS ، التدفق العالي لأيونات احتجاز الغاز العازل ضد المجالات الكهربائية)13 . تسمح طرق المجال المنخفض بالوصول إلى ما يسمى CCS ، وهي خاصية لزوج الغاز الأيوني الذي يمثل السطح (في Å2 أو nm2) للأيون الذي يتفاعل مع الغاز العازل أثناء الفصل. ومن الناحية النظرية، فإن احتجاز الكربون وتخزينه مستقل عن الأجهزة، وبالتالي فهو مفيد لتوليد البيانات التي يمكن استنساخها بين المختبرات المختلفة14. يمكن أن تتأثر عمليات فصل الحركة الأيونية بمعلمات مختلفة ، وعلى وجه الخصوص ، بتقلبات ضغط الغاز ودرجة حرارة الغاز في خلية التنقل. وتعد معايرة احتجاز الكربون وتخزينه وسيلة لعلاج ذلك، حيث سيتأثر كل من العيار والأنواع ذات الأهمية بالمثل13. ومع ذلك ، من الضروري تثبيت الجهاز في غرفة يتم التحكم في درجة حرارتها والحصول على نظام موثوق به للتحكم في ضغط الغاز.

تطور مثير للاهتمام من IMS هو IMS / IMS ، الذي تم تقديمه لأول مرة في عام 2006 من قبل مجموعة Clemmer كتناظرية ل MS / MS15,16. وفي نظام الرصد الدولي/نظام الرصد الدولي، يعزل أيون الاهتمام بصورة انتقائية استنادا إلى حركته الأيونية؛ ثم يتم تنشيطه (حتى التجزئة المحتملة) ، ويتم إجراء تحليل IMS جديد للأيون أو الشظايا المنشطة. في التصميم الآلي الأول ، تم وضع خليتين IMS في سلسلة ، مفصولة بواسطة قمع أيون حيث يقف التنشيط. ومنذ ذلك الحين، وعلى الرغم من اقتراح عدد من إعدادات نظام الرصد الدولي/نظام إدارة المعلومات (للاطلاع على الاستعراض، انظر Eldrid و Thalassinos17)، فإن أول مقياس الطيف الكتلي التجاري مع قدرة IMS/IMS لم يصبح متاحا إلا في عام 201918. وقد حسنت هذه الأداة المفهوم الأولي تحسينا كبيرا من خلال دمجها مع طفرة تكنولوجية أخرى: تصميم دوري لخلية IMS.

تسمح خلية IMS الدورية نظريا بزيادة طول مسار الانجراف إلى ما لا نهاية تقريبا ، وبالتالي ، قوة حل الأداة19. وقد تحقق ذلك عن طريق هندسة أداة معينة ، حيث يتم وضع خلية TWIMS الدورية بشكل متعامد على المحور البصري الأيوني الرئيسي. تسمح منطقة الصفيف متعددة الوظائف عند مدخل خلية IMS بالتحكم في اتجاه المسار الأيوني: (i) إرسال الأيونات جانبيا لفصل IMS ، (ii) إلى الأمام للكشف عن MS ، أو (iii) إلى الخلف من خلية IMS ليتم تخزينها في خلية ما قبل الصفيف. ومن خلية التخزين المصفوفة الأولية هذه، يمكن تنشيط الأيونات وإعادة حقن الشظايا في خلية IMS لقياس حركة الأيونات، وهو نهج استخدم بنجاح لتوصيف الأيزومرات المجسمة20. وفي نهاية المطاف، تحتوي البيانات المجمعة على معلومات عن حركة الأيونات ومعلومات m/z عن السلائف وشظاياها.

في منشور حديث استخدم هذا التصميم الدوري لتحليلات الجليكان (Ollivier et al.21) ، أظهرنا أن ملف تعريف التنقل للشظايا الموجودة في بيانات IMS / IMS هذه يعمل كبصمة لجزيء حيوي يمكن استخدامه في استراتيجية الشبكات الجزيئية. وأدت الشبكة الناتجة، المسماة IM-MN، إلى تنظيم مجموعات بيانات الغليكوميكس بطريقة ذات صلة هيكلية، في حين أن الشبكة المبنية فقط من بيانات MS/MS (MS-MN) كشفت عن القليل من المعلومات. لاستكمال هذا المنشور ومساعدة مستخدمي Cyclic IMS على تنفيذ سير العمل هذا ، يوفر هذا البروتوكول وصفا كاملا للبروتوكول المستخدم لجمع البيانات. يركز هذا البروتوكول فقط على توليد بيانات IMS/IMS التي يمكن للمستخدمين استخدامها بعد ذلك لإنشاء شبكات IM-MN (see21) – أو لأي تطبيق آخر من اختيارهم. لن يتم النظر في بناء IM-MN هنا ، حيث أن بروتوكولات الشبكات الجزيئية متاحة بالفعل22. ويسلط الضوء على النقاط الحاسمة التي يجب اتباعها لتوليد عمليات اقتناء قيمة وقابلة للتكرار لنظام الرصد الدولي/نظام الرصد الدولي. مع أخذ مثال أحد السكريات القليلة التي درسها أوليفييه وآخرون. 21 ، الخطوات التالية مفصلة: (i) إعداد العينات ، (ii) ضبط أداة IMS الدورية ، (iii) الانتقاء الآلي للذروة للبيانات ، و (iv) معايرة CCS.

Protocol

ملاحظة: يرد في الشكل 1 لمحة عامة عن البروتوكول. ويمكن الاطلاع على البارامترات المستخدمة في التجارب الموصوفة في هذا البروتوكول في الجدول التكميلي S1 والجدول التكميلي S2. 1. إعداد حل العينة ملاحظة: يتم وصف البروتوكول باس?…

Representative Results

تم اختيار أرابينوكسيلان بنتاساشاريد ، XA2XX ، كمثال لتوضيح هذا البروتوكول. هذا المركب متاح تجاريا ، ولكن فقط كخليط مع أرابينوكسيلان بنتاساشاريد آخر ، XA3XX (XA3XX النقي متاح أيضا تجاريا). وترد هياكل XA2XX وXA3XX في الشكل التكميلي S1. نظرا لأن نسبة XA2XX و XA3XX في …

Discussion

يعد نظام IMS الدوري من سلسلة SELECT أداة قوية تسمح باختيار مجموعة أيون محددة – من m/z معين وحركة أيون – دون الحاجة إلى الفصل الكروماتوغرافي في المنبع. ويتيح هذا الصك إمكانية إنشاء خريطة تجزئة ثنائية الأبعاد لهذه المجموعة الأيونية، يمكن من خلالها استخراج أطياف MS/MS وIMS/IMS. ومع ذلك ، يجب على المس?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

S.O. ممتنة للوكالة الوطنية الفرنسية للبحوث لتمويل درجة الدكتوراه (منحة ANR-18-CE29-0006).

Materials

33-α-L- plus 23-α-L-Arabinofuranosyl-xylotetraose (XA3XX/XA2XX) mixture Megazyme Ltd., Wicklow, Ireland O-XAXXMIX XA2XX + XA3XX mixture
33-α-L-Arabinofuranosyl-xylotetraose (XA3XX) Megazyme Ltd., Wicklow, Ireland O-XA3XX Pure XA3XX standard
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 1.5 mL, Eppendorf Quality, colorless, 1,000 tubes Eppendorf, Hamburg, Germany 0030120086 Used to prepare the carbohydrate stock solution and dilution
FALCON 50 mL Polypropylene Conical Tube 30 x 115 mm Corning Science México S.A. de C.V., Reynosa, Tamaulipas, Mexico 352070 Used to prepare the aqueous stock solution of 100 mM LiCl
Lithium Chloride (ACS reagent, ≥99 %) Sigma-Aldrich Inc., Saint Quentin Fallavier, France 310468 Used to dope the sample with lithium
Major Mix IMS/Tof Calibration Kit Waters Corp., Wilmslow, UK 186008113 Calibration solution for MS and IMS
MassLynx 4.2 SCN1016 Release 6 (Waters Embedded Analyser Platform for Cyclic IMS 2.9.1 Release 9) Waters Corp., Wilmslow, UK 721022377 Cyclic IMS vendor software for instrument control and data processing
Methanol for HPLC PLUS Gradient grade Carlo-Erba Reagents, Val de Reuil, France 412383 High-purity solvent
MS Leucine Enkephaline Kit Waters Corp., Wilmslow, UK 700002456 Reference compound used for tuning of the mass spectrometer
SCHOTT DURAN 100 mL borosilicate glass bottle VWR INTERNATIONAL, Radnor, Pennsylvania, US 218012458 Used to prepare the solution of 500 µM LiCl in 50:50 MeOH/Water
SELECT SERIES Cyclic IMS Waters Corp., Wilmslow, UK 186009432 Ion mobility-mass spectrometer equipped with a cylic IMS cell
Website: http://mzmine.github.io/ MZmine Development Team Link to download the MZmine software
Website: https://github.com/siollivier/IM-MN INRAE, UR BIA, BIBS Facility, Nantes, France Link to an in-house R script containing a CCS calibration function

Referencias

  1. Allard, P. -. M., et al. Integration of molecular networking and in-silico MS/MS fragmentation for natural products dereplication. Analytical Chemistry. 88 (6), 3317-3323 (2016).
  2. Wang, M., et al. Mass spectrometry searches using MASST. Nature Biotechnology. 38 (1), 23-26 (2020).
  3. David, M., Fertin, G., Rogniaux, H., Tessier, D. SpecOMS: a full open modification search method performing all-to-all spectra comparisons within minutes. Journal of Proteome Research. 16 (8), 3030-3038 (2017).
  4. Dührkop, K., et al. SIRIUS 4: a rapid tool for turning tandem mass spectra into metabolite structure information. Nature Methods. 16 (4), 299-302 (2019).
  5. Wang, M., et al. Sharing and community curation of mass spectrometry data with Global Natural Products Social Molecular Networking. Nature Biotechnology. 34 (8), 828-837 (2016).
  6. Nothias, L. -. F., et al. Feature-based molecular networking in the GNPS analysis environment. Nature Methods. 17 (9), 905-908 (2020).
  7. Gray, C. J., et al. Advancing solutions to the Carbohydrate Sequencing Challenge. Journal of the American Chemical Society. 141 (37), 14463-14479 (2019).
  8. Ropartz, D., et al. Online coupling of high-resolution chromatography with extreme UV photon activation tandem mass spectrometry: Application to the structural investigation of complex glycans by dissociative photoionization. Analytica Chimica Acta. 933, 1-9 (2016).
  9. Wolff, J. J., et al. Negative electron transfer dissociation of glycosaminoglycans. Analytical Chemistry. 82 (9), 3460-3466 (2010).
  10. Ropartz, D., et al. Charge transfer dissociation of complex oligosaccharides: comparison with collision-induced dissociation and extreme ultraviolet dissociative photoionization. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 27 (10), 1614-1619 (2016).
  11. Morelle, W., et al. Fragmentation characteristics of permethylated oligosaccharides using a matrix-assisted laser desorption/ionization two-stage time-of-flight (TOF/TOF) tandem mass spectrometer. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 18 (22), 2637-2649 (2004).
  12. Gabelica, V., Marklund, E. Fundamentals of ion mobility spectrometry. Current Opinion in Chemical Biology. 42, 51-59 (2018).
  13. Gabelica, V., et al. Recommendations for reporting ion mobility mass spectrometry measurements. Mass Spectrometry Reviews. 38 (3), 291-320 (2019).
  14. Hernandez-Mesa, M., et al. Interlaboratory and interplatform study of steroids collision cross section by traveling wave ion mobility spectrometry. Analytical Chemistry. 92 (7), 5013-5022 (2020).
  15. Koeniger, S. L., et al. An IMS-IMS analogue of MS-MS. Analytical Chemistry. 78 (12), 4161-4174 (2006).
  16. Merenbloom, S. I., Koeniger, S. L., Valentine, S. J., Plasencia, M. D., Clemmer, D. E. IMS−IMS and IMS−IMS−IMS/MS for separating peptide and protein fragment ions. Analytical Chemistry. 78 (8), 2802-2809 (2006).
  17. Eldrid, C., Thalassinos, K. Developments in tandem ion mobility mass spectrometry. Biochemical Society Transactions. 48 (6), 2457-2466 (2020).
  18. Giles, K., et al. A cyclic ion mobility-mass spectrometry system. Analytical Chemistry. 91 (13), 8564-8573 (2019).
  19. Merenbloom, S. I., Glaskin, R. S., Henson, Z. B., Clemmer, D. E. High-resolution ion cyclotron mobility spectrometry. Analytical Chemistry. 81 (4), 1482-1487 (2009).
  20. Ollivier, S., et al. Anomeric retention of carbohydrates in multistage cyclic ion mobility (IMSn): de novo structural elucidation of enzymatically produced mannosides. Analytical Chemistry. 93 (15), 6254-6261 (2021).
  21. Ollivier, S., Fanuel, M., Rogniaux, H., Ropartz, D. Molecular networking of high-resolution tandem ion mobility spectra: a structurally relevant way of organizing data in glycomics. Analytical Chemistry. 93 (31), 10871-10878 (2021).
  22. Aron, A. T., et al. Reproducible molecular networking of untargeted mass spectrometry data using GNPS. Nature Protocols. 15 (6), 1954-1991 (2020).
  23. McKenna, K. R., Li, L., Krishnamurthy, R., Liotta, C. L., Fernández, F. M. Organic acid shift reagents for the discrimination of carbohydrate isobars by ion mobility-mass spectrometry. The Analyst. 145 (24), 8008-8015 (2021).
  24. Pluskal, T., Castillo, S., Villar-Briones, A., Orešič, M. MZmine 2: Modular framework for processing, visualizing, and analyzing mass spectrometry-based molecular profile data. BMC Bioinformatics. 11, 395 (2010).
  25. Ruotolo, B. T., Benesch, J. L. P., Sandercock, A. M., Hyung, S. -. J., Robinson, C. V. Ion mobility-mass spectrometry analysis of large protein complexes. Nature Protocols. 3 (7), 1139-1152 (2008).
  26. Bush, M. F., Hall, Z., Giles, K., Hoyes, J., Robinson, C. V., Ruotolo, B. T. Collision cross sections of proteins and their complexes: a calibration framework and database for gas-phase structural biology. Analytical Chemistry. 82 (22), 9557-9565 (2010).
  27. Ropartz, D., et al. Structure determination of large isomeric oligosaccharides of natural origin through multipass and multistage cyclic traveling-wave ion mobility mass spectrometry. Analytical Chemistry. 91 (18), 12030-12037 (2019).
  28. Tolmachev, A. V., et al. Characterization of ion dynamics in structures for lossless ion manipulations. Analytical Chemistry. 86 (18), 9162-9168 (2014).
  29. Arndt, J. R., et al. High-resolution ion-mobility-enabled peptide mapping for high-throughput critical quality attribute monitoring. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 32 (8), 2019-2032 (2021).
  30. Le Fèvre, A., Dugourd, P., Chirot, F. Exploring conformational landscapes using trap and release tandem ion mobility spectrometry. Analytical Chemistry. 93 (9), 4183-4190 (2021).
  31. Ohshimo, K., He, X., Ito, R., Misaizu, F. Conformer separation of dibenzo-crown-ether complexes with Na+ and K+ ions studied by cryogenic ion mobility-mass spectrometry. The Journal of Physical Chemistry A. 125 (17), 3718-3725 (2021).
  32. Purves, R. W., Barnett, D. A., Ells, B., Guevremont, R. Gas-phase conformers of the [M + 2H]2+ ion of bradykinin investigated by combining high-field asymmetric waveform ion mobility spectrometry, hydrogen/deuterium exchange, and energy-loss measurements. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 15 (16), 1453-1456 (2001).
  33. Ujma, J., et al. Cyclic ion mobility mass spectrometry distinguishes anomers and open-ring forms of pentasaccharides. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 30 (6), 1028-1037 (2019).
  34. Warnke, S., Faleh, A. B., Scutelnic, V., Rizzo, T. R. Separation and identification of glycan anomers using ultrahigh-resolution ion-mobility spectrometry and cryogenic ion spectroscopy. Journal of The American Society for Mass Spectrometry. 30 (11), 2204-2211 (2019).
  35. Williamson, D. L., Bergman, A. E., Nagy, G. Investigating the structure of α/β carbohydrate linkage isomers as a function of group I metal adduction and degree of polymerization as revealed by cyclic ion mobility separations. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 32 (10), 2573-2582 (2021).
  36. Myers, O. D., Sumner, S. J., Li, S., Barnes, S., Du, X. One step forward for reducing false positive and false negative compound identifications from mass spectrometry metabolomics data: new algorithms for constructing extracted ion chromatograms and detecting chromatographic peaks. Analytical Chemistry. 89 (17), 8696-8703 (2017).
  37. Marchand, A., Livet, S., Rosu, F., Gabelica, V. Drift tube ion mobility: how to reconstruct collision cross section distributions from arrival time distributions. Analytical Chemistry. 89 (23), 12674-12681 (2017).
  38. Davis, D. M., et al. Analysis of ion mobility spectra for mixed vapors using Gaussian deconvolution. Analytica Chimica Acta. 289 (3), 263-272 (1994).
  39. Polasky, D. A., Dixit, S. M., Fantin, S. M., Ruotolo, B. T. CIUSuite 2: next-generation software for the analysis of gas-phase protein unfolding data. Analytical Chemistry. 91 (4), 3147-3155 (2019).
  40. Salbo, R., et al. Traveling-wave ion mobility mass spectrometry of protein complexes: accurate calibrated collision cross-sections of human insulin oligomers. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 26 (10), 1181-1193 (2012).
  41. Gelb, A. S., Jarratt, R. E., Huang, Y., Dodds, E. D. A study of calibrant selection in measurement of carbohydrate and peptide ion-neutral collision cross sections by traveling wave ion mobility spectrometry. Analytical Chemistry. 86 (22), 11396-11402 (2014).
  42. Richardson, K., Langridge, D., Dixit, S. M., Ruotolo, B. T. An improved calibration approach for traveling wave ion mobility spectrometry: robust, high-precision collision cross sections. Analytical Chemistry. 93 (7), 3542-3550 (2021).
check_url/es/63451?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Ollivier, S., Fanuel, M., Rogniaux, H., Ropartz, D. Using a Cyclic Ion Mobility Spectrometer for Tandem Ion Mobility Experiments. J. Vis. Exp. (179), e63451, doi:10.3791/63451 (2022).

View Video