Denne protokollen viser en nøyaktig og objektiv tilnærming for å visualisere virale titrasjoner ved hjelp av krystallfiolett, ved å sammenligne den med optisk mikroskopi og immunocytokjemisk farging.
Viral titrering er en viktig analyse for virologiforskning. Påvisning av cytopatisk effekt (CPE) via TCID50-analyser og plakkdannende enheter (PFU) analyser er de to hovedmetodene for å beregne titeret til et viruslager og er ofte basert på mikroskopideteksjon eller cellefarging for visualisering. Ved TCID50-analyse er objektiv visualisering vanligvis basert på immunocytokjemisk (ICC) farging av intracellulært virus for å beregne titere kombinert med visuell CPE-deteksjon via mikroskopi. Imidlertid er ICC-farging kostbar og tidkrevende. I denne studien sammenlignet vi visuell CPE observasjon via mikroskopi, ICC farging og krystallfiolett farging for å bestemme titers av to CPE-forming virus, Influensa A virus (IAV) av svin opprinnelse og Porcine Reproduktiv og Respiratory Syndrome virus (PRRSV). Vi viser at både krystallfiolett og ICC-farging er mer nøyaktig enn visuell CPE-deteksjon, og presenterer nesten identiske presisjonsnivåer på både IAV og PRRSV. Av denne grunn presenterer vi her krystallfiolett farging som en raskere og rimeligere måte å bestemme virale titrasjoner på en TCID50-analyse for CPE-dannende virus titrert i cellelinjer.
Viral titrering via TCID50-analyse er en vanlig brukt teknikk i forskning på smittsomme sykdommer1. Selv om variasjoner på matematikken bak denne metoden har blitt foreslått over tid1,2,3,4, er de for tiden anvendte metodene for infeksjonsdeteksjon avhengig av visuell bekreftelse gjennom tilstedeværelsen av cytopatisk effekt (CPE) ved hjelp av mikroskopi5. For å bekrefte CPE-visualisering mer objektivt på TCID50-analyser, er immunocytokjemisk (ICC) intracellulær farging rettet mot virusets proteiner en av de mest brukte metodene6, da forskjellige virus kan produsere forskjellige former for CPE. I vårt tilfelle er cellemorfologiske endringer like når de er smittet med både Influensa A-virus (IAV) og Porcine Reproduktivt og Respiratorisk syndrom Virus (PRRSV), hvor infiserte celler runder opp og løsner fra platen. Når det gjelder PRRSV, forårsaker det en CPE kjent som “total ødeleggelse”, hvor alle celler ender opp med å løsne fra brønnen. IAV derimot, kan presentere både total ødeleggelse og en ekstra CPE kjent som “subtotal ødeleggelse” der et lite antall celler ikke løsner etter infeksjon7. Denne teknikken er imidlertid tidkrevende å utføre og krever bruk av relativt kostbare reagenser. Det er viktig å merke seg at ICC ikke merker CPE, men heller antall celler som er infisert av viruset. Dette innebærer at cellene som ble vellykket smittet ved slutten av inkubasjonen, vil bli sett på som positive selv om infeksjonen ikke har forårsaket CPE ennå, og dermed forventes en høyere prosentandel av ICC-positive celler sammenlignet med CPE. Av den grunn beskriver vi i denne studien en komplementær metode for visuell deteksjon av CPE i en TCID50-analyse basert på krystallfiolett, et kjemikalie med en positiv ladning som festes til cellemembraner og brukes til å fargelegge celler. Krystallfiolett brukes ofte i virologiforskning for å måle plakkdannende enheter, blant andre8.
I denne studien sammenligner vi følsomheten til ikke-farget mikroskopi CPE-deteksjon med krystallfiolett farging og immunocytokjemisk farging basert på viral proteingjenkjenning, som er kjent for å være mer objektiv på grunn av sin høye følsomhet. Denne studien viser at både krystallfiolett og immunocytokjemisk farging er mer nøyaktig enn visuell mikroskopibasert CPE-deteksjon og kan brukes til objektivt å identifisere infiserte brønner i en TCID50-titrering. Gitt deres evne til å nå nesten identisk nøyaktighetsnivå på de cytopatiske virusene som er testet i cellelinjer, presenteres krystallfiolett som en raskere og rimeligere måte å bestemme virale titrasjoner på en TCID50-analyse. Den foreslåtte metoden ved hjelp av krystallfiolett farging tar en total tid på 40 min å utføre, med 15 min for paraformaldehyd (PFA) inkubasjon, 5 min for krystallfiolett inkubasjon og maksimalt 15 min for materialforberedelse, buffervask og tørking. Immunocytokjemiprotokollen som brukes til sammenligning tar en gjennomsnittlig tid på 4 t 30 min og ble utført som tidligere beskrevet9,10. Metoden som foreslås tar sikte på å visualisere en fullført viral titrering. Infeksjons- og inkubasjonstider kan utføres med forskjellig layout avhengig av viruset. Her testet vi to RNA-virus med cytopatisk effekt på cellelinjer.
Virale titrasjoner brukes rutinemessig i virologiforskning, med PFU-deteksjon og TCID50-analyser som oftest brukes1,2,3,4. Begge metodene er avhengige av påvisning av CPE i infiserte celler, og selv om de kan vurderes visuelt via mikroskopi, brukes en farging vanligvis for å oppnå et mer objektivt resultat eller til og med redusere inkubasjonstider. Når det gjelder TCID50, er et av…
The authors have nothing to disclose.
Forfattere vil gjerne anerkjenne Dr. Frank Scholle for hans nyttige kommentarer i manuskriptet, Chloe Mariant for hennes hjelp med mikroskopibildene og Teresa M. Tiedge for hennes hjelpsomme engelske revisjon.
96-well cell culture plates | Genesee | 25-221 | Clear, flat bottom |
AEC solution | Thermo Fisher | 1122 | |
Crystal violet | Thermo Fisher | C581-25; C581-100 | |
DMEM | Corning | 10-017-CV | |
Fetal bovine serum | BioWest | S1480 | |
Paraformaldehide | Thermo Fisher | J19943 | |
Primary Influenza Antibody | Bioss | BS-0344R | |
Primary PRRSV Antibody | Bioss | BS-10043R | |
Saponin | Thermo Scientific | AAA1882014 | |
Secondaty antibody | Invitrogen | 31460 | |
Tris Hydrochloride | Thermo Scientific | AM9856 |