Summary

Brugervenlig, høj-throughput, og fuldautomatisk dataindsamling software til single-partikel Cryo-elektron Mikroskopi

Published: July 29, 2021
doi:

Summary

Enkelt-partikel cryo-elektronmikroskopi kræver en passende softwarepakke og brugervenlig rørledning til automatisk dataindsamling med høj kapacitet. Her præsenterer vi anvendelsen af en fuldautomatisk softwarepakke til billedopkøb, Latitude-S, og en praktisk pipeline til dataindsamling af vitrified biomolekyler under lavdosisforhold.

Abstract

I de sidste mange år har teknologiske og metodiske fremskridt inden for enkeltpartikel kryo-elektronmikroskopi (cryo-EM) banet en ny vej for høj opløsning struktur bestemmelse af biologiske makromolekyler. På trods af de bemærkelsesværdige fremskridt inden for kryo-EM er der stadig plads til forbedringer i forskellige aspekter af enkeltpartikelanalysearbejdsgangen. Enkeltpartikelanalyse kræver en passende softwarepakke til automatisk dataindsamling med høj kapacitet. Flere automatiske dataindsamling softwarepakker blev udviklet til automatisk billedbehandling for single-partikel cryo-EM i de sidste otte år. Dette papir præsenterer en anvendelse af en fuldautomatisk billedopsamlingspipeline til vitrified biomolekyler under lavdosisforhold.

Det viser en softwarepakke, som kan indsamle cryo-EM-data fuldt, automatisk og præcist. Derudover styres forskellige mikroskopiske parametre let af denne softwarepakke. Denne protokol demonstrerer potentialet i denne softwarepakke i automatiseret billeddannelse af det alvorlige akutte luftvejssyndrom-coronavirus 2 (SARS-CoV-2) spikeprotein med et 200 keV kryo-elektronmikroskop udstyret med en direkte elektrondetektor (DED). Omkring 3.000 cryo-EM film billeder blev erhvervet i en enkelt session (48 timer) af dataindsamling, hvilket giver en atomare opløsning struktur af spike protein sars-CoV-2. Desuden indikerer denne strukturelle undersøgelse, at spikeproteinet vedtager to større konformationer, 1-RBD (receptorbindende domæne) åben og alle RBD ned lukkede konformationer.

Introduction

Single-partikel cryo-EM er blevet en mainstream strukturel biologi teknik til høj opløsning struktur bestemmelse af biologiske makromolekyler1. Enkeltpartikelrekonstruktion afhænger af erhvervelse af et stort antal mikrografer af vitrified prøver til at udtrække todimensionelle (2D) partikelbilleder, som derefter bruges til at rekonstruere en tredimensionel (3D) struktur af en biologisk makromolekyle2,3. Før udviklingen af DED’er varierede opløsningen opnået fra enkeltpartikelrekonstruktion mellem 4 og 30 Å4,5. For nylig har den opnåelige opløsning fra enkelt-partikel cryo-EM nået ud over 1,8 Å6. DED og automatiseret dataindsamling software har været store bidragydere til denne opløsning revolution7, hvor menneskelig intervention for dataindsamling er minimal. Generelt udføres cryo-EM-billeddannelse ved lave elektrondosishastigheder (20-100 e/Å2) for at minimere elektronstråleinduceret strålingsskader af biologiske prøver, hvilket bidrager til det lave signal-til-støj-forhold (SNR) i billedet. Denne lave SNR hindrer karakteriseringen af de høje opløsningsstrukturer af biologiske makromolekyler ved hjælp af enkeltpartikelanalyse.

Den nye generation elektrondetektorer er CMOS (komplementære metal-oxid-halvleder)-baserede detektorer, som kan overvinde disse lave SNR-relaterede forhindringer. Disse CMOS-kameraer til direkte detektion giver mulighed for hurtig udlæsning af signalet, som kameraet bidrager med bedre punktspredningsfunktion, passende SNR og fremragende detektivkvanteeffektivitet (DQE) til biologiske makromolekyler. Direkte detektionskameraer tilbyder høj SNR8 og lav støj i de optagede billeder, hvilket resulterer i en kvantitativ stigning i detektiv kvanteeffektiviteten (DQE) – et mål for, hvor meget støj en detektor tilføjer til et billede. Disse kameraer optager også film med hundredvis af billeder i sekundet, hvilket muliggør hurtig dataindsamling9,10. Alle disse egenskaber gør hurtige direkte detektionskameraer velegnede til lavdosisapplikationer.

Bevægelseskorrigerede stakbilleder bruges til databehandling til at beregne 2D-klassificering og rekonstruere et 3D-tæthedskort over makromolekyler ved hjælp af forskellige softwarepakker som RELION11, FREALIGN12, cryoSPARC13, cisTEM14 og EMAN215. Men for enkelt-partikel analyse, et enormt datasæt er nødvendig for at opnå en høj opløsning struktur. Derfor er automatiske dataindsamlingsafgifter meget afgørende for dataindsamlingen. For at registrere store cryo-EM-datasæt er flere softwarepakker blevet brugt i løbet af det seneste årti. Dedikerede softwarepakker, såsom AutoEM16, AutoEMation17, Leginon18, SerialEM19, UCSF-Image420, TOM221, SAM22, JAMES23, JADAS24, EM-TOOLS og EPU, er udviklet til automatiseret dataindsamling.

Disse softwarepakker bruger rutinemæssige opgaver til at finde hulpositioner automatisk ved at korrelere de lave forstørrelsesbilleder til billeder med høj forstørrelse, hvilket hjælper med at identificere huller med glasagtig is af passende istykkelse til billedopsamling under lavdosisforhold. Disse softwarepakker har reduceret antallet af gentagne opgaver og øget gennemløbet af cryo-EM dataindsamling ved at erhverve en stor mængde af god kvalitet data i flere dage kontinuerligt, uden afbrydelse og den fysiske tilstedeværelse af operatøren. Latitude-S er en lignende softwarepakke, som bruges til automatisk dataindsamling til enkeltpartikelanalyse. Denne softwarepakke er dog kun egnet til K2/K3 DED’er og leveres med disse detektorer.

Denne protokol demonstrerer Latitude-S’s potentiale i den automatiserede billedopsamling af SARS-CoV-2 spikeprotein med en direkte elektrondetektor udstyret med en 200 keV cryo-EM (se materialetabellen). Ved hjælp af dette dataindsamlingsværktøj erhverves der automatisk 3.000 filmfiler med SARS-CoV-2 spikeprotein, og yderligere databehandling udføres for at opnå en 3.9-4.4 Å-opløsning spikeproteinstruktur.

Protocol

BEMÆRK: Der kræves tre vigtige trin til indsamling af cryo-EM-dataindsamling: 1. kryo-EM-gitterforberedelse, 2. kalibrering og justering af mikroskopet, 3. automatisk dataindsamling (figur 1). Desuden er automatiseret dataindsamling opdelt i a. passende områdevalg, b. optimering af Latitude-S, c. start automatisk hulvalg og d. start automatisk dataindsamling (figur 1). 1. Kryo-EM-gitterforberedelse og prøveindlæsning til automatisk…

Representative Results

I den nuværende pandemisituation spiller cryo-EM en central rolle i karakteriseringen af strukturerne af forskellige proteiner fra SARS-CoV-226,27,28,29, som kan hjælpe med at udvikle vacciner og lægemidler mod virussen. Der er et presserende behov for en hurtig forskningsindsats med begrænsede menneskelige ressourcer til at bekæmpe coronasmitten i 2019. Dataindsamling i enkelt-partikel cr…

Discussion

Latitude-S er en intuitiv brugergrænseflade, som giver et miljø til automatisk at konfigurere og indsamle tusindvis af mikrografer eller filmfiler i høj opløsning på to dage. Det giver nem navigation på tværs af gitrene og bevarer placeringen af mikroskopstadiet, mens det bevæger sig fra lav forstørrelse til høj forstørrelse. Hvert trin i dataindsamlingen med Latitude-S er tidseffektivt med funktioner som en enkel brugergrænseflade, hurtig streaming af data med op til 4,5 GB /s hastighed og samtidig visning a…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkender Department of Biotechnology, Department of Science and Technology (DST) og Science, og Ministry of Human Resource Development (MHRD), Indien, for finansiering og cryo-EM facilitet på IISc-Bangalore. Vi anerkender DBT-BUILDER Program (BT/INF/22/SP22844/2017) og DST-FIST (SR/FST/LSII-039/2015) for National Cryo-EM facilitet på IISc, Bangalore. Vi anerkender finansiel støtte fra Science and Engineering Research Board (SERB) (Grant No.-SB/S2/RJN-145/2015, SERB-EMR/2016/000608 og SERB-IPA/2020/000094), DBT (bevilling nr. BT/PR25580/BRB/10/1619/2017). Vi takker Ms Ishika Pramanick for at forberede cryo-EM gitre, cryo-EM dataindsamling, og forberede tabellen over materialer. Vi takker også Mr. Suman Mishra for cryo-EM billedbehandling og for at hjælpe os med at forberede tallene. Vi takker Prof. Raghavan Varadarajan for at hjælpe os med at få den rensede spike proteinprøve til denne undersøgelse.

Materials

Blotting paper Ted Pella, INC. 47000-100 EM specimen preparation item
Capsule Thermo Fisher Scientific 9432 909 97591 EM specimen preparation unit
Cassette Thermo Fisher Scientific 1020863 EM specimen preparation unit
C-Clip Thermo Fisher Scientific 1036171 EM specimen preparation item
C-Clip Insertion Tool Thermo Fisher Scientific 9432 909 97571 EM specimen preparation tool
C-Clip Ring Thermo Fisher Scientific 1036173 EM specimen preparation item
EM grid (Quantifoil) Electron Microscopy Sciences Q3100AR1.3 R 1.2/1.3 300 Mesh, Gold
Glow discharge Machine Quorum N/A Quorum GlowQube glow discharge machine
K2 DED Gatan Inc. N/A Cryo-EM data collection device (Camera)
Latitude S Software Gatan Inc. Imaging software
Loading station Thermo Fisher Scientific 1130698 EM specimen preparation unit
Talos 200 kV Arctica Thermo Scientific™ N/A Cryo-Electron Microscope
Vitrobot Mark IV Thermo Fisher Scientific N/A EM specimen preparation unit

Referencias

  1. Li, Y., Cash, J. N., Tesmer, J. J. G., Cianfrocco, M. A. High-throughput cryo-EM enabled by user-free preprocessing routines. Structure. 28 (7), 858-869 (2020).
  2. Carragher, B., et al. Leginon: An automated system for acquisition of images from vitreous ice specimens. Journal of Structural Biology. 132 (1), 33-45 (2000).
  3. Stagg, S. M., et al. Automated cryoEM data acquisition and analysis of 284 742 particles of GroEL. Journal of Structural Biology. 155 (3), 470-481 (2006).
  4. Frank, J. Single-particle reconstruction of biological macromolecules in electron microscopy-30 years. Quarterly Reviews of Biophysics. 42 (3), 139-158 (2009).
  5. Biyani, N., et al. Focus: The interface between data collection and data processing in cryo-EM. Journal of Structural Biology. 198 (2), 124-133 (2017).
  6. Nakane, T., et al. Single-particle cryo-EM at atomic resolution. Nature. 587 (7832), 152-156 (2020).
  7. Kühlbrandt, W. The resolution revolution. Science. 343 (6178), 1443-1444 (2014).
  8. McMullan, G., Chen, S., Henderson, R., Faruqi, A. R. Detective quantum efficiency of electron area detectors in electron microscopy. Ultramicroscopy. 109 (9), 1126-1143 (2009).
  9. Zheng, S. Q., Palovcak, E., Armache, J. P., Verba, K. A., Cheng, Y., Agard, D. A. MotionCor2: Anisotropic correction of beam-induced motion for improved cryo-electron microscopy. Nature Methods. 14 (4), 331-332 (2017).
  10. Grant, T., Grigorieff, N. Measuring the optimal exposure for single particle cryo-EM using a 2.6 Å reconstruction of rotavirus VP6. eLife. 4, 06980 (2015).
  11. Scheres, S. H. W. RELION: Implementation of a Bayesian approach to cryo-EM structure determination. Journal of Structural Biology. 180 (3), 519-530 (2012).
  12. Grigorieff, N. FREALIGN: High-resolution refinement of single particle structures. Journal of Structural Biology. 157 (1), 117-125 (2007).
  13. Punjani, A., Rubinstein, J. L., Fleet, D. J., Brubaker, M. A. CryoSPARC: Algorithms for rapid unsupervised cryo-EM structure determination. Nature Methods. 14 (3), 290-296 (2017).
  14. Grant, T., Rohou, A., Grigorieff, N. CisTEM, user-friendly software for single-particle image processing. eLife. 7, 35383 (2018).
  15. Tang, G., et al. EMAN2: An extensible image processing suite for electron microscopy. Journal of Structural Biology. 157 (1), 38-46 (2007).
  16. Zhang, P., Beatty, A., Milne, J. L. S., Subramaniam, S. Automated data collection with a Tecnai 12 electron microscope: Applications for molecular imaging by cryomicroscopy. Journal of Structural Biology. 135 (3), 251-261 (2001).
  17. Lei, J., Frank, J. Automated acquisition of cryo-electron micrographs for single particle reconstruction on an FEI Tecnai electron microscope. Journal of Structural Biology. 150 (1), 69-80 (2005).
  18. Potter, C. S., et al. Leginon: A system for fully automated acquisition of 1000 electron micrographs a day. Ultramicroscopy. 77 (3-4), 153-161 (1999).
  19. Mastronarde, D. N. Automated electron microscope tomography using robust prediction of specimen movements. Journal of Structural Biology. 152 (1), 36-51 (2005).
  20. Suloway, C., et al. Automated molecular microscopy: The new Leginon system. Journal of Structural Biology. 151 (1), 41-60 (2005).
  21. Korinek, A., Beck, F., Baumeister, W., Nickell, S., Plitzko, J. M. Computer controlled cryo-electron microscopy – TOM2 a software package for high-throughput applications. Journal of Structural Biology. 175 (3), 394-405 (2011).
  22. Shi, J., Williams, D. R., Stewart, P. L. A Script-Assisted Microscopy (SAM) package to improve data acquisition rates on FEI Tecnai electron microscopes equipped with Gatan CCD cameras. Journal of Structural Biology. 164 (1), 166-169 (2008).
  23. Marsh, M. P., et al. Modular software platform for low-dose electron microscopy and tomography. Journal of Microscopy. 228, 384-389 (2007).
  24. Zhang, J., et al. JADAS: A customizable automated data acquisition system and its application to ice-embedded single particles. Journal of Structural Biology. 165 (1), 1-9 (2009).
  25. Pramanick, I., et al. Conformational flexibility and structural variability of SARS-CoV2 S protein. Structure. , (2021).
  26. Zhou, D., et al. Structural basis for the neutralization of SARS-CoV-2 by an antibody from a convalescent patient. Nature Structural and Molecular Biology. 27 (10), 950-958 (2020).
  27. Hillen, H. S., et al. Structure of replicating SARS-CoV-2 polymerase. Nature. 584 (7819), 154-156 (2020).
  28. Wrapp, D., et al. Cryo-EM structure of the 2019-nCoV spike in the prefusion conformation. Science. 367 (6483), 1260-1263 (2020).
  29. Thoms, M., et al. Structural basis for translational shutdown and immune evasion by the Nsp1 protein of SARS-CoV-2. Science. 369 (6508), 1249-1255 (2020).
  30. Kumar, A., Sengupta, N., Dutta, S. Simplified approach for preparing graphene oxide tem grids for stained and vitrified biomolecules. Nanomaterials. 11 (3), 1-22 (2021).

Play Video

Citar este artículo
Kumar, A., P., S., Gulati, S., Dutta, S. User-friendly, High-throughput, and Fully Automated Data Acquisition Software for Single-particle Cryo-electron Microscopy. J. Vis. Exp. (173), e62832, doi:10.3791/62832 (2021).

View Video