Este manuscrito descreve o método de mancha e mergulho para congelar manualmente espécimes biológicos para microscopia eletrônica criogênica de partículas únicas.
Imagens de amostras biológicas com elétrons para determinação de estrutura de alta resolução por microscopia eletrônica criogênica de partículas únicas (crioEM) requer uma fina camada de gelo vítreo contendo as biomoléculas de interesse. Apesar de numerosos avanços tecnológicos nos últimos anos que impulsionaram o crioEM de partículas únicas à vanguarda da biologia estrutural, os métodos pelos quais os espécimes são vitrificados para imagens de alta resolução muitas vezes permanecem o passo limitante da taxa. Embora numerosos esforços recentes tenham proporcionado meios para superar obstáculos frequentemente encontrados durante a vitrificação de espécimes, incluindo o desenvolvimento de novos suportes de amostras e instrumentação inovadora de vitrificação, o tradicional êmbolo operado manualmente continua sendo um grampo na comunidade crioem devido ao baixo custo de compra e facilidade de operação. Aqui, fornecemos métodos detalhados para o uso de um dispositivo padrão, no estilo guilhotina operado manualmente para a vitrificação de amostras biológicas para imagens de alta resolução por crioEM de uma única partícula. Além disso, problemas comumente encontrados e recomendações de solução de problemas para quando uma preparação padrão não produz uma amostra adequada também são descritas.
Microscopia criogênica de elétrons de partículas únicas (crioEM) é uma técnica estrutural poderosa que pode ser usada para resolver estruturas de espécimes biológicos dinâmicos para resolução quase atômica1,2,3,4. De fato, os recentes avanços nas tecnologias diretas de detector de elétrons4,5,6,7,8,9,10, melhorias nas fontes de elétrons4,11,12,13,14, e estabilidade de lentes eletromagnéticas15, juntamente com o desenvolvimento contínuo da aquisição de dados 16,17 e pacotes de software de análise18,19, permitiram aos pesquisadores determinar rotineiramente estruturas de espécimes bem comportados para resolução de 3 Å ou melhor 4,11,13,14,20,21,22,23 . Apesar desses recursos aprimorados de imagem e processamento de dados, a preparação da rede crioEM continua sendo o maior impedimento para uma determinação bem-sucedida da estrutura de alta resolução e muitas vezes serve como um gargalo considerável no fluxo de trabalho EM24,25,26,27.
O CrioEM baseia-se na imagem de amostras biológicas em soluções aquosas que são congeladas para formar uma fina película de gelo “semelhante a vidro” – um processo conhecido como vitrificação – que preserva o estado bioquímico nativo. A vitrificação de amostras biológicas para crioEM remonta a mais de 40 anos28,29,30 e muitas técnicas e equipamentos que foram desenvolvidos para este processo dependem do método originalmente detalhado de blot-and-plunge31,32,33,34,35 , pelo qual um pequeno volume de amostra (por exemplo, 1-5 μL) é aplicado a uma grade EM especializada antes que a solução em excesso seja removida usando interação física da grade com papel de mancha. O tempo deste processo é geralmente empiricamente determinado para cada espécime como um componente crítico das amostras de congelamento é a espessura do filme de gelo vítreo – se o gelo é muito grosso, então a qualidade da imagem se deteriora dramaticamente devido ao aumento da dispersão do feixe de elétrons, enquanto o gelo que é muito fino pode restringir orientações proteicas e/ou excluir partículas do centro dos buracos de papel alumínio da grade36 . Essa dependência da espessura perfeita do gelo para crioEM de partículas únicas levou a uma ampla gama de técnicas e equipamentos que podem congelar amostras, incluindo robótica37,38, microfluidos42 e dispositivos ultrassônicos ou pulverizadores27,39,40,41,42,43,44 . Nos últimos anos, alguns dos dispositivos de preparação de amostras mais populares dependem do uso de robótica para congelamento automatizado de amostras usando a técnica de blot-and-plunge45. Embora esses dispositivos sejam projetados para criar de forma reprodutivelmente a espessura adequada do gelo para imagens, eles muitas vezes permanecem muito caros para laboratórios individuais comprarem e operarem e são geralmente encontrados dentro de instalações crioEM a taxas horárias para uso. Nos últimos anos, a técnica original de blot-and-plunge manual voltou a ser usada em aumento3,47,48,49,50,51,52. De fato, um dispositivo de blot-and-plunge operado manualmente pode alcançar grades crioEM de alta qualidade a uma fração do custo das contrapartes robóticas. Além disso, a mancha manual também oferece mais controle dos usuários sobre a mancha, pois os pesquisadores podem ajustar o tipo de mancha (ou seja, mancha traseira da grade, mancha frontal da grade, etc.), e tempo de mancha com base em cada amostra individual e questões de pesquisa.
Neste artigo, fornecemos detalhes sobre como congelar efetivamente amostras biológicas usando um dispositivo de vitrificação manual tradicional, juntamente com uma plataforma de guerra personalizada53. As melhores práticas, incluindo preparação do criogen, manuseio da grade, aplicação da amostra e manchas, bem como armadilhas e recomendações comuns sobre como superar esses obstáculos são fornecidas. São discutidos conselhos sobre como aumentar a reprodutibilidade da espessura do gelo entre as preparações da rede e como modificar a mancha de amostra com base no tipo de espécime biológico. Dado o baixo custo associado à compra e operação do êmbolo manual descrito neste manuscrito, laboratórios em todo o mundo podem preparar espécimes biológicos para crioEM de forma econômica e reprodutível.
A vitrificação de espécimes biológicos para imagem por microscopia eletrônica criogênica de partículas únicas (crioEM) continua sendo um passo criticamente importante para a determinação bem sucedida da estrutura. O método manual de blot-and-plunge descrito neste protocolo representa um método econômico, confiável e robusto para congelar rapidamente amostras biológicas em filmes finos de gelo vítreo para imagens crioEM. Usando os métodos descritos no manuscrito, os pesquisadores poderão montar e operar …
The authors have nothing to disclose.
Agradecemos aos membros do laboratório Herzik por pensarem criticamente e fornecerem feedback sobre este manuscrito e o conteúdo do vídeo. M.A.H.Jr. é apoiado pelo NIH R35 GM138206 e como um Estudioso searle. H.P.M.N é apoiado pelo Molecular Biophysics Training Grant (NIH T32 GM008326). Também gostaríamos de agradecer a Bill Anderson, Charles Bowman e Dr. Gabriel Lander no Scripps Research Institute por ajudar a projetar, montar e testar o êmbolo manual mostrado no vídeo.
4 slot grid storage box | Ted Pella | 160-40 | |
14 gauge flat metal dispensing tip | Amazon | B07M7YWWLT | |
22×22 mm square glass coverslip | Sigma | C9802-1PAK | |
60 mm glass Petri dish to store grids | Fisher | 08-747A | |
100 mm glass Petri dish to store Whatman paper | Fisher | 08-747D | |
150 mm glass Petri dish to store Whatman paper | Fisher | 08-747F | |
250 mL beaker | Fisher | 02-555-25B | |
Blue styrofoam dewar | Spear Lab | FD-500 | |
Brass ethane vessel | Lasco | 17-4075 | |
Clamping tweezers | Ted Pella | 38825 | |
Delicate task wipes | Fisher | 06-666 | |
Dual-stage regulator with control valve | Airgas | Y12N245D580-AG | |
Dewer grid base | UCSD | ||
Ethane platform | UCSD | ||
Ethane propane tank | Praxair | ET PR50ZU-G | ethane (50%) : propane (50%) in a high-pressure tank |
Ethane tank | Praxair | UN1035 | ethane (100%) |
Flexible arm task light | Amscope | LED-11CR | |
Grids (UltrAufoil R 1.2/1.3 300 mesh) | Electron Microscopy Sciences | Q325AR1.3 | |
Humidifier | Target | 719438 | |
Hygrometer | ThermoPro | B01H1R0K68 | |
Lab coat | UCSD | ||
Liquid Nitrogen dewar | Worthington | LD4 | |
Liquid Nitrogen gloves | Fisher | 19-059-925 | |
Manual plunger stand (black stand + foot pedal) | UCSD | ||
Mark 5 (plunging platform) | UCSD | ||
Nitrile gloves | VWR | 82026-424 | |
P20 pipette | Eppendorf | 13-690-029 | |
PCR tubes | Eppendorf | E0030124286 | |
Pipette tips | ibis scientific | 63300005 | |
Ring lamp | Amazon | B07HMR4H8G | |
Safety glasses | UCSD | ||
Scissors | Amazon | Fiskars 01-004761J | |
Screw driver | Ironside | 354711 | |
Tape | Fisher | 15-901-10R | |
Tweezer to transfer grid box | Amazon | LTS-3 | |
Tygon tubing | Fisher | 14-171-130 | |
Whatman blotting paper | Fisher | 1001-090 |