Summary

Direkt kanylimplantation i Cisterna Magna av grisar

Published: June 09, 2021
doi:

Summary

Denna artikel presenterar ett steg-för-steg protokoll för den direkta kanyl implantation i cisterna magna av grisar.

Abstract

Det glymfatiska systemet är ett avfallsrensningssystem i hjärnan som förlitar sig på flödet av cerebrospinalvätska (CSF) i astrocytbundna perivaskulära utrymmen och har varit inblandad i clearance av neurotoxiska peptider som amyloid-beta. Nedsatt glymfatisk funktion förvärrar sjukdomspatologi i djurmodeller av neurodegenerativa sjukdomar, såsom Alzheimers, vilket belyser vikten av att förstå detta clearance-system. Det glymfatiska systemet studeras ofta av cisterna magna cannulations (CMc), där spårämnen levereras direkt till ryggmärgsvätskan (CSF). De flesta studier har dock utförts på gnagare. Här visar vi en anpassning av CMc-tekniken hos grisar. Med hjälp av CMc hos grisar kan det glymfatiska systemet studeras med hög optisk upplösning i gyrencephalic hjärnor och därigenom överbrygga kunskapsgapet mellan gnagare och mänskliga glymfatiska.

Introduction

Cerebrospinalvätska (CSF) är en ultrafiltrat av blod som finns i och runt centrala nervsystemet (CNS)1,2. Förutom att ge flytkraft till hjärnan eller absorbera skadliga mekaniska krafter, spelar CSF också en central roll för att rensa metaboliskt avfall från CNS3. Avfallsfrigång underlättas av det nyligen karakteriserade glymfatiska systemet som tillåter det konvektiva flödet av CSF genom hjärnan parenkym via perivaskulära utrymmen (PVS), som omger genomträngande artärer3,4,5. Denna process har visat sig vara beroende av aquaporin-4 (AQP4), en vattenkanal som främst uttrycks på den astrocytiska endfeet, bunden till PVS4,6. Studien av det glymfatiska systemet uppnås genom både in vivo– och ex vivo-avbildning, med antingen avancerad ljusmikroskopi eller magnetisk resonanstomografi (MRI), efter införandet av en fluorescerande/radioaktiv spårämne eller kontrastmedel i CSF7,8,9,10,11.

Ett effektivt sätt att införa en spårämne i CSF utan att ådra sig skador på hjärnan parenkym är genom cisterna magna cannulation (CMc)12,13. En stor majoritet av alla glymfatiska studier har hittills utförts på gnagare och undvikits hos högre däggdjur på grund av CMc-invasiviteten kopplad till den praktiska enkelheten att arbeta med ett litet däggdjur. Dessutom tillåter mössens tunna skallar in vivo-avbildning utan behov av ett hjärnskålenfönster och möjliggör därefter en okomplicerad hjärnutvinning11,14. Experiment som utförts på människor har gett en värdefull makroskopisk in vivo-data om den glymfatiska funktionen, men förlitat sig på intratekal spårämnesinjektioner i den distala ländryggen och dessutom använda MRI som inte ger tillräcklig upplösning för att fånga mikroanatomin det glymfatiska systemet7,15,16 . Att förstå det glymfatiska systemets arkitektur och omfattning hos högre däggdjur är avgörande för dess översättning till människor. För att underlätta glymfatisk översättning till människor är det viktigt att tillämpa tekniker som utförs hos gnagare på högre däggdjur för att möjliggöra direkta jämförelser av det glymfatiska systemet mellan arter av ökande kognition och hjärnans komplexitet17. Gris och mänskliga hjärnor är gyrencephalic, har en vikt neuroarkitektur, medan gnagare hjärnor är lissencephalic, vilket har betydande skillnad mellan varandra. När det gäller den totala storleken är grishjärnor också mer jämförbara med människor, som är 10-15 gånger mindre än den mänskliga hjärnan, medan mushjärnor är 3 000 gånger mindre18. Genom att bättre förstå det glymfatiska systemet hos stora däggdjur kan det vara möjligt att använda det mänskliga glymfatiska systemet för framtida terapeutisk intervention i tillstånd som stroke, traumatisk hjärnskada och neurodegeneration. Direkt CMc hos grisar in vivo är en metod som möjliggör högupplöst ljusmikroskopi av det glymfatiska systemet i ett högre däggdjur. På grund av storleken på de svin som används är det dessutom möjligt att tillämpa övervakningssystem som liknar dem som används vid mänskliga operationer, vilket gör det möjligt att tätt dokumentera och reglera vitala funktioner för att bedöma hur dessa bidrar till den glymfatiska funktionen.

Protocol

Alla ingrepp genomfördes i enlighet med EU-direktivet 2010/63/EU och godkändes av Malmö-Lunds etiska kommitté för djurforskning (Dnr 5.8.18-05527/2019) och genomfördes enligt Vetenskapsrådets CODEX-riktlinjer. 1. Förberedelse Spårämne Förbered konstgjord CSF (126 mM NaCl, 2,5 mM KCl, 1,25 mM NaH2PO4, 2 mM MgCl2, 2 mM CaCl2, 10 mM glukos, 26 mM NaHCO3; pH 7,4) Till 500 μL artificiell csf, tillsätt 1…

Representative Results

När grisen är medvetslös palperas den och dess ytanatomi är markerad, med början vid occipital crest (OC) och arbetar mot bröstkotorna (TV) och varje öronbas (EB). Det är i linje med dessa linjer som dermal snitt görs (figur 1A). De tre muskellagren inklusive trapezius, semispinalis capitus biventer och semispinalis capitus complexus återförsluts och hålls öppna av två uppsättningar självhållande upprullningsdon för att exponera cisterna magna (CM) (fig…

Discussion

Häri beskrivs ett detaljerat protokoll för att utföra den direkta cannulation av cisterna magna hos grisar, inklusive nödvändig förberedelse, kirurgiskt ingrepp, tracer infusion och extraktion av hjärnan. Detta kräver någon med erfarenhet och certifiering för att arbeta med stora djur. Om det utförs korrekt möjliggör detta leverans av önskade molekyler med säkerhet direkt i GSF, varefter en serie olika avancerade ljusavbildningsmetoder kan användas för att utforska CSF-fördelning och glymfatisk funktion…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Knut och Alice Wallenbergs Stiftelse, Hjärnfonden, Wenner Grens stiftelser och Crafoordstiftelsen.

Materials

0.01% azide in PBS Sigmaaldrich S2002
18G needle Mediq
1ml Syringe FischerSci 15849152
20G cannula Mediq NA
22G cannula Mediq NA
4% paraformaldehyde Sigmaaldrich P6148
Anatomical forceps NA NA
Bovine serum albumin Alexa-Fluor 647 Conjugate ThermoFischer A34785 2 vials (10mg)
CaCl2 Sigmaaldrich C1016
Chisel ClasOhlson 40-8870
Dental cement Agnthos 7508
compact saw ClasOhlson 40-9517
Glucose Sigmaaldrich G8270
Hammer ClasOhlson 40-7694
Insta-Set CA Accelerator BSI-Inc BSI-151
IV line TAP, 3-WAYS with 10cm extension Bbraun NA
KCl Sigmaaldrich P9333
Marker pen NA NA
MgCl2 Sigmaaldrich M8266
MilliQ water NA NA
NaCL Sigmaaldrich S7653
NaH2PO4 Sigmaaldrich S8282
NaHCO3 Sigmaaldrich S5761
No. 20 scalpel blade Agnthos BB520
No. 21 Scalpel blade Agnthos BB521
No. 4 Scalpel handle Agnthos 10004-13
Saline Mediq NA
Salmon knife Fiskers NA
Self-retaining retractors NA NA
Superglue NA NA
Surgical curved scissors NA NA
Surgical forceps NA NA
Surgical towel clamps NA NA

Referencias

  1. Redzic, Z. B., Segal, M. B. The structure of the choroid plexus and the physiology of the choroid plexus epithelium. Advanced Drug Delivery Reviews. 56 (12), 1695-1716 (2004).
  2. Sakka, L., Coll, G., Chazal, J. Anatomy and physiology of cerebrospinal fluid. European Annals of Otorhinolaryngology, Head and Neck Diseases. 128 (6), 309-316 (2011).
  3. Nedergaard, M. Garbage truck of the brain. Science. 340 (6140), 1529-1530 (2013).
  4. Iliff, J. J., et al. A Paravascular pathway facilitates csf flow through the brain parenchyma and the clearance of interstitial solutes, including amyloid B. Science Translational Medicine. 4 (147), (2012).
  5. Xie, L., et al. Sleep drives metabolite clearance from the Adult Brain. Science. 342 (6156), 373-378 (2013).
  6. Mestre, H., et al. Aquaporin-4-dependent glymphatic solute transport in the rodent brain. eLife. 7, 40070 (2018).
  7. Ringstad, G., et al. Brain-wide glymphatic enhancement and clearance in humans assessed with MRI. JCI Insight. 3 (13), 121537 (2018).
  8. Lundgaard, I., Wang, W., Eberhardt, A., Vinitsky, H. S., Cameron, B. Beneficial effects of low alcohol exposure, but adverse effects of high alcohol intake on glymphatic function. Scientific Reports. , 1-16 (2018).
  9. Munk, A. S., et al. PDGF-B is required for development of the glymphatic system. Cell Reports. 26 (11), 2955-2969 (2019).
  10. Plog, B. A., et al. Transcranial optical imaging reveals a pathway for optimizing the delivery of immunotherapeutics to the brain. JCI Insight. 3 (20), 1-15 (2018).
  11. Bechet, N. B., et al. Light sheet fluorescence micrscopy of optically cleared brains for studying the glymphatic system. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 40 (10), 1975-1986 (2020).
  12. Xavier, A. L. R., et al. Cannula implantation into the cisterna magna of rodents. Journal of Visualized Experiments. (135), e57378 (2018).
  13. Ramos, M., et al. Cisterna magna injection in rats to study glymphatic function. Methods in Molecular Biology. 1938, (2019).
  14. Sweeney, A. M., et al. in vivo imaging of cerebrospinal fluid transport through the intact mouse skull using fluorescence macroscopy. Journal of visualized experiments. (149), e59774 (2019).
  15. Eide, P. K., Ringstad, G. MRI with intrathecal MRI gadolinium contrast medium administration: A possible method to assess glymphatic function in human brain. Acta Radiologica Open. 4 (11), 205846011560963 (2015).
  16. Ringstad, G., Vatnehol, S. A. S., Eide, P. K. Glymphatic MRI in idiopathic normal pressure hydrocephalus. Brain. 140 (10), 2691-2705 (2017).
  17. Kornum, B. R., Knudsen, G. M. Cognitive testing of pigs (Sus scrofa) in translational biobehavioral research. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 35 (3), 437-451 (2011).
  18. Bèchet, N. B., Shanbhag, N. C., Lundgaard, I. Glymphatic function in the gyrencephalic brain. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. , (2021).
  19. Raghunandan, A., et al. Bulk flow of cerebrospinal fluid observed in periarterial spaces is not an artifact of injection. bioRxiv. , (2020).
  20. D’Angelo, A., et al. Spinal fluid collection technique from the atlanto-occipital space in pigs. Acta Veterinaria Brno. 78 (2), 303-305 (2009).
  21. Ma, Q., et al. Rapid lymphatic efflux limits cerebrospinal fluid flow to the brain. Acta Neuropathologica. 137 (1), 151-165 (2019).
  22. Hablitz, L. M., et al. Increased glymphatic influx is correlated with high EEG delta power and low heart rate in mice under anesthesia. Science Advances. 5 (2), 5447 (2019).
  23. Mestre, H., et al. Flow of cerebrospinal fluid is driven by arterial pulsations and is reduced in hypertension. Nature Communications. 9 (1), 4878 (2018).
  24. Pleticha, J., et al. Pig lumbar spine anatomy and imaging-guided lateral lumbar puncture: A new large animal model for intrathecal drug delivery. Journal of Neuroscience Methods. 216 (1), 10-15 (2013).

Play Video

Citar este artículo
Bèchet, N. B., Shanbhag, N. C., Lundgaard, I. Direct Cannula Implantation in the Cisterna Magna of Pigs. J. Vis. Exp. (172), e62641, doi:10.3791/62641 (2021).

View Video