Vi beskriver användningen av en svin hornhinnan för att testa den antivirala effekten av experimentella läkemedel.
Virus och bakterier kan orsaka en mängd olika okulära ytdefekter och degeneration såsom sår och sår genom hornhinnans infektion. Med en seroprevalens som sträcker sig från 60-90% över hela världen, Herpes Simplex Virus typ-1 (HSV-1) orsakar ofta mucocutaneous skador i orofacial regionen som också manifesteras som skador och infektion-associerade blindhet. Medan nuvarande antivirala läkemedel är effektiva, kräver uppkomsten av resistens och persistens av giftiga biverkningar utveckling av nya antivirala mot denna allestädes närvarande patogen. Även om in vitro-bedömning ger vissa funktionella data om en framväxande antiviral, visar de inte komplexiteten i okulär vävnad in vivo. In vivo-studier är dock dyra och kräver utbildad personal, särskilt när man arbetar med virusagenter. Därför är ex vivo-modeller effektiva men billiga steg för antiviral testning. Här diskuterar vi ett protokoll för att studera infektion av HSV-1 med hjälp av svin hornhinnorna ex vivo och en metod för att behandla dem lokalt med befintliga och nya antivirala läkemedel. Vi visar också metoden att utföra en plack analys med HSV-1. De metoder som beskrivs kan användas för att utföra liknande experiment för att studera infektioner som liknar HSV-1 patogenen.
Personer som lider av okulär infektioner ådrar sig ofta synförlust1. Med en hög seroprevalens över hela världen lider HSV-infekterade individer av återkommande ögoninfektioner som leder till hornhinnans ärrbildning, stromal keratit och neovaskularisering2,3,4,5. HSV infektioner har också visat sig orsaka mindre ofta, en rad allvarliga villkor bland immunkomprometterade, obehandlade patienter som encefalit och systemisk sjuklighet6,7,8. Läkemedel som Acyclovir (ACV) och dess nukleosidanaloger har visat konsekvent framgång med att bromsa HSV-1-infektion och till och med kontrollera reaktivering, men den långvariga användningen av dessa läkemedel är förknippad med njursvikt, fetala avvikelser och underlåtenhet att begränsa uppkomsten av läkemedelsresistens mot framväxandevirusstammar 9,10,11,12,13. Komplexitet i samband med HSV- 1 okulär infektioner, har tidigare studerats in vitro med monolayers och 3D kulturer av mänskliga hornhinnans celler och in vivo med hjälp av murin eller kanin okulär infektioner. Medan dessa in vitro-modeller ger betydande data om de cellulära biologiska komponenterna i HSV-1-infektioner, misslyckas de dock med att efterlikna den invecklade komplexiteten hos hornhinnans vävnad och gör lite för att belysa virusets dendritiska spridning14. Även om in vivo-system är mer insiktsfulla när det gäller att visa infektionsspridning i hornhinnorna och immunaktiveringssvar under HSV-1-infektion, kommer de däremot med förbehållet att de kräver utbildade utredare och stora anläggningar för djurvård för att förbise experimenten.
Här använder vi svin hornhinnorna som en ex vivo modell för att undersöka HSV-1 infektion inducerad sårsystem. Både den potentiella farmakologin hos vissa läkemedel samt cell- och molekylärbiologin i sårsystemet som orsakas av infektionen kan studeras genom vävnad explant kulturer. Denna modell kan också ändras för användning för andra virus- och bakterieinfektioner. I denna studie användes svin hornhinnorna för att testa den antivirala effekten av en preklinisk liten molekyl, BX795. Användningen av svin hornhinnorna föredrogs på grund av enkel tillgång och kostnadseffektivitet. Dessutom är svin hornhinnans modeller bra modeller av mänskliga ögon med hornhinnorna är lätta att isolera, tillräckligt stora för infektion och visualisering och robusta att hantera15. Svin hornhinnorna är också jämförbara med komplexiteten hos mänskliga hornhinnans modeller i både trans hornhinnans permeabilitet och systemisk absorption15. Genom att använda denna modell för studien kunde vi klargöra hur BX795 är värt att ytterligare undersökning som en kompetent hämmare av HSV-1 virusinfektion och lägger till litteraturen om att klassificera den som en potentiell liten molekyl antiviral förening16.
Tidigare forskning har visat att BX795 har en lovande roll som antiviralt medel mot HSV-1-infektion; genom att hämma tankbindande kinas 1 (TBK1)16. Både TBK1 och autofagi har spelat en roll i att hämma HSV-1 infektion som visats på mänskliga hornhinnans epitelial celler. BX795 visade sig vara maximalt effektiv med antiviral aktivitet vid en koncentration av 10μM och med hjälp av både western blot analys och viral plack analys av viktiga virala proteiner, BX795 visade sig hämma HSV-1 infek…
The authors have nothing to disclose.
Denna studie stöddes av NIH-bidrag (R01 EY024710, RO1 AI139768 och RO1 EY029426) till D.S. A.A. stöddes av ett F30EY025981-anslag från National Eye Institute, NIH. Studien genomfördes med hjälp av svin hornhinnorna som erhållits från Park Packing company, 4107 Ashland Avenue, New City, Chicago, IL-60609
30 G hypodermic needles. | BD | 305128 | |
500 mL glass bottle. | Thomas Scientific | 844027 | |
Antimycotic and Antibiotic (AA) | GIBCO | 15240096 | Aliquot into 5 mL tubes and keep frozen until use |
Benchtop vortexer. | BioDot | BDVM-3200 | |
Biosafety cabinet with a Bio-Safety Level-2 (BSL-2) certification. | Thermofisher Scientific | Herasafe 2030i | |
Calgiswab 6" Sterile Calcium Alginate Standard Swabs. | Puritan | 22029501 | |
Cell scraper – 25 cm | Biologix BE | 70-1180 70-1250 | |
Crystal violet | Sigma Aldrich | C6158 | Store the powder in a dark place |
Dulbecco’s modified Eagle’s medium – DMEM | GIBCO | 41966029 | Store at 4 °C until use |
Ethanol | Sigma Aldrich | E7023 | |
Fetal bovine serum -FBS | Sigma Aldrich | F2442 | Aliquot into 50 mL tubes and keep frozen until use |
Flat edged tweezers – 2. | Harward Instruments | 72-8595 | |
Freezers –80 °C. – | Thermofisher Scientific | 13 100 790 | |
Fresh box of blades. | Thomas Scientific | TE05091 | |
Guaze | Johnson & Johnson | 108 square inch folder 12 ply | |
HSV-1 17GFP | grown in house | – | Original strain from Dr. Patricia Spears, Northwestern University. GFP expressing HSV-1 strain 17 |
Insulin, Transferrin, Selenium – ITS | GIBCO | 41400045 | Aliquot into 5 mL tubes and keep frozen until use |
Magnetic stirrer. | Thomas Scientific | H3710-HS | |
Metallic Scissors. | Harward Instruments | 72-8400 | |
Micropipettes 1 to 1000 µL. | Thomas Scientific | 1159M37 | |
Minimum Essential Medium – MEM | GIBCO | 11095080 | Store at 4 °C until use |
OptiMEM | GIBCO | 31985047 | Store at 4 °C until use |
Penicillin/streptomycin. | GIBCO | 15140148 | Aliquot into 5 mL tubes and keep frozen until use |
Phosphate Buffer Saline -PBS | GIBCO | 10010072 | Store at room temperature |
Porcine Corneas | Park Packaging Co., Chicago, IL | 0 | Special order by request |
Procedure bench covers – as needed. | Thermofisher Scientific | S42400 | |
Serological Pipettes | Thomas Scientific | P7132, P7127, P7128, P7129, P7137 | |
Serological Pipetting equipment. | Thomas Scientific | Ezpette Pro | |
Stereoscope | Carl Zeiss | SteREO Discovery V20 | |
Stirring magnet. | Thomas Scientific | F37120 | |
Tissue culture flasks, T175 cm2. | Thomas Scientific | T1275 | |
Tissue culture incubators which can maintain 5% CO2 and 37 °C temperature. | Thermofisher Scientific | Forma 50145523 | |
Tissue culture treated plates (6-well). | Thomas Scientific | T1006 | |
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red | GIBCO | 25-300-062 | Aliquot into 10 mL tubes and keep frozen until use |
Vero cells | American Type Culture Collection ATCC | CRL-1586 |