Summary

Svin hornhinnans vävnad explant för att studera effekten av Herpes Simplex Virus-1 Antivirala läkemedel

Published: September 20, 2021
doi:

Summary

Vi beskriver användningen av en svin hornhinnan för att testa den antivirala effekten av experimentella läkemedel.

Abstract

Virus och bakterier kan orsaka en mängd olika okulära ytdefekter och degeneration såsom sår och sår genom hornhinnans infektion. Med en seroprevalens som sträcker sig från 60-90% över hela världen, Herpes Simplex Virus typ-1 (HSV-1) orsakar ofta mucocutaneous skador i orofacial regionen som också manifesteras som skador och infektion-associerade blindhet. Medan nuvarande antivirala läkemedel är effektiva, kräver uppkomsten av resistens och persistens av giftiga biverkningar utveckling av nya antivirala mot denna allestädes närvarande patogen. Även om in vitro-bedömning ger vissa funktionella data om en framväxande antiviral, visar de inte komplexiteten i okulär vävnad in vivo. In vivo-studier är dock dyra och kräver utbildad personal, särskilt när man arbetar med virusagenter. Därför är ex vivo-modeller effektiva men billiga steg för antiviral testning. Här diskuterar vi ett protokoll för att studera infektion av HSV-1 med hjälp av svin hornhinnorna ex vivo och en metod för att behandla dem lokalt med befintliga och nya antivirala läkemedel. Vi visar också metoden att utföra en plack analys med HSV-1. De metoder som beskrivs kan användas för att utföra liknande experiment för att studera infektioner som liknar HSV-1 patogenen.

Introduction

Personer som lider av okulär infektioner ådrar sig ofta synförlust1. Med en hög seroprevalens över hela världen lider HSV-infekterade individer av återkommande ögoninfektioner som leder till hornhinnans ärrbildning, stromal keratit och neovaskularisering2,3,4,5. HSV infektioner har också visat sig orsaka mindre ofta, en rad allvarliga villkor bland immunkomprometterade, obehandlade patienter som encefalit och systemisk sjuklighet6,7,8. Läkemedel som Acyclovir (ACV) och dess nukleosidanaloger har visat konsekvent framgång med att bromsa HSV-1-infektion och till och med kontrollera reaktivering, men den långvariga användningen av dessa läkemedel är förknippad med njursvikt, fetala avvikelser och underlåtenhet att begränsa uppkomsten av läkemedelsresistens mot framväxandevirusstammar 9,10,11,12,13. Komplexitet i samband med HSV- 1 okulär infektioner, har tidigare studerats in vitro med monolayers och 3D kulturer av mänskliga hornhinnans celler och in vivo med hjälp av murin eller kanin okulär infektioner. Medan dessa in vitro-modeller ger betydande data om de cellulära biologiska komponenterna i HSV-1-infektioner, misslyckas de dock med att efterlikna den invecklade komplexiteten hos hornhinnans vävnad och gör lite för att belysa virusets dendritiska spridning14. Även om in vivo-system är mer insiktsfulla när det gäller att visa infektionsspridning i hornhinnorna och immunaktiveringssvar under HSV-1-infektion, kommer de däremot med förbehållet att de kräver utbildade utredare och stora anläggningar för djurvård för att förbise experimenten.

Här använder vi svin hornhinnorna som en ex vivo modell för att undersöka HSV-1 infektion inducerad sårsystem. Både den potentiella farmakologin hos vissa läkemedel samt cell- och molekylärbiologin i sårsystemet som orsakas av infektionen kan studeras genom vävnad explant kulturer. Denna modell kan också ändras för användning för andra virus- och bakterieinfektioner. I denna studie användes svin hornhinnorna för att testa den antivirala effekten av en preklinisk liten molekyl, BX795. Användningen av svin hornhinnorna föredrogs på grund av enkel tillgång och kostnadseffektivitet. Dessutom är svin hornhinnans modeller bra modeller av mänskliga ögon med hornhinnorna är lätta att isolera, tillräckligt stora för infektion och visualisering och robusta att hantera15. Svin hornhinnorna är också jämförbara med komplexiteten hos mänskliga hornhinnans modeller i både trans hornhinnans permeabilitet och systemisk absorption15. Genom att använda denna modell för studien kunde vi klargöra hur BX795 är värt att ytterligare undersökning som en kompetent hämmare av HSV-1 virusinfektion och lägger till litteraturen om att klassificera den som en potentiell liten molekyl antiviral förening16.

Protocol

All svinvävnad som användes i denna studie tillhandahölls av en privat organisation från tredje part och ingen av djurhanteringen utfördes av University of Illinois vid Chicagos personal. 1. Material Reagenser Användning efter reagenser för plackanalys: pulvermetylcellulosa, Dulbeccos modifierade örnmedium (DMEM), fetala bovinserum (FBS), penicillin och streptomycin (P/S) för plackanalys. Använd kristallvioletttabletter och etanol (mol…

Representative Results

För att förstå effekten av de experimentella antivirala måste de testas i stor utsträckning innan de skickas för kliniska prövningar in vivo. I detta avseende måste positiv kontroll, negativ kontroll och testgrupper identifieras. Trifluorothymidin (TFT) har länge använts som den föredragna behandlingen för att behandla herpes keratitis lokalt16. Används som en positiv kontroll, TFT behandlade hornhinnans grupper visar lägre infektion spridning. Som en negativ kontroll använde vi DMS…

Discussion

Tidigare forskning har visat att BX795 har en lovande roll som antiviralt medel mot HSV-1-infektion; genom att hämma tankbindande kinas 1 (TBK1)16. Både TBK1 och autofagi har spelat en roll i att hämma HSV-1 infektion som visats på mänskliga hornhinnans epitelial celler. BX795 visade sig vara maximalt effektiv med antiviral aktivitet vid en koncentration av 10μM och med hjälp av både western blot analys och viral plack analys av viktiga virala proteiner, BX795 visade sig hämma HSV-1 infek…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna studie stöddes av NIH-bidrag (R01 EY024710, RO1 AI139768 och RO1 EY029426) till D.S. A.A. stöddes av ett F30EY025981-anslag från National Eye Institute, NIH. Studien genomfördes med hjälp av svin hornhinnorna som erhållits från Park Packing company, 4107 Ashland Avenue, New City, Chicago, IL-60609

Materials

30 G hypodermic needles. BD 305128
500 mL glass bottle. Thomas Scientific 844027
Antimycotic and Antibiotic (AA) GIBCO 15240096 Aliquot into 5 mL tubes and keep frozen until use
Benchtop vortexer. BioDot BDVM-3200
Biosafety cabinet with a Bio-Safety Level-2 (BSL-2) certification. Thermofisher Scientific Herasafe 2030i
Calgiswab 6" Sterile Calcium Alginate Standard Swabs. Puritan 22029501
Cell scraper – 25 cm Biologix BE 70-1180 70-1250
Crystal violet Sigma Aldrich C6158 Store the powder in a dark place
Dulbecco’s modified Eagle’s medium – DMEM GIBCO 41966029 Store at 4 °C until use
Ethanol Sigma Aldrich E7023
Fetal bovine serum -FBS Sigma Aldrich F2442 Aliquot into 50 mL tubes and keep frozen until use
Flat edged tweezers – 2. Harward Instruments 72-8595
Freezers –80 °C. – Thermofisher Scientific 13 100 790
Fresh box of blades. Thomas Scientific TE05091
Guaze Johnson & Johnson 108 square inch folder 12 ply
HSV-1 17GFP grown in house Original strain from Dr. Patricia Spears, Northwestern University. GFP expressing HSV-1 strain 17
Insulin, Transferrin, Selenium – ITS GIBCO 41400045 Aliquot into 5 mL tubes and keep frozen until use
Magnetic stirrer. Thomas Scientific H3710-HS
Metallic Scissors. Harward Instruments 72-8400
Micropipettes 1 to 1000 µL. Thomas Scientific 1159M37
Minimum Essential Medium – MEM GIBCO 11095080 Store at 4 °C until use
OptiMEM  GIBCO 31985047 Store at 4 °C until use
Penicillin/streptomycin. GIBCO 15140148 Aliquot into 5 mL tubes and keep frozen until use
Phosphate Buffer Saline -PBS GIBCO 10010072 Store at room temperature
Porcine Corneas Park Packaging Co., Chicago, IL 0 Special order by request
Procedure bench covers – as needed. Thermofisher Scientific S42400
Serological Pipettes Thomas Scientific P7132, P7127, P7128, P7129, P7137
Serological Pipetting equipment. Thomas Scientific Ezpette Pro
Stereoscope Carl Zeiss SteREO Discovery V20
Stirring magnet. Thomas Scientific F37120
Tissue culture flasks, T175 cm2. Thomas Scientific T1275
Tissue culture incubators which can maintain 5% CO2 and 37 °C temperature. Thermofisher Scientific Forma 50145523
Tissue culture treated plates (6-well). Thomas Scientific T1006
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red GIBCO 25-300-062 Aliquot into 10 mL tubes and keep frozen until use
Vero cells American Type Culture Collection ATCC CRL-1586

Referencias

  1. Liesegang, T. J. Herpes simplex virus epidemiology and ocular importance. Cornea. 20 (1), 1-13 (2001).
  2. Farooq, A. V., Valyi-Nagy, T., Shukla, D. Mediators and mechanisms of herpes simplex virus entry into ocular cells. Current Eye Research. 35 (6), 445-450 (2010).
  3. Farooq, A. V., Shah, A., Shukla, D. The role of herpesviruses in ocular infections. Virus Adaptation and Treatment. 2 (1), 115-123 (2010).
  4. Xu, F., et al. Seroprevalence and coinfection with herpes simplex virus type 1 and type 2 in the United States, 1988-1994. Journal of Infectious Diseases. 185 (8), 1019-1024 (2002).
  5. Xu, F., et al. Trends in herpes simplex virus type 1 and type 2 seroprevalence in the United States. Journal of the American Medical Association. 296 (8), 964-973 (2006).
  6. Koganti, R., Yadavalli, T., Shukla, D. Current and emerging therapies for ocular herpes simplex virus type-1 infections. Microorganisms. 7 (10), (2019).
  7. Lobo, A. -., Agelidis, A. M., Shukla, D. Pathogenesis of herpes simplex keratitis: The host cell response and ocular surface sequelae to infection and inflammation. Ocular Surface. 17 (1), 40-49 (2019).
  8. Koujah, L., Suryawanshi, R. K., Shukla, D. Pathological processes activated by herpes simplex virus-1 (HSV-1) infection in the cornea. Cellular and Molecular Life Sciences. 76 (3), 405-419 (2019).
  9. Lass, J. H., et al. Antiviral medications and corneal wound healing. Antiviral Research. 4 (3), 143-157 (1984).
  10. Burns, W. H., et al. Isolation and characterisation of resistant Herpes simplex virus after acyclovir therapy. Lancet. 1 (8269), 421-423 (1982).
  11. Crumpacker, C. S., et al. Resistance to antiviral drugs of herpes simplex virus isolated from a patient treated with Acyclovir. New England Journal of Medicine. 306 (6), 343-346 (2010).
  12. Yildiz, C., et al. Acute kidney injury due to acyclovir. CEN Case Report. 2 (1), 38-40 (2013).
  13. Fleischer, R., Johnson, M. Acyclovir nephrotoxicity: a case report highlighting the importance of prevention, detection, and treatment of acyclovir-induced nephropathy. Case Rep Med. 2010, 1-3 (2010).
  14. Thakkar, N., et al. Cultured corneas show dendritic spread and restrict herpes simplex virus infection that is not observed with cultured corneal cells. Science Report. 7, 42559 (2017).
  15. Pescina, S., et al. et al Development of a convenient ex vivo model for the study of the transcorneal permeation of drugs: Histological and permeability evaluation. Journal of Pharmaceutical Sciences. 104, 63-71 (2015).
  16. Jaishankar, D., et al. An off-target effect of BX795 blocks herpes simplex virus type 1 infection of the eye. Science Translational Medicine. 10, 5861 (2018).
  17. Duggal, N., et al. Zinc oxide tetrapods inhibit herpes simplex virus infection of cultured corneas. Molecular Vision. 23, 26-38 (2017).

Play Video

Citar este artículo
Yadavalli, T., Volety, I., Shukla, D. Porcine Corneal Tissue Explant to Study the Efficacy of Herpes Simplex Virus-1 Antivirals. J. Vis. Exp. (175), e62195, doi:10.3791/62195 (2021).

View Video