Summary

Fractionnement cellulaire de cellules U937 par purification par gradient de densité isopycnique

Published: August 12, 2021
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Summary

Ce protocole de fractionnement permettra aux chercheurs d’isoler des protéines cytoplasmiques, nucléaires, mitochondriales et membranaires à partir de cellules de mammifères. Les deux dernières fractions subcellulaires sont purifiées par gradient de densité isopycnique.

Abstract

Ce protocole décrit une méthode pour obtenir des fractions protéiques subcellulaires à partir de cellules de mammifères en utilisant une combinaison de détergents, de lyse mécanique et de centrifugation à gradient de densité isopycnique. L’avantage majeur de cette procédure est qu’elle ne repose pas sur l’utilisation exclusive de détergents solubilisants pour obtenir des fractions subcellulaires. Cela permet de séparer la membrane plasmique des autres organites liés à la membrane de la cellule. Cette procédure facilitera la détermination de la localisation des protéines dans les cellules avec une méthode reproductible, évolutive et sélective. Cette méthode a été utilisée avec succès pour isoler les protéines cytosoliques, nucléaires, mitochondriales et plasmiques de la lignée cellulaire monocytaire humaine, U937. Bien qu’optimisée pour cette lignée cellulaire, cette procédure peut servir de point de départ approprié pour le fractionnement subcellulaire d’autres lignées cellulaires. Les pièges potentiels de la procédure et la façon de les éviter sont discutés, tout comme les modifications qui peuvent devoir être envisagées pour d’autres lignées cellulaires.

Introduction

Le fractionnement subcellulaire est une procédure dans laquelle les cellules sont lysées et séparées en leurs composants constitutifs par plusieurs méthodes. Cette technique peut être utilisée par les chercheurs pour déterminer la localisation des protéines dans les cellules de mammifères ou pour enrichir des protéines de faible abondance qui seraient autrement indétectables. Bien qu’il existe actuellement des méthodes de fractionnement subcellulaire, tout comme les kits commerciaux qui peuvent être achetés, ils souffrent de plusieurs limitations que cette procédure tente de surmonter. La plupart des méthodes de fractionnement cellulaire sont exclusivement à base de détergent1,2, reposant sur l’utilisation de tampons contenant des quantités croissantes de détergent pour solubiliser différents composants cellulaires. Bien que cette méthode soit rapide et pratique, elle aboutit à des fractions impures. Ceux-ci sont conçus pour permettre aux chercheurs d’isoler facilement un ou deux composants de la cellule, mais ne sont pas assez complexes pour isoler plusieurs fractions subcellulaires d’un échantillon en même temps. Se fier uniquement aux détergents entraîne généralement une solubilisation indiscriminée des organites enfermés dans la membrane et de la membrane plasmique, ce qui rend la séparation de ces composants difficile. Une complication supplémentaire de l’utilisation de ces kits est l’incapacité des chercheurs à les modifier/optimiser pour des applications spécifiques, car la plupart des composants sont des formulations exclusives. Enfin, ces kits peuvent être d’un coût prohibitif, avec des limites dans le nombre d’utilisations qui les rendent moins qu’idéaux pour des échantillons plus volumineux.

Malgré la disponibilité de kits pour l’isolement des mitochondries qui ne dépendent pas de détergents, ils ne sont pas conçus pour isoler la membrane plasmique et produire des quantités d’échantillon significativement inférieures aux protocoles d’isolement standard 3,4. Bien que les méthodes de centrifugation différentielle prennent plus de temps, elles aboutissent souvent à des fractions distinctes qui ne peuvent pas être obtenues avec des kits exclusivement à base de détergent1. La séparation sans utilisation exclusive de détergents solubilisants permet également une purification supplémentaire à l’aide d’ultracentrifugation et de gradients de densité isopycnique, ce qui réduit la contamination croisée. Ce protocole de fractionnement démontre l’isolement de fractions subcellulaires à partir de monocytes U937 en utilisant une combinaison d’approches basées sur la centrifugation à haute vitesse et les détergents. Cette méthode facilitera l’isolement des composants nucléaires, cytoplasmiques, mitochondriaux et plasmiques d’une cellule de mammifère avec une contamination minimale entre les fractions.

Protocol

1. Préparer des tampons et des réactifs Préparer des solutions fraîches d’inhibiteurs de phosphatase et de protéase.Ajouter 17,4 mg de fluorure de phénylméthanesulfonyle (PMSF) à 1 mL d’éthanol à 100 % pour préparer un stock de 100 mM.NOTA : Porter un équipement de protection lors de la manipulation du PMSF, car il est dangereux lorsqu’il est ingéré ou inhalé et lorsqu’il est en contact avec la peau ou les yeux. Il est corrosif pour les yeux et la peau. Selon les in…

Representative Results

Un organigramme schématique de cette procédure (Figure 1) résume visuellement les étapes qui ont été suivies pour fractionner avec succès les cellules U9375 cultivées en suspension. Les fractions recueillies au sommet du gradient de densité isopycnique en volumes égaux (1 mL) montrent la purification des fractions mitochondriale et membranaire (Figure 2). L’utilisation d’un anticorps contre VDAC, une protéine localisée à …

Discussion

Cette méthode est une version modifiée d’une approche précédemment publiée du fractionnement subcellulaire sans l’utilisation de la centrifugation à grande vitesse11. Cette méthode modifiée nécessite un équipement plus spécialisé pour obtenir les meilleurs résultats, mais elle est plus complète et reproductible de façon cohérente.

Le développement du protocole initial était nécessaire en raison de l’incapacité de séparer les échantillons mito…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par NIH R15-HL135675-01 et NIH 2 R15-HL135675-02 à T.J.L.

Materials

Benzonase Nuclease Sigma-Aldrich E1014
Bullet Blender Tissue Homogenizer Next Advance 61-BB50-DX
digitonin Sigma D141
end-over-end rotator ThermoFisher
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma E9884
ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EGTA) Sigma E3889
GAPDH (14C10)  Cell Signalling Technologies 2118
HEPES VWR 97064-360
Hexylene glycol Sigma 68340
Igepal Sigma I7771 Non-ionic, non-denaturing detergent
KCl Sigma P9333
Mannitol Sigma M9647
MgCl2 Sigma M8266
NaCl Sigma S9888
Na, K-ATPase a1 (D4Y7E) Cell Signalling Technologies 23565
Open-Top Polyclear Tubes, 16 x 52 mm Seton Scientific 7048
OptiPrep (Iodixanol) Density Gradient Medium Sigma D1556-250ML
phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) Sigma P7626
Protease Inhibitor Cocktail, General Use VWR M221-1ML
refrigerated centrifuge ThermoFisher
S50-ST Swinging Bucket Rotor Eppendorf
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Sigma 436143
Sodium deoxycholate Sigma D6750
sodium orthovanadate (SOV) Sigma 567540
sonicator ThermoFisher
Sorvall MX120 Plus Micro-Ultracentrifuge ThermoFisher
Stainless Steel Beads 3.2 mm Next Advance SSB32
Sucrose Sigma S0389
Tris-buffered Saline (TBS) VWR 97062-370
Tween 20 non-ionic detergent in western blotting buffers
VDAC (D73D12) Cell Signalling Technologies 4661

Referencias

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McCaig, W. D., Deragon, M. A., Truong, P. V., Knapp, A. R., LaRocca, T. J. Cell Fractionation of U937 Cells by Isopycnic Density Gradient Purification. J. Vis. Exp. (174), e62119, doi:10.3791/62119 (2021).

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