Summary

Generación Y Ensamblaje De Nucleocápsides Específicas Del Virus Respiratorio Sincitial

Published: July 27, 2021
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Summary

Para el análisis mecánico profundizado de la síntesis sincitial respiratoria del ARN del virus (RSV), divulgamos un protocolo de utilizar la fosfoproteína de la chaperona (p) para el coexpression de la nucleoproteína ARN-libre (N0)para el montaje in vitro subsecuente de las nucleocápsides virus-específicas (NCs).

Abstract

El uso de una plantilla de ARN auténtica es fundamental para avanzar en el conocimiento fundamental de la síntesis de ARN viral que puede guiar tanto el descubrimiento mecanicista como el desarrollo de ensayos en virología. La plantilla del ARN de los virus nonsegmented del ARN del negativo-sentido (NNS), tales como el virus sincitial respiratorio (RSV), no es una molécula del ARN solamente sino algo un complejo encapsidated de la ribonucleoprotein de la nucleoproteína (N). A pesar de la importancia de la plantilla auténtica del ARN, la generación y el montaje de tal complejo del ribonucleoprotein siguen siendo sofisticados y requieren la aclaración profundizada. El principal desafío es que el RSV N sobreexpresado se une no específicamente a los ARN celulares para formar partículas aleatorias similares a nucleocáps (NCLPs). Aquí, establecimos un protocolo para obtener N libre de ARN (N0)primero co-expresando N con una fosfoproteína chaperona (P), luego ensamblando N0 con oligos de ARN con la secuencia de ARN específica del RSV para obtener nucleocápsides específicas del virus (NCs). Este protocolo muestra cómo superar la dificultad en la preparación de este complejo viral tradicionalmente desafiando del ribonucleoprotein.

Introduction

Los virus de ARN de sentido negativo no segmentado (NNS) incluyen muchos patógenos humanos significativos, como la rabia, el ébola y el virus sincitial respiratorio (RSV)1,2. El RSV es la principal causa de enfermedades respiratorias como la bronquiolitis y la neumonía en niños pequeños y adultos mayores en todo el mundo3. Actualmente, no hay vacunas efectivas o terapias antivirales disponibles para prevenir o tratar el RSV4. Como parte del ciclo de vida, el genoma del RSV sirve como la plantilla para la replicación por la ARN polimerasa dependiente del ARN del RSV para producir un antigenoma, que a su vez actúa como la plantilla para generar un genoma de progenie. Tanto el genoma como el antigenoma RNAs son totalmente encapsidados por la nucleoproteína (N) para formar las nucleocápsides (NCs)3. Debido a que los CN sirven como plantillas tanto para la replicación como para la transcripción por la ARSV polimerasa, el ensamblaje adecuado de NC es crucial para que la polimerasa obtenga acceso a las plantillas para la síntesis de ARN5. Curiosamente, basándose en los análisis estructurales de las polimerasas virales NNS, se presume que varias proteínas N se disocian transitoriamente de las NCs para permitir el acceso de la polimerasa y reenlazarse al ARN después de la síntesis de ARN6,7,8,9,10,11,12.

Actualmente, el ensayo de polimerización de ARN del RSV se ha establecido utilizando la polimerasa purificada del RSV en plantillas cortas de ARN desnudo13,14. Sin embargo, las actividades de la RSV polimerasa no alcanzan el óptimo, como se observa en los productos no procesivos y abortivos generados por la RSV polimerasa cuando se utilizan plantillas de ARN desnudo. La carencia del NC con el ARN virus-específico es una barrera primaria para la comprensión mecanicista adicional de la síntesis del ARN de RSV. Por lo tanto, el uso de una plantilla de ARN auténtica se convierte en una necesidad crítica para avanzar en el conocimiento fundamental de la síntesis de ARN del RSV. Las estructuras conocidas de las partículas similares a nucleocáps (NCLPs) del RSV y otros virus de ARN del NNS revelan que los ARN en los NCLPs son ARN celulares aleatorios o ARN genómicos virales promedio15,16,17,18,19. Juntos, el principal obstáculo es que N se une no específicamente a los RNAs celulares para formar NCLPs cuando N se sobreexpresa en las células huésped.

Para superar este obstáculo, establecimos un protocolo para obtener primero RNA-libre (N0)y ensamblar N0 con ARN genómico viral auténtico en NCLPs20. El principio de este protocolo es obtener una gran cantidad de N libre de ARN recombinante (N0)coexpresando N con una chaperona, el dominio N-terminal de la fosfoproteína del VSR (PNTD). El N0P purificado podría ser estimulado y ensamblado en NCLPs mediante la adición de oligos de ARN específicos del RSV, y durante el proceso de ensamblaje, la chaperona PNTD se desplaza tras la adición de oligos de ARN.

Aquí, detallamos un protocolo para la generación y el montaje de RSV ARN-específico NCs. En este protocolo, se describe la clonación molecular, la preparación de proteínas, el ensamblaje in vitro y la validación del ensamblaje complejo. Destacamos la estrategia de clonación para generar construcciones bi-cistrónicas para la coexpresión de proteínas para la clonación molecular. Para la preparación de proteínas, se describen los procedimientos de cultivo celular, extracción de proteínas, y la purificación del complejo proteico. A continuación, discutimos el método para el montaje in vitro de los NCs específicos de ARN del RSV. Finalmente, utilizamos la cromatografía de exclusión de tamaño (SEC) y la microscopía electrónica de manchas negativas (EM) para caracterizar y visualizar los NCLPs ensamblados.

Protocol

1. Clonación molecular NOTA: La clonación independiente de ligasa (LIC) se utilizó para hacer un plásmido de construcción de coexpresión bi-cistrónica del VSR. LIC es un método desarrollado a principios de la década de 1990, que utiliza la actividad 3′-5′ Exo de la ADN polimerasa T4 para crear voladizos con complementariedad entre el vector y el inserto de ADN21,22. Las construcciones se realizaron utilizando el…

Representative Results

Purificación de la proteína N0P libre de ARNCon este protocolo, se puede obtener un complejo heterodmérico soluble A gran escala RSV N0P. La longitud completa de la parte terminal N y N de las proteínas P se co-expresó con 10X His-Tag en la proteína N en E. coli. N0P fue purificado usando una columna del cobalto, un intercambio iónico, y una cromatografía de la exclusión del tamaño. N0P contiene tanto el terminal N de longitud completa co…

Discussion

Las estructuras conocidas de partículas similares a nucleópsides (NCLP) de los virus de ARN de sentido negativo no segmentado (NNS) muestran que los NCLPs ensamblados son el complejo N con ARN celulares del huésped cuando se sobreexpresan en sistemas de expresión bacterianos o eucariotas15,16,17,18,19. Estudios anteriores han intentado obtener el ARN libre…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los programas de investigación en el laboratorio Liang en Emory son apoyados por el Instituto Nacional de Ciencias Médicas Generales de los Estados Unidos (NIGMS), los Institutos Nacionales de Salud (NIH) bajo el número de premio R01GM130950 y el Fondo de Investigación inicial de la Facultad de Medicina de la Universidad de Emory. El autor reconoce a los miembros del laboratorio de Liang por su apoyo útil y su discusión crítica.

Materials

Agarose SIgma A9539-500G making construct using LIC method
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Unit Millipore UFC901024 concentrate the protein sample
Ampicillin sodium GOLD BIOTECHNOLOGY 5118.111317A antibiotic for cell culture
AseI NEB R0526S making construct using LIC method
Cobalt (High Density) Agarose Beads Gold Bio H-310-500 For purification of His-tag protein
Corning LSE Digital Dry Bath Heater CORNING 6885-DB Heate the sample
dCTP Invitrogen 10217016 making construct using LIC method
dGTP Invitrogen 10218014 making construct using LIC method
Glycerol Sigma G5516-4L making solution
HEPES Sigma H3375-100G making solution
HiTrap Q HP Sigma GE29-0513-25 Protein purification
Imidazole Sigma I5513-100G making solution
IPTG (Isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside) GOLD BIOTECHNOLOGY 1116.071717A induce the expression of protein
Microcentrifuge Tubes VWR 47730-598 for PCR
Misonix Sonicator XL2020 Ultrasonic Liquid Processor SpectraLab MSX-XL-2020 sonicator for lysing cell
Negative stain grids Electron Microscopy Sciences CF400-Cu-TH For making negative stain grids
New Brunswick Innova 44/44R eppendorf M1282-0000 Shaker for culturing the cell
Nonidet P 40 Substitute Sigma 74385-1L making solution
OneTaq DNA Polymerase NEB M0480L PCR
QIAquick Gel Extraction Kit QIAGEN 28706 Purify DNA
SSPI-HF NEB R3132S making construct using LIC method
Superose 6 Increase 10/300 GL Sigma GE29-0915-96 Protein purification
T4 DNA polymerase Sigma 70099-3 making construct using LIC method
Thermo Scientific Sorvall RC 6 Plus Centrifuge Fisher Scientific 36-101-0816 Centrifuge, highest speed 20,000 rpm
Trizma hydrochloride Sigma T3253-250G making solution
Uranyl Formate Electron Microscopy Sciences 22451 making negative stain solution

Referencias

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Citar este artículo
Gao, Y., Ogilvie, C., Raghavan, A., Von Hoffmann, C., Liang, B. Generation and Assembly of Virus-Specific Nucleocapsids of the Respiratory Syncytial Virus. J. Vis. Exp. (173), e62010, doi:10.3791/62010 (2021).

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