Questo protocollo copre un’analisi dettagliata della composizione del peptidoglicano utilizzando la spettrometria di massa per cromatografia liquida abbinata a software avanzati di estrazione delle caratteristiche e analisi bioinformatica.
Il peptidoglicano è un componente importante delle pareti cellulari batteriche e un bersaglio cellulare comune per gli antimicrobici. Sebbene gli aspetti della struttura del peptidoglicano siano abbastanza conservati in tutti i batteri, c’è anche una notevole variazione tra Gram-positivi / negativi e tra le specie. Inoltre, ci sono numerose varianti, modifiche o adattamenti noti al peptidoglicano che possono verificarsi all’interno di una specie batterica in risposta alla fase di crescita e / o stimoli ambientali. Queste variazioni producono una struttura altamente dinamica che è nota per partecipare a molte funzioni cellulari, tra cui la crescita / divisione, la resistenza agli antibiotici e l’evitamento della difesa dell’ospite. Per comprendere la variazione all’interno del peptidoglicano, la struttura complessiva deve essere scomposta nelle sue parti costitutive (note come muropeptidi) e valutata per la composizione cellulare complessiva. Peptidoglycomics utilizza la spettrometria di massa avanzata combinata con l’analisi dei dati bioinformatici ad alta potenza per esaminare la composizione del peptidoglicano nei minimi dettagli. Il seguente protocollo descrive la purificazione del peptidoglicano da colture batteriche, l’acquisizione di dati di intensità del muropeptide attraverso uno spettrometro di massa cromatografo liquido e l’analisi differenziale della composizione del peptidoglicano utilizzando la bioinformatica.
Il peptidoglicano (PG) è una caratteristica distintiva dei batteri che serve a mantenere la morfologia cellulare, fornendo supporto strutturale per proteine e altri componenti cellulari 1,2. La spina dorsale del PG è composta dall’acido N-acetil muramico (MurNAc) alternato β-1,4-e dalla N-acetil glucosamina (GlcNAc)1,2. Ogni MurNAc possiede un peptide corto legato al residuo ᴅ-lattile che può essere reticolato con peptidi adiacenti legati al disaccaride (Figura 1A,B). Questa reticolazione produce una struttura a maglia che comprende l’intera cellula ed è spesso indicata come sacculus (Figura 1C). Durante la sintesi di PG, i precursori vengono generati nel citoplasma e trasportati attraverso la membrana citoplasmatica dalle flippasi. I precursori sono successivamente incorporati nel PG maturo dagli enzimi transglicosilasi e transpeptidasi, che producono rispettivamente i legami glicosidici e peptidici3. Tuttavia, una volta assemblati, ci sono numerosi enzimi prodotti dai batteri che modificano e / o degradano il PG per svolgere una serie di processi cellulari, tra cui la crescita e la divisione. Inoltre, varie modifiche del PG hanno dimostrato di conferire adattamenti specifici per la deformazione, le condizioni di crescita e lo stress ambientale, che sono stati implicati nella segnalazione cellulare, nella resistenza antimicrobica e nell’evasione immunitaria dell’ospite4. Ad esempio, una modifica comune è l’aggiunta di un gruppo acetilico C6 sul MurNAc che conferisce resistenza limitando l’accesso ai legami glicani β-1,4 agli enzimi lisozima prodotti dall’ospite che degradano PG 4,5,6. Negli enterococchi, la sostituzione del terminale ᴅ-Ala della catena laterale peptidica con ᴅ-Lac conferisce una maggiore resistenza all’antimicrobico, vancomicina 7,8.
La procedura generale per l’isolamento e la purificazione del PG è rimasta relativamente invariata da quando è stata descritta negli anni 19609. Le membrane batteriche vengono sciolte attraverso il trattamento termico con SDS, seguito dalla rimozione enzimatica delle proteine legate, dei glicolipidi e del DNA rimanente. Il sacculus intatto purificato può essere successivamente digerito nei singoli componenti mediante idrolisi del legame β-1,4 tra GlcNAc e MurNAc. Questa digestione produce disaccaridi GlcNAc-MurNAc con eventuali modifiche strutturali e/o legami incrociati intatti e sono chiamati muropeptidi (Figura 1B).
L’analisi composizionale del PG è stata inizialmente condotta attraverso la separazione cromatografica liquida ad alta pressione (HPLC) per purificare ciascun muropeptide seguita dall’identificazione manuale dei muropeptidi10,11. Da allora questo è stato sostituito dalla spettrometria di massa tandem per cromatografia liquida (LC-MS), che aumenta la sensibilità di rilevamento e diminuisce il carico di lavoro manuale di purificazione di ogni singolo muropeptide. Tuttavia, la natura lunga e complessa dell’identificazione manuale dei muropeptidi è rimasta un fattore limitante, riducendo il numero di studi condotti. Negli ultimi anni con l’emergere di tecnologie “omiche”, l’estrazione automatizzata delle caratteristiche LC-MS è diventata uno strumento potente, consentendo una rapida rilevazione e identificazione di singoli composti in campioni complessi da set di dati molto grandi. Una volta identificate le caratteristiche, il software bioinformatico confronta statisticamente la variazione tra i campioni utilizzando l’analisi differenziale isolando anche minime differenze tra i complessi set di dati e visualizzandoli graficamente all’utente. L’applicazione di software di estrazione di caratteristiche per l’analisi della composizione PG ha appena iniziato ad essere esplorata 12,13,14 e accoppiata all’analisi bioinformatica 12. A differenza dell’analisi proteomica che beneficia dei database proteici prontamente disponibili che prevedono la frammentazione dei peptidi consentendo un’identificazione completamente automatizzata, attualmente non esiste una libreria di frammentazione per i peptidoglycomics. Tuttavia, l’estrazione delle caratteristiche può essere accoppiata con database strutturali noti e previsti per prevedere l’identificazione del muropeptide12. Qui presentiamo un protocollo dettagliato per l’uso dell’estrazione di caratteristiche basata su LC-MS combinata con una libreria di muropeptidi per l’identificazione automatizzata e l’analisi differenziale bioinformatica della composizione PG (Figura 2).
Questo protocollo descrive un metodo per purificare il peptidoglicano da colture batteriche, processo per il rilevamento di LC-MS e analizzare la composizione utilizzando tecniche bioinformatiche. Qui, ci concentriamo sui batteri Gram-negativi e sarà necessaria qualche leggera modifica per consentire l’analisi dei batteri Gram-positivi.
La preparazione dei muropeptidi è rimasta praticamente la stessa da quando è stata prodotta per la prima volta nel 1960 9,11,15.<sup…
The authors have nothing to disclose.
Gli autori desiderano ringraziare la dottoressa Jennifer Geddes-McAlister e il dottor Anthony Clarke per il loro contributo nel perfezionamento di questo protocollo. Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni operative del CIHR assegnate a C.M.K (PJT 156111) e da un NSERC Alexander Graham Bell CGS D assegnato a E.M.A. Le figure sono state create su BioRender.com.
Equipment | |||
C18 reverse phase column – AdvanceBio Peptide column (100 mm x 2.1 mm 2.7 µm) | Agilent | LC-MS data acquisition | |
Heating mantle controller, Optichem | Fisher | 50-401-788 | for 4% SDS boil |
Heating Mantle, 1000mL Hemispherical | Fisher | CG1000008 | for 4% SDS boil |
Incubator, 37°C | for sacculi purification and MS sample prep | ||
Leibig condenser, 300MM 24/40, | Fisher | CG121805 | for 4% SDS boil |
Lyophilizer | Labconco | for lyophilization of sacculi | |
Magentic stirrer | Fisher | 90-691-18 | for 4% SDS boil |
mass spectrometer Q-Tof model UHD 6530 | Aglient | LC-MS data acquisition | |
microcentrifuge filters, Nanosep MF 0.2 µm | Fisher | 50-197-9573 | cleanup of sample before MS injection |
Retort stand | Fisher | 12-000-102 | for 4% SDS boil |
Retort clamp | Fisher | S02629 | for 4% SDS boil |
round bottom flask – 1 liter pyrex | Fisher | 07-250-084 | for 4% SDS boil |
Sonicator model 120 | Fisher | FB120 | for sacculi purification |
Sonicator – micro tip | Fisher | FB4422 | for sacculi purification |
Ultracentrifuge | Beckman | sacculi wash steps | |
Ultracentrifuge bottles, Ti45 | Fisher | NC9691797 | sacculi wash steps |
Water supply | City | for water cooled condenser | |
Software | |||
Chemdraw | Cambridgesoft | molecular editor for muropeptide fragmentation prediction | |
Excel | Microsoft | viewing lists of annotated muropeptides, abundance, isotopic patterns, etc. | |
MassHunter Acquisition | Aglient | running QTOF instrument | |
MassHunter Mass Profiler Professional | Aglient | bioinformatic differential analysis | |
MassHunter Personal Compound Database and Library Manager | Aglient | muropeptide m/z MS database | |
MassHunter Profinder | Aglient | recursive feature extraction | |
MassHunter Qualitative analysis | Aglient | viewing MS and MS/MS chromatograms | |
Prism | Graphpad | Graphing software | |
Perseus | Max Plank Institute of Biochemistry | 1D annotation | |
Material | |||
Acetonitrile | Fisher | A998-4 | |
Ammonium acetate | Fisher | A637 | |
Amylase | Sigma-Aldrich | A6380 | |
Boric acid | Fisher | BP168-1 | |
DNase | Fisher | EN0521 | |
Formic acid | Sigma-Aldrich | 27001-500ML-R | |
LC-MS tuning mix – HP0321 | Agilent | G1969-85000 | |
Magnesium chloride | Sigma-Aldrich | M8266 | |
Magnesium sulfate | Sigma-Aldrich | M7506 | |
Mutanolysin from Streptomyces globisporus ATCC 21553 | Sigma-Aldrich | M9901 | |
Nitrogen gas (>99% purity) | Praxair | NI 5.0UH-T | |
Phosphoric acid | Fisher | A242 | |
Pronase E from Streptomyces griseus | Sigma-Aldrich | P5147 | |
RNase | Fisher | EN0531 | |
Sodium azide | Fisher | S0489 | |
Sodium borohydride | Sigma-Aldrich | 452890 | |
Sodium dodecyl sulfate (SDS) | Fisher | BP166 | |
Sodium hydroxide | Fisher | S318 | |
Sodium Phosphate (dibasic) | Fisher | S373 | |
Sodium Phosphate (monobasic) | Fisher | S369 | |
Stains-all | Sigma-Aldrich | E9379 |