여기에 제시된 자궁 전기화에서 사용하는 배아 페렛 뇌에서 유전자 조작을 수행하는 프로토콜이 있다. 이 방법은 생체 내의 신피질에서 신경 전구 세포를 표적으로 하는 것을 허용합니다.
배아 발달 중 생체 내에서 유전자 발현의 조작은 포유류 발달 중 개별 유전자의 역할을 분석할 때 선택하는 방법입니다. 자궁에서 전기화는 생체 내에서 배아 포유류 뇌에서 유전자 발현의 조작을 위한 핵심 기술이다. 페렛의 배아 신피질의 자궁 전포화, 작은 육식 생물에 대한 프로토콜이 여기에 제시된다. 페렛은 신피질 발달을 위한 모델로 점점 더 이용되고 있습니다, 그것의 신피질은 인간과 비인간적인 영장류에 또한 존재하는 해부학, 조직학, 세포 및 분자 특징의 시리즈를 전시하기 때문에, 마우스 또는 쥐와 같은 설치류 모형에 없습니다. 자궁에서 전기기는 배아일(E) 33, 페렛의 중증 신경 발생 단계에서 수행되었다. 자궁 전기기는 뇌의 측면 심실을 안감 신경 전구 세포를 대상으로합니다. 신경 발생 하는 동안, 이러한 전조 세포 다른 모든 신경 세포 유형을 발생. 본 작품은 E37, 산후일(P) 1 및 P16에서 의대표적인 결과 및 분석을 나타내며, 자궁 전기기화에서 각각 4, 9, 24일에 대응하는 것을 나타낸다. 초기 단계에서, 표적으로 한 세포의 자손은 각종 신경 선조 아형의 주로 이루어져 있는 반면, 나중에 대부분의 표지된 세포는 포스트 미토틱 뉴런입니다. 따라서, 자궁 에서 전기화는 다양한 유형의 신경 세포의 세포 및 분자 특징에 대한 유전 조작의 효과에 대한 연구를 가능하게한다. 다양한 세포 집단에 미치는 영향을 통해 자궁 전기 기화에서도 페렛 신피질의 조직학적 및 해부학적 특징을 조작하는 데 사용할 수 있습니다. 중요 한 것은, 이러한 모든 효과 급성 및 사용자에 의해 결정 된 지 각 측성 특이성으로 수행.
신피질은 포유류 뇌의 외부 시트와 더 높은 인지 기능1,,2,,3,,4,,5의시트이다. 배아 발달 중 생체 내에서 포유류 신피질에서 급성 유전적 조작을 달성하기 위해 바이러스 감염6 및 자궁전기기전7의두 가지 방법이 탐구되었다. 두 방법 모두 신구 세포의 효율적인 타겟팅을 허용하지만 몇 가지 제한으로 고통받습니다. 바이러스 감염에 비해 자궁 전기 포기의 주요 장점은 전기장의 방향을 조절하여 달성되는 신피질 내의 공간 특이성을 달성 할 수있는 능력입니다.
전기기는 시험관내 8에서세포로 DNA의 입력을 용이하게 하기 위해 처음 표시되었기 때문에, 생체 내에서 다양한 척추동물로 DNA를 전달하기 위해 적용되었다. 발달 신경과학에서, 마우스 신피질의 자궁 전기포기에서 2001년9,,10에서처음 보고되었다. 이 방법은 배아 뇌의 측면 심실에 DNA 혼합물을 주입하고 공간 정밀도7,,11을허용하는 트위저 전극을 사용하여 전기장의 후속 적용으로 구성된다. 자궁에서 전기화는 마우스 신피질에 내인성 또는 외토적으로 추가된 유전자의 발현을 조작하기 위해 핵산을 전달하기 위해 적용되었다. 중요한 진전은 최근에 마우스 신피질에서 자궁 전기화에서 CRISPR/Cas9 매개 게놈 편집의 방법론을 적용하여 (1) 후미토성뉴런(12,,13 및 신경 전구 세포14)및 (2) 게놈15 및 후성 유전체16 편집에서 유전자 중단을 수행하였다.
마우스에서 첫 번째 보고 후 곧, 자궁 에서 전기기화배쥐신피질(17,18)에18적용되었다. 비 설치류는 2012년19일,20일,20일, 작은 육식신페레의 자궁 전기기화에서 최초로 보고되기 전까지는어려움을유지했다. 그,이후, 페렛의 자궁 전기포기는 신경 전구및 뉴런(20,21,,22,,23)을라벨링하여 신피질 개발의 메커니즘을 연구하기 위해 적용되었으며, CRISPR/Cas9기술(24)의사용을 포함한 내인성 유전자의 발현을 조작하고, 자궁 내피유전자(21,22, 25)및 자궁내피유전자 를2121,22,25,인간 유전자를 전달함으로써26.26 더욱이, 페렛의 자궁 전기포공은 병리학적조건(27,,28)에서인간 신피질 발달의 특징을 해결하기 위해 사용되어 왔다.
신피질 발달의 맥락에서, 페렛을 마우스에 비해 모델 유기체로 사용하는 장점은 페렛이 인간과 같은 일련의 특징을 더 잘 재구성하기 때문입니다. 해부학 적 수준에서, 페렛은 인간및 대부분의 다른 영장류에도 존재하지만, 쥐 또는쥐에완전히 결석피질 접이식의 특징적인 패턴을 나타낸다4,29,,30,,31. 조직학적 수준에서 페렛은 내부 및 외부 지하 영역(ISVZ 및 OSVZ)으로 지칭되는 두 개의 뚜렷한 심실 발아 영역을 가지며,32,,33,내부섬유층(23)에의해 분리된다. 이러한 특징은 또한 인간을 포함하여 영장류와 공유되지만 마우스(34)는공유되지 않습니다. 페렛과 인간에서 ISVZ와 OSVZ는 풍부한 신경 전구 세포로 채워지며, 마우스의 하위 원반 영역 (SVZ)은 스파스 신경전구만 포함하는반면,32,,35,,36. 세포 수준에서, 페렛은,포유류 신피질34,,37,38의진화적 확장을 위한 도구로 간주되는 기저 또는 외부 방사형 glia(bRG 또는 oRG)라고 불리는 신경 전구체의 하위 형의 높은 비율을 나타낸다. bRG는 태아 인간 및 배아 페렛 신피질에서 이렇게 높게 풍부하지만 배아 마우스신피질(35,,36)에서는매우 드물다. 더욱이, 페렛 bRG는 마우스bRG(21)보다훨씬 우수한 인간 bRG와 유사한 형태학적 이질성을 나타낸다. 마지막으로, 분자 수준에서, 페렛 네오피질개발은 피질 접이식의 발달을 조절할 것으로 추정되는 태아 인간 신피질의 유전자 발현 패턴을 매우 유사하다는 것을나타낸다( 39).
페렛 bRG의 세포 생물학적 및 분자 특성은 인간 bRG와 유사한 매우 증식성 렌더링합니다. 이것은 확장되고 매우 복잡한 신피질34의뉴런 생산 및 개발의 증가 생산 결과. 이러한 특성은 페렛이마우스(26,,40)에서모델링할 수 없는 신피질 발달의 인간과 같은 특징을 연구하기 위한 우수한 모델 유기체를 만든다. 페렛을 모델 유기체로서 최대한 활용하기 위해 제시된 방법이 개발되었다. 그것은 유비쿼터스 프로모터, CAG의 통제하에 GFP (pGFP)를 표현하는 플라스미드를 가진 E33 페렛 배아의 자궁 전기화로 이루어져 있습니다. 전극배는 배아 또는 후산적으로 분석될 수 있다. 희생된 동물의 수를 줄이기 위해 여성 페렛(질)은 자군 절제술에 의해 살균되어 애완동물로 입양하도록 기부됩니다. 표적 배아가 배아 단계에서 수확되는 경우, 두 번째 수술이 수행되고 태아는 제왕 절개에 의해 제거되는 반면 질은 히스테리화됩니다. 표적 배아가 산후 단계에서 분석되는 경우, 새끼가 짜거나 희생된 후 질은 히스테리화됩니다. 따라서, 질의 자군 절제술에 대한 프로토콜도 제시된다.
페렛의 자궁 전기포화는 다른 방법에 대하여 장점과 단점을 갖는 중요한 기술이다. 이 방법에는 중요한 단계와 제한사항뿐만 아니라 잠재적 수정 및 향후 응용 프로그램을 염두에 두어야 합니다.
전기기또는,바이러스주사(35,42, 43)를통해 산후 페렛 신생아의 유전자 조작에 대한 빅터 보렐과 동료들의 선구적인 작업 이후, 페렛은 유…
The authors have nothing to disclose.
우리는 페렛과 J. Peychl및 빛 현미경 시설의 그의 팀을 위해 생물 의학 서비스 (BMS)의 전체 팀을 제공하는 뛰어난 지원을 위한 분자 세포 생물학 및 유전학의 막스 플랑크 연구소의 서비스 및 시설에 감사드립니다. 우리는 특히 뛰어난 수의학 지원에 대한 BMS에서 카트린 Reppe와 안나 Pfeffer와 페렛 수술을 지원하기위한 헛너 그룹에서 레이 Xing에 감사드립니다.
1ml syringe | BD | 309628 | Electroporation |
4-0 Vicryl suture | Ethicon | V392ZG | Surgery |
Aluminium spray | cp-pharma | 98017 | Surgery |
Amoxicilin+clavulanic acid (Synulox RTU) | WDT | 6301 | Surgery |
Cappilary holder | WPI | MPH6S12 | Electroporation |
Dexpanthenol Ointment solution | Bayer | 6029009.00.00 | Surgery |
Drape sheet 45x75cm | Hartmann | 2513052 | Surgery |
Electrode Tweezer, platinum plated 5mm | BTX | 45-0489 | Electroporation |
Electroporator | BTX | ECM830 | Electroporation |
Fast Green | Sigma | F7258-25G | Electroporation |
Ferret Mustela putorius furo | Marshall | NA | Experimental organism |
Fiber optic light source | Olympus | KL1500LCD | Electroporation |
Forceps | Allgaier instrumente | 08-033-130 | Surgery |
Forceps 3C-SA | Rubis Tech | 3C-SA | Surgery |
Forceps 55 | Dumostar | 11295-51 | Surgery |
Forceps 5-SA | Rubis Tech | 5-SA | Surgery |
Gauze swabs large | Hartmann | 401723 | Surgery |
Gauze swabs small | Hartmann | 401721 | Surgery |
GFAP antibody | Dako | Z0334 | Antibody |
GFP antibody | Aves labs | GFP1020 | Antibody |
Glass cappilaries (Borosilicate glass with filament, OD:1.2mm, ID: 0.69mm, 10cm length) | Sutter Instrument | BF120-69-10 | Electroporation |
Glucose | Bela-pharm | K4011-02 | Surgery |
Heat pad | Hans Dinslage | Sanitas SHK18 | Surgery |
Iodine (Betadine solution 100 mg/ml) | Meda | 997437 | Surgery |
Isofluran | CP | 21311 | Surgery |
Loading tips 20µl | Eppendorf | #5242 956.003 | Electroporation |
Metamizol | WDT | 99012 | Surgery |
Metzenbaum dissecting scissors | Aesculap | BC600R | Surgery |
Micropipette puller | Sutter Instrument | Model P-97 | Electroporation |
pCAGGS-GFP | NA | NA | From Kalebic et al., eLife, 2018 |
PCNA antibody | Millipore | CBL407 | Antibody |
pH3 antibody | Abcam | ab10543 | Antibody |
Scalpel | Aesculap | 294200104 | Surgery |
Shaver | Braun | EP100 | Surgery |
Sox2 antibody | R+D Systems | AF2018 | Antibody |
Surgical clamp 13cm | WDT | 27080 | Surgery |
Surgical double spoon (Williger) | WDT | 27232 | Surgery |
Surgical drape | WDT | 28800 | Surgery |
Surgical scissors small | FST | 14090-09 | Surgery |
Suturing needle holder | Aesculap | BM149R | Surgery |
Tbr2 antibody | Abcam | ab23345 | Antibody |
Transfer pipette 3ml | Fischer scientific | 13439108 | Surgery |
Water bath | Julabo | TW2 | Surgery |