Summary

Оценка окислительного стресса в биологических образцах с использованием анализа химически активных веществ тиобарбитуровой кислоты

Published: May 12, 2020
doi:

Summary

Целью анализа реакционноспособных веществ тиобарбитуровой кислоты является оценка окислительного стресса в биологических образцах путем измерения производства продуктов перекисного окисления липидов, в первую очередь малониальдегида, с использованием спектрофотометрии видимой длины волны при 532 нм. Описанный здесь способ может быть применен к сыворотке крови человека, клеточным лизатам и липопротеинам низкой плотности.

Abstract

Несмотря на свою ограниченную аналитическую специфичность и прочность, анализ реакционноспособных веществ тиобарбитуровой кислоты (TBARS) широко используется в качестве общей метрики перекисного окисления липидов в биологических жидкостях. Он часто считается хорошим показателем уровня окислительного стресса в биологическом образце при условии, что образец был правильно обработан и сохранен. Анализ включает реакцию продуктов перекисного окисления липидов, в первую очередь малондиальдегида (MDA), с тиобарбитуровой кислотой (TBA), что приводит к образованию аддуктов MDA-TBA2, называемых TBARS. TBARS дает красно-розовый цвет, который можно измерить спектрофотометрически при 532 нм. Анализ TBARS проводится в кислых условиях (рН = 4) и при 95 °C. Чистый MDA нестабилен, но эти условия позволяют высвобождать MDA из MDA bis (диметилацетал), который используется в качестве аналитического стандарта в этом методе. Анализ TBARS является простым методом, который может быть завершен примерно за 2 часа. Подготовка пробирных реагентов подробно описана здесь. Экономные исследователи могут использовать эти реагенты для нескольких экспериментов по низкой цене, а не покупать дорогой набор для анализа TBARS, который позволяет строить только одну стандартную кривую (и, следовательно, может быть использован только для одного эксперимента). Применимость этого анализа TBARS показана в сыворотке крови человека, липопротеинах низкой плотности и клеточных лизатах. Анализ является последовательным и воспроизводимым, и могут быть достигнуты пределы обнаружения 1,1 мкМ. Приведены рекомендации по использованию и интерпретации спектрофотометрического анализа TBARS.

Introduction

Перекисное окисление липидов – это процесс, в котором свободные радикалы, такие как активные формы кислорода и активные формы азота, атакуют двойные связи углерод-углерод в липидах, процесс, который включает в себя абстрагирование водорода из углерода и вставку молекулы кислорода. Этот процесс приводит к смешиванию сложных продуктов, включая липидные пероксиловые радикалы и гидропероксиды в качестве первичных продуктов, а также малониальдегид (MDA) и 4-гидроксиноненал в качестве преобладающих вторичных продуктов1.

MDA широко используется в биомедицинских исследованиях в качестве маркера перекисного окисления липидов из-за его легкой реакции с тиобарбитуровой кислотой (TBA). Реакция приводит к образованию MDA-TBA2, сопряжения, которое поглощается в видимом спектре при 532 нм и производит красно-розовый цвет2. Другие молекулы, полученные в результате перекисного окисления липидов, помимо MDA, также могут реагировать с TBA и поглощать свет при 532 нм, способствуя общему сигналу поглощения, который измеряется. Аналогичным образом, MDA может реагировать с большинством других основных классов биомолекул, потенциально ограничивая его доступность для реакции с TBA3,4. Таким образом, этот традиционный анализ просто считается измеряющим «реакционноспособные вещества тиобарбитуровой кислоты» или TBARS5.

При правильном применении и интерпретации анализ TBARS обычно считается хорошим показателем общего уровня окислительного стресса в биологическом образце6. К сожалению, как задокументировано Хоубнасабджафари и другими, анализ TBARS часто проводится и интерпретируется таким образом, чтобы облегчить сомнительные выводы3,4,7,8,9,10,11. Причины этого коренятся главным образом в преаналитических переменных, связанных с выборкой, и отсутствии прочности анализа, что запрещает, казалось бы, незначительные изменения в протоколе анализа без существенных изменений в результатах анализа1,7,12,13.

Преаналитические переменные, связанные с обработкой и хранением биообразцев (например, плазма крови, временно хранящаяся при -20 °C)14,15, могут оказать существенное влияние на результаты анализа TBARS16,17; Настолько, что результаты анализа TBARS не следует сравнивать в разных лабораториях, если это не оправдано явными межлабораторными аналитическими данными валидации. Эта рекомендация сродни тому, как обычно используются и интерпретируются западные пятна. Сравнение плотностей полос справедливо для внутри-блоттинговых и, возможно, внутрилабораторных исследований, но сравнение плотностей полос между лабораториями обычно считается некорректной практикой.

Некоторые исследователи предположили, что MDA, измеренный с помощью анализа TBARS, просто не соответствует аналитическим или клиническим критериям, требуемым для приемлемого биомаркера3,9,10,18,19. Действительно, если бы анализ не был разработан более 50 лет назад, он, вероятно, не получил бы широкого использования и молчаливой приемлемости, которые он имеет сегодня. Хотя существуют и другие анализы с большей аналитической чувствительностью, специфичностью и прочностью, используемые для определения окислительного стресса, анализ TBARS, основанный на поглощении при 532 нм, остается одним из наиболее часто используемых анализов для определения перекисного окисления липидов20 и, следовательно, оценки окислительного стресса.

Анализ TBARS можно найти только в виде дорогостоящего набора (более 400 долларов США), в котором инструкция не дает подробной информации о большинстве концентраций используемых реагентов. Кроме того, предоставленные реагенты могут быть использованы только для одного эксперимента, потому что только одна колориметрическая стандартная кривая может быть сделана на комплект. Это может быть проблематично для исследователей, которые намерены определить уровни окисления в нескольких образцах в разные моменты времени, потому что одна и та же стандартная кривая не может использоваться несколько раз. Следовательно, для нескольких экспериментов необходимо приобрести несколько наборов. В настоящее время, если не приобретен дорогостоящий комплект, нет подробного протокола, доступного для выполнения анализа TBARS. Некоторые исследователи в прошлом расплывчато описывали, как выполнять анализ TBARS21,22, но ни полностью подробный протокол, ни всеобъемлющее видео о том, как проводить анализ TBARS без дорогостоящего комплекта, не доступны в литературе.

Здесь мы сообщаем о подробной, аналитически проверенной методологии для целей о том, как выполнить анализ TBARS простым, воспроизводимым и недорогим способом. Изменения в перекисном окислении липидов сыворотки крови человека, лизатов HepG2 и липопротеинов низкой плотности при лечении ионами Cu(II) демонстрируются в качестве иллюстративных применений для анализа TBARS. Результаты показывают, что этот анализ TBARS является последовательным и воспроизводимым на ежедневной основе.

Protocol

Образцы сыворотки крови человека были получены от добровольцев по согласию с одобрения IRB и в соответствии с принципами, изложенными в Хельсинкской декларации. Образцы кодировались и деидентифицировались перед передачей в аналитическую лабораторию. 1. Пробоподготовка…

Representative Results

В кислых условиях (рН = 4) и при 95 °C малониальдегид (MDA) бис (диметилацеталь) дает MDA23. MDA и тесно связанные с ним химические конгенеры реагируют с двумя молекулами тиобарбитуровой кислоты (TBA) с образованием соединений, называемых реакционноспособными веществами тиобарбитуров…

Discussion

Несмотря на свои ограничения1,3,4,7,8,9,10,12,13,14,15,19 и недостаточную пригодность для сравнения между лабораториями, анализ TBARS является одним из <…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Исследование, представленное здесь, было частично поддержано Национальным институтом рака Национальных институтов здравоохранения под номером премии. R33 CA217702 и программа «Инициатива по максимальному развитию студентов» (IMSD). Содержание является исключительной ответственностью авторов и не обязательно представляет официальную точку зрения Национальных институтов здравоохранения.

Materials

1x Sterile PBS pH 7.4 1 L VWR, PA 101642–262 cell lysis reagent
50 mL self-standing centrifuge tube Corning, NY CLS430897 General material
96 well plate, Non-Treated, clear, with lid, Non-sterile Thermo Fisher Scientific, MA 280895 To measure absorbance
Amicon Ultra-0.5 100 kD centrifugal spin filter device Fisher Scientific, NH UFC510024 LDL purification
Caps for glass tubes Thermo Fisher Scientific, MA 14-930-15D for TBARS assay
Copper II Chloride SIGMA, MO 222011-250G to induce oxidation
Culture tubes, Disposable, with Screw-Cap Finish, Borosilicate Glass (13 x 100 mm) VWR, PA 53283-800 for TBARS assay
Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) ATCC, VA HB-8065 HepG2 cell media
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 1.5 mL eppendorf, NY 22363204 General material
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 2.0 mL Genesee Sceitific, CA 22363352 General material
Fetal Bovine Serum US Source Omega Scientific, CA FB-11 for cell culture
Glacial Acetic Acid SIGMA, MO 27225-1L-R TBARS Reagent
Halt Protease Inhibitor Cocktail (100x) Thermo Scientific, MA 87786 cell lysis reagent
HEPES SIGMA, MO H3375-250G LDL solvent
HepG2 Cells ATCC, VA HB-8065 Biological matrix prototype
Hydrocloric acid (HCl) Fisher Scientific, NH A144-212 cell lysis reagent
Legend Micro 17 Centrifuge Thermo Scientific, MA 75002431 General material
Low Density Lipoprotein, Human Plasma Athens Research & Technology, GA 12-16-120412 Biological matrix prototype
Magnetic Stir Bars, Octagon 6-Assortment VWR, PA 58948-025 General material
Malondialdehyde bis (dimethyl acetal) SIGMA, MO 8207560250 TBARS Standard
Multiskan Go Microplate Spectrophotometer Fisher Scientific, NH 51119200 To measure absorbance
NP-40 EMD Millipore Corp, MA 492016-100ML cell lysis reagent
Sodium Chloride SIGMA, MO S7653-1KG cell lysis reagent
Sodium dodecyl sulfate (SDS) SIGMA, MO 436143-100G TBARS Reagent
Sodium hydroxide SIGMA, MO 367176-2.5KG TBARS Reagent
SpeedVac Concentrator Thermo Scientific, MA SC250EXP For concentrating cell lysates
T-75 Flask, Tissue Culture Treated, 250 mL, w/filter cap USA Scientific, FL 658175 cell culture
Thiobarbituric Acid SIGMA, MO T5500-100G TBARS Reagent
TRIS base Fluka, GA 93362 cell lysis reagent
Trypsin (1x) VWR, PA 16777-166 To detach HepG2 cells

Referencias

  1. Tsikas, D. Assessment of lipid peroxidation by measuring malondialdehyde (MDA) and relatives in biological samples: Analytical and biological challenges. Analytical Biochemistry. 524, 13-30 (2017).
  2. Ohkawa, H., Ohishi, N., Yagi, K. Reaction of linoleic acid hydroperoxide with thiobarbituric acid. Journal of Lipid Research. 19 (8), 1053-1057 (1978).
  3. Khoubnasabjafari, M., Soleymani, J., Jouyban, A. Avoid Using Spectrophotometric Determination of Malondialdehyde as a Biomarker of Oxidative Stress. Biomarkers in Medicine. 12 (6), 551-554 (2018).
  4. Morales, M., Munné-Bosch, S. Malondialdehyde: Facts and artifacts. Plant Physiology. 180 (3), 1246-1250 (2019).
  5. Devasagayam, T. P. A., Boloor, K. K., Ramasarma, T. Methods for estimating lipid peroxidation: An analysis of merits and demerits. Indian Journal of Biochemistry and Biophysics. 40 (5), 300-308 (2003).
  6. Dasgupta, A., Klein, K. Methods for Measuring Oxidative Stress in the Laboratory. Antioxidants in Food, Vitamins and Supplements. , 19-40 (2014).
  7. Wade, C. R., van Rij, A. M. Plasma malondialdehyde, lipid peroxides, and the thiobarbituric acid reaction. Clinical Chemistry. 35 (2), 336-336 (1989).
  8. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Jouyban, A. Reliability of malondialdehyde as a biomarker of oxidative stress in psychological disorders. BioImpacts. 5 (3), 123-127 (2015).
  9. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Jouyban, A. Comments Concerning “Comparison of Airway and Systemic Malondialdehyde Levels for Assessment of Oxidative Stress in Cystic Fibrosis”. Lung. 193 (5), 867-868 (2015).
  10. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Vaez-Gharamaleki, J., Jouyban, A. Comments on “Salivary 8-hydroxy-2-deoxyguanosine, malondialdehyde, vitamin C, and vitamin E in oral pre-cancer and cancer: diagnostic value and free radical mechanism of action”. Clinical Oral Investigations. 20 (2), 395-396 (2016).
  11. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Jouyban, A. Comments on “An Investigation into the Serum Thioredoxin Superoxide Dismutase, Malondialdehyde, and Advanced Oxidation Protein Products in Patients with Breast Cancer”. Annals of Surgical Oncology. 24, 573-576 (2017).
  12. Azizi, S., et al. Effects of analytical procedures on the repeatability of malondialdehyde determinations in biological samples. Pharmaceutical Sciences. 23 (3), 193-197 (2017).
  13. Azizi, S., et al. A possible reason for the low reproducibility of malondialdehyde determinations in biological samples. Bioanalysis. 8 (21), 2179-2181 (2016).
  14. Wasowicz, W., Neve, J., Peretz, A. Optimized steps in fluorometric determination of thiobarbituric acid- reactive substances in serum: Importance of extraction pH and influence of sample preservation and storage. Clinical Chemistry. 39 (12), 2522-2526 (1993).
  15. Jentzsch, A. M., Bachmann, H., Fürst, P., Biesalski, H. K. Improved analysis of malondialdehyde in human body fluids. Free Radical Biology and Medicine. 20 (2), 251-256 (1996).
  16. Buege, J. A., Aust, S. D. Microsomal lipid peroxidation. Methods in Enzymology. 52, 302-310 (1978).
  17. Gutteridge, J. M. C. Free-Radical Damage to Lipids, Amino-Acids, Carbohydrates and Nucleic-Acids Determined by Thiobarbituric Acid Reactivity. International Journal of Biochemistry. 14 (7), 649-653 (1982).
  18. Khoubnasabjafari, M., Ansarin, K., Jouyban, A. Salivary malondialdehyde as an oxidative stress biomarker in oral and systemic diseases. J Dent Res Dent Clin Dent Prospects. 10 (2), 71-74 (2016).
  19. Halliwell, B., Whiteman, M. Measuring reactive species and oxidative damage in vivo and in cell culture: How should you do it and what do the results mean. British Journal of Pharmacology. 142 (2), 231-255 (2004).
  20. Lee, R., et al. Evaluating oxidative stress in human cardiovascular disease: methodological aspects and considerations. Current medicinal chemistry. 19 (16), 2504-2520 (2012).
  21. Morel, D. W., Hessler, J. R., Chisolm, G. M. Low density lipoprotein cytotoxicity induced by free radical peroxidation of lipid. Journal of Lipid Research. 24 (8), 1070-1076 (1983).
  22. Guzmán-Chozas, M., Vicario-Romero, I. M., Guillén-Sans, R. 2-thiobarbituric acid test for lipid oxidation in food: Synthesis and spectroscopic study of 2-thiobarbituric acid-malonaldehyde adduct. Journal of the American Oil Chemists Society. 75 (12), 1711-1715 (1998).
  23. Shibata, T., et al. Identification of a lipid peroxidation product as a potential trigger of the p53 pathway. Journal of Biological Chemistry. 28 (2), 1196-1204 (2006).
  24. Skoog, D. A., West, D. M., Holler, F. J., Crouch, S. R. Sampling, standardization, and calibration. Fundamentals of Analytical Chemistry. 9th ed. , 153-196 (2014).
  25. Skoog, D. A., Holler, F. J., Crouch, S. R. Introduction. Principles of Instrumental Analysis. 6th ed. , 1-24 (2007).
  26. Seibig, S., Van Eldik, R. Kinetics of [FeII(edta)] Oxidation by Molecular Oxygen Revisited. New Evidence for a Multistep Mechanism. Inorganic Chemistry. 36 (18), 4115-4120 (1997).
  27. Jeffs, J. W., et al. Delta-S-Cys-Albumin: A Lab Test that Quantifies Cumulative Exposure of Archived Human Blood Plasma and Serum Samples to Thawed Conditions. Molecular & Cellular Proteomics. 18 (10), 2121-2137 (2019).
  28. Yagi, K., Armstrong, D. Simple Assay for the Level of Total Lipid Peroxides in Serum or Plasma. Free Radical and Antioxidant Protocols. Methods in Molecular Biology. , 101-106 (1998).
  29. Bernheim, F., Bernheim, M. L. C., Wilbur, K. M. The reaction between thiobarbituric acid and the oxidation products of certain lipides. Journal of Biological Chemistry. 174 (1), 257-264 (1948).
  30. Wilbur, K. M., Bernheim, F., Shapiro, O. W. The thiobarbituric acid reagent as a test for the oxidation of unsaturated fatty acids by various agents. Archives of Biochemistry. 24 (2), 305-313 (1949).
  31. Kwon, T. W., Watts, B. M. Determination of malonaldehyde by ultraviolet spectrophotometry. Journal of Food Science. 28 (6), 627-630 (1963).
  32. Esterbauer, H., Schaur, F. J., Zollner, H. Chemistry and biochemistry of 4-hydroxynonenal, malonaldehyde and related aldehydes. Free Radical Biology & Medicine. 11 (1), 81-128 (1991).
  33. Dalle-Donne, I., Rossi, R., Colombo, R., Giustarini, D., Milzani, A. Biomarkers of oxidative damage in human disease. Clinical Chemistry. 52 (4), 601-623 (2006).
  34. Jentzsch, A. M., Bachmann, H., Fürst, P., Biesalski, H. K. Improved analysis of malondialdehyde in human body fluids. Free Radical Biology and Medicine. 20 (2), 251-256 (1996).
  35. Jo, C., Ahn, D. U. Fluorometric Analysis of 2-Thiobarbituric Acid Reactive Substances in Turkey. Poultry Science. 77 (3), 475-480 (1998).
  36. Tsikas, D., et al. Development, validation and biomedical applications of stable-isotope dilution GC-MS and GC-MS/MS techniques for circulating malondialdehyde (MDA) after pentafluorobenzyl bromide derivatization: MDA as a biomarker of oxidative stress and its relation to 15(S)-8-iso-prostaglandin F2α and nitric oxide (NO). Journal of Chromatography. B, Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 1019, 95-111 (2016).
  37. Barden, A. E., Mas, E., Croft, K. D., Phillips, M., Mori, T. A. Minimizing artifactual elevation of lipid peroxidation products (F 2-isoprostanes) in plasma during collection and storage. Analytical Biochemistry. 449 (1), 129-131 (2014).
  38. Jeffs, J. W., Ferdosi, S., Yassine, H. N., Borges, C. R. Ex vivo instability of glycated albumin: A role for autoxidative glycation. Archives of Biochemistry and Biophysics. 629, 36-42 (2017).
  39. Lee, D. M. Malondialdehyde in Stored Plasma. Biochemical and Biophysical Research Communications. 95 (4), 1663-1672 (1980).
  40. Tsikas, D., et al. Simultaneous GC-MS/MS measurement of malondialdehyde and 4-hydroxy-2-nonenal in human plasma: Effects of long-term L-arginine administration. Analytical Biochemistry. 524, 31-44 (2017).

Play Video

Citar este artículo
Aguilar Diaz De Leon, J., Borges, C. R. Evaluation of Oxidative Stress in Biological Samples Using the Thiobarbituric Acid Reactive Substances Assay. J. Vis. Exp. (159), e61122, doi:10.3791/61122 (2020).

View Video