Summary

Поколение олигодендроцитов и олигодендроцитов-кондиционированных средних для совместно-культурных экспериментов

Published: February 09, 2020
doi:

Summary

В этом виде мы демонстрируем эффективный метод очистки олигодендроцитов и производства олигодендроцитов, которые могут быть использованы для совместно-культурных экспериментов.

Abstract

В центральной нервной системе олигодендроциты хорошо известны своей ролью в аксонной миелинации, что ускоряет распространение потенциалов действия через солейную проводимость. Кроме того, все большее число сообщений свидетельствуют о том, что олигодендроциты взаимодействуют с нейронами за пределами миелинации, в частности, за счет секреции растворимых факторов. Здесь мы представляем подробный протокол, позволяющий очищать олигодендроглиальные линии клеток от глиальных клеточных культур, также содержащих астроциты и микроглиальные клетки. Метод опирается на ночь встряхивания при 37 градусов по Цельсию, что позволяет селективного отряда надлежащих олигодендроглиальных клеток и микроглиальных клеток, а также ликвидации микроглии дифференциальной сливки. Затем мы описываем культуру олигодендроцитов и производство олигодендроцитов кондиционированной среды (OCM). Мы также предоставляем кинетику лечения OCM или олигодендроцитов дополнение к очищенным гиппокампа нейронов в совместной культуры экспериментов, изучение олигодендроцитов нейронов взаимодействий.

Introduction

Олигодендроциты (Ол) являются глиальными клетками центральной нервной системы (ЦНС), которые генерируют миелин, обертывающий вокруг аксонов. Ол сходят на из олигодендроцитов клеток-предшественников (ОПК), которые размножаются в желудочковых зонах эмбриональной ЦНС, а затем мигрируют и дифференцируются в полностью зрелые Ол (т.е. миелин-образующие клетки)1. OPCs в изобилии во время раннего развития, но и сохраняются во взрослом мозге, где они представляют собой основные пролиферативной популяции клеток2. Один OL ensheathes несколько аксонов в невозбудимых разделов (т.е. межузлов), и край каждого цикла миелина прикрепляется к аксон формирования паранодального домена, который имеет решающее значение для изоляционных свойств миелина1,3. Между паранодами находятся небольшие немиелинированные зазоры, называемые узлами Ранвье. Эти узлы богаты натриевыми каналами напряжения (Nav), что позволяет регенерацию и быстрое распространение потенциалов действия черезсолей4. Это плотное взаимодействие также позволяет аксональной энергетической поддержки через поглощение нейронов лактата от OLs5,6.

Созревание олигодендроглиальных линий клеток и процесс миелинизации жестко регулируются их взаимодействиями с нейронами7. Действительно, OLs и OPCs, также названные ng2 клетки, выражают блок приемнок для нейротрансмиттеров, и могут получать вход от возбуждающих и ингибирующих нейронов, позволяющ им чувствовать деятельность нейронов которая может вызвать их пролиферацию and/or дифференциацию в миелинационные клетки2. В свою очередь, OPCs/OLs выделяют микровезики и белки во внеклеточное пространство, которое в одиночку или синергетически посреднические нейромодуляционные и нейропротекторные функции8,9,10,11,12. Тем не менее, молекулярные механизмы, контролирующие несколько режимов взаимодействия между олигодендроглиальными линейными клетками и нейронами, еще предстоит полностью расшифровать.

Кроме того, в нескольких патологических условиях ЦНС, OLs в первую очередь страдают, тем самым нарушая их взаимодействие с нейронами. Например, при рассеянном склерозе (МС) неврологическая дисфункция вызвана очаговой демиелинизнацией в ЦНС, вторичной потерей Олс, которая может привести к повреждению аксонального аксоналят и связанному с ним накоплению инвалидности. Ремелинизацию может иметь место, хотя и недостаточно в большинстве случаев13. Прогресс, достигнутый в последнее десятилетие в связи с развитием иммунотерапии, снизил скорость рецидивов, однако содействие ремиелинизации остается на сегодняшний день неудовлетворенной необходимостью. Таким образом, более глубокое понимание роли, функций и влияний ОЛ представляет особый интерес для разработки новых методов лечения широкого спектра условий ЦНС.

Здесь мы описываем методы очищения Ол и культуры. Это позволяет точно изучить внутренние механизмы, регулирующие их развитие и биологию. Кроме того, такие высокообогащенные культуры ОЛ позволяют производство олигодендроцитов-кондиционированной среды (OCM), которые могут быть добавлены к очищенной нейронных культур, чтобы получить представление о влиянии OLs-секретных факторов на нейрональной физиологии и связи. Кроме того, мы описываем, как внедрить систему совместной культуры in vitro, где очищенные олигодендроциты и нейроны объединяются вместе, что позволяет решать механизмы, регулирующие (ре) миелинизацию.

Protocol

Уход и использование крыс в этом эксперименте соответствует институциональной политике и руководящим принципам (UPMC, INSERM и Директива Совета Европейского сообщества 86/609/EEC). Для стандартного помета из 12 щенков установлен следующий протокол. 1. Подготовка колб (5 мин) <p class="j…

Representative Results

В этом протоколе, OL линии клеток очищаются от глиальных культур, стряхивая астроцитов и микроглии. Чистоту и фенотипическое исследование OL-культур можно оценить с помощью иммунодефицита с глиальными маркерами15. Анализ экспрессии различных маркеров пока?…

Discussion

Здесь мы предоставляем подробный протокол для получения высокообогащенных олигодендроглиальных клеточных культур из смешанных глиальных культур, адаптированных из ранее опубликованного метода16, и последующего производства OL-кондиционированной среды. Этот метод встря?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы поблагодарить Реми Ронзано за мудрый совет по редактированию рукописей. Эта работа финансировалась ICM, INSERM, грантом фонда ARSEP NSF и ценой Буве-Лабруйер.

Materials

5-fluorodeoxyuridine Sigma F0503
B27 supplement ThermoFisher 17504044
D-(+)-Glucose solution Sigma G8769
DNase (Deoxyribonuclease I) Worthington LS002139
Dulbecco's Modified Eagle Medium ThermoFisher 31966021
Ethanol 100% Sigma 32221-M
Ethanol 70% VWR Chemicals 83801.360
Fetal Calf Serum ThermoFisher 10082147
L-cysteine Sigma C7352
Neurobasal ThermoFisher 21103049
Papain Worthington LS003126
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher 15140122
Phosphate Buffered Saline without calcium and magnesium ThermoFisher A1285601
Polyethylenimine(PEI) Sigma P3143
Tetraborate decahydrate Sigma B9876
Trypsin Sigma Sigma
Uridine Sigma U3750
Bottenstein-Sato (BS) media
apo-Transferrin human Sigma T1147
BSA (Bovine Serum Albumin) Sigma A4161
Dulbecco's Modified Eagle Medium ThermoFisher 31966021
Insulin Sigma I5500
PDGF Peprotech AF-100-13A
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher 15140122
Progesterone Sigma P8783
Putrescine dihydrochloride Sigma P5780
Sodium selenite Sigma S5261
T3 (3,3',5-Triiodo-L-thyronine sodium salt) Sigma T6397
T4 (L-Thyroxine) Sigma T1775
Co-culture media
apo-Transferrin human Sigma T1147
B27 supplement ThermoFisher 17504044
Biotin Sigma B4639
BSA (Bovine Serum Albumin) Sigma A4161
Ceruloplasmin Sigma 239799
Dulbecco's Modified Eagle Medium ThermoFisher 31966021
Hydrocortisone Sigma H4001
Insulin Sigma I5500
N-Acetyl-L-cysteine Sigma A8199
Neurobasal ThermoFisher 21103049
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher 15140122
Progesterone Sigma P8783
Putrescin Sigma P5780
Recombinant Human CNTF Sigma 450-13
Sodium selenite Sigma S5261
T3 (3,3',5-Triiodo-L-thyronine sodium salt) Sigma T6397
Vitamin B12 Sigma V6629
Tools
0.22 µm filter Sartorius 514-7010
1 mL syringe Terumo 1611127
100 mm Petri dish Dutscher 193100
15 mL tube Corning Life Science 734-1867
50 mL tube Corning Life Science 734-1869
60 mm Petri dish Dutscher 067003
70 µm filter Miltenyi Biotec 130-095-823
Binocular microscope Olympus SZX7
Curved forceps Fine Science Tools 11152-10
Fine forceps Fine Science Tools 91150-20
Large surgical scissors Fine Science Tools 14008-14
Scalpel Swann-morton 233-5528
Shaker Infors HT
Small surgical scissors Fine Science Tools 91460-11
Small surgical spoon Bar Naor Ltd BN2706
T150 cm2 flask with filter cap Dutscher 190151
Animal
P2 Wistar rat Janvier RjHAn:WI

Referencias

  1. Zalc, B. The acquisition of myelin: a success story. Novartis Foundation Symposium. 276, 15-21 (2006).
  2. Habermacher, C., Angulo, M. C., Benamer, N. Glutamate versus GABA in neuron-oligodendroglia communication. Glia. 67 (11), 2092-2106 (2019).
  3. Sherman, D. L., Brophy, P. J. Mechanisms of axon ensheathment and myelin growth. Nature Reviews. Neuroscience. 6 (9), 683-690 (2005).
  4. Freeman, S. A., Desmazières, A., Fricker, D., Lubetzki, C., Sol-Foulon, N. Mechanisms of sodium channel clustering and its influence on axonal impulse conduction. Cellular and molecular life sciences: CMLS. 73 (4), 723-735 (2016).
  5. Lee, Y., et al. Oligodendroglia metabolically support axons and contribute to neurodegeneration. Nature. 487 (7408), 443-448 (2012).
  6. Nave, K. A. Myelination and the trophic support of long axons. Nature Reviews. Neuroscience. 11 (4), 275-283 (2010).
  7. Monje, M. Myelin Plasticity and Nervous System Function. Annual Review of Neuroscience. 41, 61-76 (2018).
  8. Birey, F., et al. Genetic and Stress-Induced Loss of NG2 Glia Triggers Emergence of Depressive-like Behaviors through Reduced Secretion of FGF2. Neuron. 88 (5), 941-956 (2015).
  9. Frühbeis, C., et al. Neurotransmitter-triggered transfer of exosomes mediates oligodendrocyte-neuron communication. PLoS Biology. 11 (7), e1001604 (2013).
  10. Jang, M., Gould, E., Xu, J., Kim, E. J., Kim, J. H. Oligodendrocytes regulate presynaptic properties and neurotransmission through BDNF signaling in the mouse brainstem. eLife. 8, (2019).
  11. Sakry, D., et al. Oligodendrocyte precursor cells modulate the neuronal network by activity-dependent ectodomain cleavage of glial NG2. PLoS Biology. 12 (11), e1001993 (2014).
  12. Sakry, D., Yigit, H., Dimou, L., Trotter, J. Oligodendrocyte precursor cells synthesize neuromodulatory factors. PloS One. 10 (5), e0127222 (2015).
  13. Stadelmann, C., Timmler, S., Barrantes-Freer, A., Simons, M. Myelin in the Central Nervous System: Structure, Function, and Pathology. Physiological Reviews. 99 (3), 1381-1431 (2019).
  14. Freeman, S. A., et al. Acceleration of conduction velocity linked to clustering of nodal components precedes myelination. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (3), E321-E328 (2015).
  15. Baumann, N., Pham-Dinh, D. Biology of oligodendrocyte and myelin in the mammalian central nervous system. Physiological Reviews. 81 (2), 871-927 (2001).
  16. McCarthy, K. D., de Vellis, J. Preparation of separate astroglial and oligodendroglial cell cultures from rat cerebral tissue. The Journal of Cell Biology. 85 (3), 890-902 (1980).
  17. Dean, J. M., et al. Strain-specific differences in perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human. Developmental Neuroscience. 33 (3-4), 251-260 (2011).
  18. Domingues, H. S., Portugal, C. C., Socodato, R., Relvas, J. B., Astrocyte, Oligodendrocyte, Astrocyte, and Microglia Crosstalk in Myelin Development, Damage, and Repair. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 4, 71 (2016).
  19. Klinghoffer, R. A., Hamilton, T. G., Hoch, R., Soriano, P. An allelic series at the PDGFalphaR locus indicates unequal contributions of distinct signaling pathways during development. Developmental Cell. 2 (1), 103-113 (2002).
  20. Spassky, N., et al. The early steps of oligodendrogenesis: insights from the study of the plp lineage in the brain of chicks and rodents. Developmental Neuroscience. 23 (4-5), 318-326 (2001).
  21. Moyon, S., et al. Demyelination Causes Adult CNS Progenitors to Revert to an Immature State and Express Immune Cues That Support Their Migration. Journal of Neuroscience. 35 (1), 4-20 (2015).
  22. Gardner, A., Jukkola, P., Gu, C. Myelination of rodent hippocampal neurons in culture. Nature Protocols. 7 (10), 1774-1782 (2012).
  23. Thetiot, M., et al. An alternative mechanism of early nodal clustering and myelination onset in GABAergic neurons of the central nervous system. bioRxiv. , 763573 (2019).
  24. Dubessy, A. L., et al. Role of a Contactin multi-molecular complex secreted by oligodendrocytes in nodal protein clustering in the CNS. Glia. 67 (12), 2248-2263 (2019).
  25. Barateiro, A., Fernandes, A. Temporal oligodendrocyte lineage progression: in vitro models of proliferation, differentiation and myelination. Biochimica Et Biophysica Acta. 1843 (9), 1917-1929 (2014).
  26. Thetiot, M., Ronzano, R., Aigrot, M. S., Lubetzki, C., Desmazières, A. Preparation and Immunostaining of Myelinating Organotypic Cerebellar Slice Cultures. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (145), (2019).
  27. Mannioui, A., Zalc, B. Conditional Demyelination and Remyelination in a Transgenic Xenopus laevis. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.). 1936, 239-248 (2019).

Play Video

Citar este artículo
Mazuir, E., Dubessy, A., Wallon, L., Aigrot, M., Lubetzki, C., Sol-Foulon, N. Generation of Oligodendrocytes and Oligodendrocyte-Conditioned Medium for Co-Culture Experiments. J. Vis. Exp. (156), e60912, doi:10.3791/60912 (2020).

View Video