Summary

Evaluering av T Follikulære hjelperceller og germinal senterrespons under influensa A-virusinfeksjon hos mus

Published: June 27, 2020
doi:

Summary

Dette papiret beskriver protokoller for evaluering av Tfh og GC B respons i musemodell av influensavirusinfeksjon.

Abstract

T Follicular Helper (Tfh) celler er en uavhengig CD4+ T celle delsett spesialisert på å gi hjelp for germinal center (GC) utvikling og generering av høy affinitet antistoffer. Ved influensavirusinfeksjon induseres robuste Tfh- og GC B-celleresponser for å lette effektiv virusutryddelse, noe som gir en kvalifisert musemodell for Tfh-assosiert studie. I dette papiret beskrev vi protokoller ved påvisning av grunnleggende Tfh-assosiert immunrespons under influensavirusinfeksjon hos mus. Disse protokollene inkluderer: intranasal inokulasjon av influensavirus; flytcytometri farging og analyse av polyklonale og antigenspesifikke Tfh-celler, GC B-celler og plasmaceller; immunofluorescence påvisning av GCer; immunosorberende analyse (ELISA) av influensavirusspesifikt antistoff i serum. Disse analysene kvantifiserer i utgangspunktet differensieringen og funksjonen til Tfh-celler i influensavirusinfeksjon, og gir dermed hjelp til studier i å belyse differensieringsmekanisme og manipulasjonsstrategi.

Introduction

I det siste tiåret har mange studier vært fokusert på den nylig identifiserte CD4+ T celleundersett, Tfh celle undergruppe, for sine viktige roller i germinal center (GC) B utvikling. B cellelymfom 6 (Bcl6), som hovedsakelig betraktes som en genrepressor, er den lineagedefinerende faktoren til Tfh-celler for bevis på at ektopisk uttrykk for Bcl6 er tilstrekkelig til å drive Tfh differensiering mens mangel på Bcl6 resulterer i forsvunnet Tfh differensiering1,2,3. I motsetning til andre CD4+ T hjelper undergrupper som utfører sin effektorfunksjon ved migrering til betennelsesstedene, gir Tfh-celler B-cellehjelp hovedsakelig i B-cellefollikelsonen av milt og lymfeknute. Samtidige molekyler ICOS og CD40L, spiller betydelige roller i samspillet mellom Tfh og GC B-celler. Under Tfh differensiering overfører ICOS nødvendige signaler fra kognate B-celler og fungerer også som en reseptor som mottar migrasjonssignaler fra tilskuer B-celler for B-cellesonelokalisering 4,5. CD40L er en mediator av signaler fra Tfh celler for B-celler spredning og overlevelse6. En annen faktor som spiller lignende rolle som CD40L er cytokin IL21, som hovedsakelig utskilles av Tfh-celler. IL21 regulerer direkte GC B celler utvikling og produksjon av høy affinitet antistoffer, men dens rolle i Tfh differensiering er fortsatt kontroversiell7,8. PD-1 og CXCR5, som nå brukes oftest i å identifisere Tfh-celler i flytcytometrianalyse, spiller også betydelige roller i differensieringen og funksjonen til dette delsettet. CXCR5 er reseptoren for B celle follikulær chemokin og medierer lokalisering av Tfh celler i B cellesekkene9. PD-1 er nå identifisert for ikke bare å ha follikulær veiledningsfunksjon, men overfører også kritiske signaler i prosessen med GC B-cellers affinitet modning10. Basert på disse funnene kan evaluering av uttrykket av disse molekylene i utgangspunktet gjenspeile modningen og funksjonen til Tfh-celler.

GC er en indusert forbigående mikroanatomiisk struktur i sekundære lymfoide organer og svært avhengig av Tfh-celler, og dermed være en perfekt avlesning for å evaluere Tfh-respons. I GC, etter å ha mottatt signaler mediert av cytokiner og samtidig stimulerende molekyler, er B-celler gjenstand for klasseveksling og somatisk hypermutasjon for å generere høyaffinitetsantistoffer11. Differensial antistoff klasseveksling skjer i differensial cytokin nisje, der IL4 og IL21 indusere IgG1 klasse bytte mens IFNγ induserer IgG2 klasse bytte12. Plasmaceller er produsenter av utskillede antistoffer og er terminalt differensierte celler. Som Tfh-celler er utvikling av B-celler i GC forbundet med dynamisk uttrykk for mange betydelige molekyler. Basert på den nåværende studien kan GC B-celler identifiseres som B220+PNA+Fas+ eller B220+GL7+Fas + cellerog plasmaceller, sammenlignet med deres forløpere, nedregulere uttrykk for B220 og overgulere CD138 uttrykk13. Des des, begge disse egenskapene kan oppdages i flyt cytometri og immunofluorescence analyse, og dermed være hensiktsmessig evaluering av GC respons.

Robuste cellulære og humorale responser induseres i influensavirusinfeksjon, med Tfh- og Th1-celler som dominerer CD4+ T-cellerespons14, noe som gjør det til en perfekt modell for Tfh-cellerdiensieringsstudie. Influensa A/Puerto Rico/8/34 H1N1(PR8), som er en vanlig mustilpasset stamme, brukes ofte i denne studien14,15,16. Her beskriver vi noen grunnleggende protokoller for Tfh studierelevante analyser i influensavirusinfeksjon: 1) intranasal inokulasjon av PR8-virus; 2) antigenspesifikke Tfh-celler, GC B og plasmaceller og IL21-deteksjon med strømningscytometri; 3) histologisk visualisering av GC; 4) påvisning av antigenspesifikt antistofftiter i serum med ELISA. Disse protokollene gir de nødvendige teknikkene for nye forskere i Tfh-assosiert studie.

Protocol

Dyreforsøk ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee of Institut Pasteur i Shanghai, Kina. Alle forsøkene ble utført basert på institusjonelle dyrepleie- og brukskomité-godkjente dyreprotokoller. MERK: Virusinfeksjon av mus og isolering av organer bør utføres under ABSL2 tilstand. 1. Inokulasjon av PR8 influensavirus og registrering av musvekt Forbered 8 uker gamle hann C57BL/6 mus for infeksjon i ABSL2-rommet….

Representative Results

Karakterisering av musmorbiditet i influensavirusinfeksjonEtter influensavirusinfeksjon er mus mindre aktive og anorektiske på grunn av sykdom, noe som gjenspeiles av alvorlig vekttap, et vanlig symptom for å overvåke musens sykelighet19. Som vist i figur 1abegynte PR8 virusinfeksjonsmus å gå ned i vekt på dag 6, nådde det høyeste tapsnivået på dag 8 og gikk tilbake til startnivået på dag 10. Som forventet ble vekttap…

Discussion

På grunn av spesialiserte roller i å gi B-celle hjelp for å generere høy affinitet antistoffer, Tfh celler har blitt grundig studert i mekanismene for differensiering og manipulasjon for å gi nye strategier for vaksine design. Influensavirusinfeksjon induserer kraftige Tfh- og GC B-celler, og er dermed en passende modell for dette forskningsfeltet. I denne artikkelen beskrev vi protokoller for influensavirusinfeksjon ved intranasal inokulasjon, evaluering av Tfh-assosiert respons ved strømningscytometri, immunofluo…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker stabene i flow cytometri anlegget, ABSL2 anlegget og SPF dyr anlegget i Institut Pasteur of Shanghai for deres tekniske hjelp og råd. Dette arbeidet ble støttet av følgende tilskudd: Strategic Priority Research Program av Det kinesiske vitenskapsakademiet (XDB29030103), National Key R&D Program of China (2016YFA0502202), National Natural Science Foundation of China (31570886).

Materials

Immunostaining of Tfh cells, NP-specific Tfh cells and Bcl-6
37% formaldehyde Sigma F1635
Anti-CD16/32 mouse Thermo Fisher Scientific 14-0161-86
APC-conjugated-IAbNP311-325 MHC class II tetramer NIH
Bcl-6 PE Biolegend 358504 clone:7D1
Biotin-CXCR5 Thermo Fisher Scientific 13-7185-82 clone: SPRCL5
CD4 Percp-eFluor 710 Thermo Fisher Scientific 46-0041-82 clone:GK1.5
CD44 eVolve 605 Thermo Fisher Scientifi 83-0441-42 clone:IM7
CD44 FITC Thermo Fisher Scientifi 11-0441-82 clone:IM7
CD62L FITC BD Pharmingen 553150 clone:MEL-14
ICOS BV421 Biolegend 564070 clone:7E.17G9
PD1 PE/Cy7 Biolegend 135216 clone:29F.1A12
Streptavidin BV421 BD Pharmingen 563259
Streptavidin PE BD Pharmingen 554081
Intracelluar staining of IL21
37% formaldehyde Sigma F1635
anti-human IgG Jackson ImmunoResearch Laboratories 109-605-098
Brefeldin A Sigma B6542
human FCc IL-21 receptor R&D System
ionomycin Sigma I0634
Live/Dead Fixable Aqua Dead Cell staining kit Thermo Fisher Scientific L34966
PMA Sigma P1585
Saponin MP 102855
GC B and plasma cells staining
B220 APC Thermo Fisher Scientific 17-0452-81 clone:RA3-6B2
CD138 PE BD Pharmingen 561070 clone:281-2
CD95 (FAS) PE/Cy7 BD Pharmingen 557653 clone:Jo2
IgD eFluor 450 Thermo Fisher Scientific 48-5993-82 clone:11-26c
PNA FITC Sigma L7381
Assay of HA-specific antibody titer with ELISA
PR8-HA Sino Biological 11684-V08H
BSA SSBC
Goat anti mouse Ig (SBA Clonotyping System-HRP) SouthernBiotech 5300-05
Goat anti mouse IgM (SBA Clonotyping System-HRP) SouthernBiotech 5300-05
Goat anti mouse IgG1 (SBA Clonotyping System-HRP) SouthernBiotech 5300-05
Goat anti mouse IgG2b (SBA Clonotyping System-HRP) SouthernBiotech 5300-05
Goat anti mouse IgG2c (SBA Clonotyping System-HRP) SouthernBiotech 5300-05
TMB Substrate Reagent Set BD Pharmingen 555214
Histology
Alexa Fluor 555-Goat-anti rat IgG Life Technology A21434
anti-mouse IgD Biolegend 405702
biotinylated PNA Vector laboratories B-1075
dilute Alexa Fluor 488-streptavidin Life Technology S11223
normal goat serum SouthernBiotech 0060-01
Pro-long gold antifade reagent Thermo Fisher Scientific P3630
STREPTAVIDIN/BIOTIN blocking kit Vector laboratories SP-2002

Referencias

  1. Johnston, R. J., et al. Bcl6 and Blimp-1 are reciprocal and antagonistic regulators of T follicular helper cell differentiation. Science. 325 (5943), 1006-1010 (2009).
  2. Nurieva, R. I., et al. Bcl6 mediates the development of T follicular helper cells. Science. 325 (5943), 1001-1005 (2009).
  3. Yu, D., et al. The transcriptional repressor Bcl-6 directs T follicular helper cell lineage commitment. Immunity. 31 (3), 457-468 (2009).
  4. Pedros, C., et al. A TRAF-like motif of the inducible costimulator ICOS controls development of germinal center TFH cells via the kinase TBK1. Nature Immunology. 17 (7), 825-833 (2016).
  5. Xu, H., et al. Follicular T-helper cell recruitment governed by bystander B cells and ICOS-driven motility. Nature. 496 (7446), 523-527 (2013).
  6. Lee, S. K., et al. B cell priming for extrafollicular antibody responses requires Bcl-6 expression by T cells. The Journal of Experimental Medicine. 208 (7), 1377-1388 (2011).
  7. Zotos, D., et al. IL-21 regulates germinal center B cell differentiation and proliferation through a B cell-intrinsic mechanism. The Journal of Experimental Medicine. 207 (2), 365-378 (2010).
  8. Vogelzang, A., et al. A fundamental role for interleukin-21 in the generation of T follicular helper cells. Immunity. 29 (1), 127-137 (2008).
  9. Ansel, K. M., et al. A chemokine-driven positive feedback loop organizes lymphoid follicles. Nature. 406 (6793), 309-314 (2000).
  10. Shi, J., et al. PD-1 Controls Follicular T Helper Cell Positioning and Function. Immunity. 49 (2), 264-274 (2018).
  11. Methot, S. P., Di Noia, J. M. Molecular Mechanisms of Somatic Hypermutation and Class Switch Recombination. Advanced ImmunoChemical. 133, 37-87 (2017).
  12. Crotty, S. Follicular helper CD4 T cells (TFH). Annual Review of Immunology. 29, 621-663 (2011).
  13. Calame, K. L. Plasma cells: finding new light at the end of B cell development. Nature Immunology. 2 (12), 1103-1108 (2001).
  14. Yoo, J. K., Fish, E. N., Braciale, T. J. LAPCs promote follicular helper T cell differentiation of Ag-primed CD4+ T cells during respiratory virus infection. The Journal of Experimental Medicine. 209 (10), 1853-1867 (2012).
  15. Leon, B., Bradley, J. E., Lund, F. E., Randall, T. D., Ballesteros-Tato, A. FoxP3+ regulatory T cells promote influenza-specific Tfh responses by controlling IL-2 availability. Nature Communications. 5, 3495 (2014).
  16. He, L., et al. Extracellular matrix protein 1 promotes follicular helper T cell differentiation and antibody production. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (34), 8621-8626 (2018).
  17. León, B., et al. Regulation of TH2 development by CXCR5+ dendritic cells and lymphotoxin-expressing B cells. Nature Immunology. 13 (7), 681-690 (2012).
  18. Wang, H., et al. The transcription factor Foxp1 is a critical negative regulator of the differentiation of follicular helper T cells. Nature Immunology. 15 (7), 667-675 (2014).
  19. Bouvier, N. M., Lowen, A. C. Animal Models for Influenza Virus Pathogenesis and Transmission. Viruses. 2 (8), 1530-1563 (2010).
  20. Miyauchi, K., et al. Protective neutralizing influenza antibody response in the absence of T follicular helper cells. Nature Immunology. 17 (12), 1447-1458 (2016).
  21. Rodriguez, L., Nogales, A., Martinez-Sobrido, L. Influenza A Virus Studies in a Mouse Model of Infection. Journal of Visualized Experiments. (127), (2017).
  22. Kitano, M., et al. Bcl6 protein expression shapes pre-germinal center B cell dynamics and follicular helper T cell heterogeneity. Immunity. 34 (6), 961-972 (2011).
  23. Yusuf, I., et al. Germinal center T follicular helper cell IL-4 production is dependent on signaling lymphocytic activation molecule receptor (CD150). The Journal of Immunology. 185 (1), 190-202 (2010).
  24. Sun, J., Dodd, H., Moser, E. K., Sharma, R., Braciale, T. J. CD4+ T cell help and innate-derived IL-27 induce Blimp-1-dependent IL-10 production by antiviral CTLs. Nature Immunology. 12 (4), 327-334 (2011).

Play Video

Citar este artículo
Wang, M., Huang, Y., Gu, W., Wang, H. Evaluation of T Follicular Helper Cells and Germinal Center Response During Influenza A Virus Infection in Mice. J. Vis. Exp. (160), e60523, doi:10.3791/60523 (2020).

View Video