Summary

Adoptivimmunterapi av iNKT-celler i glucose-6-fosfat isomerase (G6PI)-induserte RA-mus

Published: January 31, 2020
doi:

Summary

Denne protokollen bruker G6PI blandede peptider for å konstruere revmatoid artritt modeller som er nærmere den av menneskelig revmatoid artritt i CD4+ T celler og cytokiner. Høy renhet invariant naturlige killer T celler (hovedsakelig iNKT2) med spesifikke fenotyper og funksjoner ble oppnådd ved in vivo induksjon og in vitro rensing for adoptivimmunterapi.

Abstract

Revmatoid artritt (RA) er en kompleks kronisk inflammatorisk autoimmun sykdom. Sykdomspatogenesen er relatert til invariant naturlige killer T (iNKT) celler. Pasienter med aktiv RA presenterer færre iNKT-celler, defekt cellefunksjon og overdreven polarisering av Th1. I denne studien ble det etablert en RA-dyremodell ved hjelp av en blanding av hGPI325-339 og hGPI469-483 peptider. INKT-cellene ble oppnådd ved in vivo induksjon og in vitrorensing, etterfulgt av infusjon i RA-mus for adoptivimmunterapi. In vivo bildesystem (IVIS) sporing viste at iNKT celler ble hovedsakelig distribuert i milt og lever. På dag 12 etter cellebehandling bremset sykdomsprogresjonen betydelig, de kliniske symptomene ble lindret, overflodav iNKT-celler i thymus økte, andelen iNKT1 i thymus redusert, og nivåene av TNF-α, IFN-γ og IL-6 i serumet redusert. Adoptivimmunterapi av iNKT-celler gjenopprettet balansen mellom immunceller og korrigert ei overdreven betennelse i kroppen.

Introduction

Revmatoid artritt (RA) er en autoimmun sykdom preget av kronisk, progressiv invasivhet med 0,5–1 % insidens1,2. Den underliggende patogenesen tilskrives unormal spredning av autoreaktive CD4+ og CD8+ T-celler, manifestert av en økning i andelen CD4+IFN-γ+ og CD4+IL-17A+ T-celler, og redusert antall CD4+IL-4+ og CD4+CD25+FoxP3+ T-celler. Derfor øker sekresjonen av inflammatoriske cytokiner, og en overdreven inflammatorisk reaksjon ødelegger den innfødte balansen og toleransefunksjonen til kroppens immunsystem. Videre hjelperen T lymfocytter (Th) 1 celler som trenger inn i leddet forverre inflammatorisk respons og leddskade. Derfor er hemming av overdreven inflammatorisk respons og restaurering av immuntoleranse og immunbalanse nøkkelen til behandling av RA3,4.

INKT-cellene har både NK-celle- og T-cellefunksjoner og egenskaper. INKT-cellene har en distinkt, invariant T cellereseptor (TCR) α-kjede med begrenset TCR β-kjede repertoar5 og gjenkjenner glykolipidantigenet presentert av det store histokompatibilitetskomplekset (MHC) klasse I molekyl CD1d på overflaten av antigenpresenterende celler. Mitsuo et al.6 oppdaget et stort antall iNKT-celler og funksjonsfeil i mange autoimmune sykdommer, inkludert RA. Aurore et al.7 viste at iNKT-celler har en positiv effekt på å opprettholde autoimmun toleranse, og at når antall et tall og funksjon av iNKT-celler gjenopprettes, lindres sykdommen. I tillegg fant Miellot-Gafsou et al.8 at iNKT-celler ikke bare avskaffet sykdommen, men også økte sykdomsprogresjonen. Disse motstridende resultatene tyder på at iNKT-celler er heterogene T-celler, og funksjonen til forskjellige undergrupper kan reverseres. I en klinisk studie av RA korrelerte hyppigheten av iNKT-celler med poengsummen av sykdomsaktiviteten9. Resultatene bekreftet også at frekvensen av iNKT ble redusert hos RA-pasienter, antall CD4+IFN-γ+ T celleundergrupper økte, og sekretoriske nivåer av inflammatoriske cytokiner IFN-γ og TNF-α økte10,11. I tillegg undersøkte Sharif et al.12 type 1 diabetes (T1D) og fant at selektiv infusjon av iNKT-celler oppregulerte uttrykket av inflammatorisk cytokin IL-4, opprettholdt immuntoleranse og forhindret utviklingen av type 1 diabetes. Derfor øker adoptivinfusjon av spesifikke iNKT-celler eller målrettet aktivering av iNKT-celler nivået av iNKT-celler hos RA-pasienter, noe som kan være et gjennombrudd i RA-behandling.

Cellulær immunterapi er for tiden av stor interesse og har blitt mye brukt i kreftbehandling. INKT-celler er imidlertid sjeldne, heterogene immunregulatoriske celler (bare 0,3% av det totale antallet PBMCer)13, som begrenser potensielle kliniske applikasjoner. Disse cellene er hovedsakelig delt inn i tre underpopulasjoner: 1) iNKT1 celler, som har et høyt uttrykk for promyelocytisk leukemi sink-finger protein (PLZF) og T-boks transkripsjonfaktor (T-bet); 2) iNKT2 celler med mellomliggende uttrykk for PLZF og GATA bindende protein 3 (GATA3); 3) iNKT17 celler med lavt uttrykk for PLZF og retinoid-relaterte foreldreløse kjernefysiskreseptor (ROR)-γt som skiller IFN-γ, IL-4, og IL-1714. Aktiverte iNKT-celler skiller ut Th1, Th2 og Th17-lignende cytokiner, som bestemmer de forskjellige immunmodulatoriske effektene av iNKT-celler15. Immunmodulerende og immunterapeutiske effekter av spesifikk aktivering av ulike underpopulasjoner av iNKT-celler er forskjellige. Derfor kan valg av spesifikke fenotyper av iNKT-celler (hovedsakelig iNKT2) med antiinflammatoriske funksjoner for å regulere immunresponsen i kroppen korrigere immunubalansen og immunsykdommer i RA.

Etableringen av en ideell dyremodell er av stor betydning for behandling og studier av RA patogenese. For tiden inkluderer de mest brukte og modne dyremodellene kollagenindusert artritt, adjuvant artritt, zymosan-indusert artritt og polysakkaridindusert artritt1617. Det er imidlertid ingen modell som fullt ut kan simulere alle funksjonene i menneskelig RA. Type II kollagen-indusert artritt (CIA) er en klassisk leddgikt modell. CIA induseres av immunisering av mus med type II kollagenspesifikke monoklonale antistoffer, noe som gjenspeiler antistoffavhengigheten til denne sykdomsmodellen. Benurs et al. beskrev en modell med systemisk immunrespons mot glukose-6-fosfat isomerase (G6PI), som induserer perifer symmetrisk polyartritt hos mottakelige musestammer18,19. I denne modellen avhenger utviklingen av leddgikt på T-celler, B-celler og medfødt immunitet18,19,20. Horikoshi21 fant at RA-modeller som følge av immunisering av DBA/1 mus med G6PI polypeptidfragmenter er mer lik menneskelig RA når det gjelder CD4+ T-celler og cytokiner (dvs. IL-6 og TNF-α) enn CIA-modellene. For å øke den stimulerende effekten på TCR-gjenkjenningsstedet, ble de blandede polypeptidfragmentene av G6PI (hGPI325-339 og hGPI469-483) brukt til å immunisere DBA/1 mus for å konstruere RA-musemodellen. Suksessraten for denne tilnærmingen kan høy fordi hGPI325-339 og hGPI469-483 er immundominerende for I-A q-begrenset T celle respons. Derfor kan denne modellen simulere overproliferation av CD4+ T-celler og iNKT celledefekter hos RA-pasienter22. Den grunnleggende forskningen på RA immunopathology la grunnlaget for vår videre grundige undersøkelse.

Protocol

Alle eksperimentelle mus (totalt 150) var friske mannlige DBA/1 mus, 6–8 uker gamle (20,0 ± 1,5 g), oppdratt i et bestemt patogenfritt (SPF)-miljø. Det er ingen spesiell behandling før modellering. Eksperimentet ble delt inn i en sunn kontrollgruppe (15 mus), en modellkontrollgruppe (15 mus) og en celleterapigruppe (55 mus). Denne studien ble godkjent av Dyrevelferds- og etisk komité ved Hebei University. 1. Konstruere sykdomsmodellen Duplisere RA-dyremodellen Vekt 1,75…

Representative Results

Leddgikt indeks score og pote tykkelse økte etter modellering. Sammenlignet med kontrollgruppen begynte tærne i RA-modellgruppen å vise rød hevelse ved 6 dager etter modellering, med gradvis forverring. Ved 14 dager toppet den røde hevelsen i ankelleddet, etterfulgt av gradvis lettelse. Tykkelsen på poten endret seg på samme måte (P < 0,05) (Figur 1). Den inflammatoriske celleinfiltrasjonen økte betydelig etter modellering. De patologiske resulta…

Discussion

iNKT-celler er spesielle T-celler som bygger bro medfødte og adaptive immunitet og er hovedsakelig utviklet fra CD4++/CD8+ tyteocytter. iNKT-celler har ulike immunregulatoriske funksjoner og samhandler med andre immunceller ved direkte kontakt og sekresjon av forskjellige cytokiner23,som påvirker dendrittiske celler (DCer), makrofager, nøytrofiler, B-celler, T-celler og NK-celledifferensiering og utvikling24…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vår studie ble støttet av National Natural Science Foundation of China (NSFC) (81771755), Høyskoler og universitetets vitenskaps- og teknologiviktige forskningsprosjekt i Hebei-provinsen (ZD2017009) og Animal Lab of Medical Experiment Center, Hebei University. Vi er takknemlige for deres støtte.

Materials

Alexa Fluor 647 Mouse Anti-PLZF BD 563490 America
Anti-PE MicroBeads Miltenyi 130-048-801 Germany
Columns Miltenyi MS Germany
Cryogenic Centrifuge Beckman Allegra® X-15R America
DiR Thermo Fisher Scientific D12731 America
Embedding Center Tianjin Aviation Electromechanical Co., Ltd. BMJ-1 China
FITC Hamster Anti-Mouse TCR β Chain BD 553170 America
Flow cytometer BD Accuri C6 America
Freund's complete adjuvant Sigma F5881 America
hGPI325-339 (IWYINCFGCETHAML) Karebay Biochem 18062202 China
hGPI469-483 (EGNRPTNSIVFTKLT) Karebay Biochem 18062203 China
In Vivo Imaging System PerkinElmer caliper IVIS lumina II America
Ionomycin Calcium Cayman 10004974 America
KRN7000 AdipoGen AG-CN2-0013 America
Mouse CD1d Tetramer-PE MBL TS-MCD-1 Japan
Mouse percoll Solarbio P8620 China
Optical Microscope Olympus Olympus-II Japan
PerCP-CyTM5.5 Mouse anti-ROR-ϒt BD 562683 America
PerCP-CyTM5.5 Mouse anti-T-bet BD 561316 America
Pertussis toxin Sigma P7208 America
phorbol esters Cayman 10008014 America
Red Blood Cell Lysis Buffer BD 555899 America
RPMI-1640 Biological Industries 01-100-1ACS Israel
Th1/Th2/Th17 cytokines kit BD 560485 America
Ultramicrotome Leica Leica EM UC6 Germany

Referencias

  1. Tobón, G. J., Youinou, P., Saraux, A. The environment, geo-epidemiology, and autoimmune disease: Rheumatoid arthritis. Autoimmunity Reviews. 35 (1), 0 (2010).
  2. Cross, M., et al. The global burden of rheumatoid arthritis: estimates from the Global Burden of Disease 2010 study. Annals of the Rheumatic Diseases. 73 (7), 1316-1322 (2014).
  3. Kanashiro, A., Bassi, G. S., Queiróz Cunha, F. D., Ulloa, L. From neuroimunomodulation to bioelectronic treatment of rheumatoid arthritis. Bioelectronics in Medicine. 1 (2), 151-165 (2018).
  4. Brennan, P. J., Brigl, M., Brenner, M. B. Invariant natural killer T cells: an innate activation scheme linked to diverse effector functions. Nature Reviews Immunology. 13 (2), 101-117 (2013).
  5. Bianca, B. S. Unraveling Natural Killer T-Cells Development. Frontiers in Immunology. 8, 1950 (2018).
  6. Mitsuo, A., et al. Decreased CD161+CD8+ T cells in the peripheral blood of patients suffering from rheumatic diseases. Rheumatology. 45 (12), 1477-1484 (2006).
  7. Miellot, A., et al. Activation of invariant NK T cells protects against experimental rheumatoid arthritis by an IL-10-dependent pathway. European Journal of Immunology. 35 (12), 3704-3713 (2005).
  8. Miellot-Gafsou, A., et al. Early activation of invariant natural killer T cells in a rheumatoid arthritis model and application to disease treatment. Immunology. 130 (2), 296-306 (2010).
  9. Tudhope, S. J., Delwig, A. V., Falconer, J., Pratt, A., Ng, W. F. Profound invariant natural killer t-cell deficiency in inflammatory arthritis. Annals of the Rheumatic Diseases. 69 (10), 1873-1879 (2010).
  10. Ming, M., et al. Effects on immunoregulation of iNKT cells in RA by novel synthetic immunostimulator CH1b. Chinese Journal of Immunology. 32 (02), 218-222 (2016).
  11. Ming, M., et al. Study of the correlation between the percentage of iNKT cells and the ratio of IFN-γ/IL-4 in patients with rheumatoid arthritis. Chinese Journal of Microbiology Immunology. 35 (3), 213-218 (2015).
  12. Sharif, S., et al. Activation of natural killer T cells by α-galactosylceramide treatment prevents the onset and recurrence of autoimmune Type 1 diabetes. Nature Medicine. 7, 1057-1062 (2010).
  13. Gapin, L. Development of invariant natural killer T cells. Current Opinion in Immunology. 39, 68-74 (2016).
  14. Kwon, D. I., Lee, Y. J. Lineage Differentiation Program of Invariant Natural Killer T Cells. Immune Network. 17 (6), (2017).
  15. Thapa, P., et al. The differentiation of ROR-γt expressing iNKT17 cells is orchestrated by Runx1. Scientific Reports. 7 (1), 7018 (2017).
  16. Schurgers, E., Billiau, A., Matthys, P. Collagen-induced arthritis as an animal model for rheumatoid arthritis: focuson interferon-γ. Interferon Cytokine Research. 31 (12), 917-926 (2011).
  17. Van Haalen, H. G. M., Severens, J. L., Tran-Duy, A., Boonen, A. How cost-effectiveness A systematic review and stepwise approach for selecting a transferable health economic evaluation rheumatoid arthritis. Pharmacoeconomics. 32 (5), 429-442 (2014).
  18. Schubert, D., Maier, B., Morawietz, L., Krenn, V., Kamradt, T. Immunization with glucose-6-phosphate isomerase induces T cell-dependent peripheral polyarthritis in genetically unaltered mice. Journal of Immunology. 172, 4503-4509 (2004).
  19. Bockermann, R., Schubert, D., Kamradt, T., Holmdahl, R. Induction of a B-cell-dependent chronic arthritis with glucose-6-phosphate isomerase. Arthritis Research, Therapy. 7, 131613-131624 (2005).
  20. Kamradt, T., Schubert, D. The role and clinical implications of G6PI in experimental models of rheumatoid arthritis. Arthritis Research, Therapy. 7, 20-28 (2005).
  21. Horikoshi, M., et al. Activation of Invariant NKT Cells with Glycolipid Ligand α-Galactosylceramide Ameliorates Glucose-6-Phosphate Isomerase Peptide-Induced Arthritis. PlosOne. 7 (12), 51215 (2012).
  22. Zhang, X. J., et al. Immunization with mixed peptides derived from glucose-6-phosphate isomerase induces rheumatoid arthritis in DBA /1 mice. Chinese Journal of Pathophysiology. 32 (3), 569-576 (2016).
  23. Motohashi, S., Nakayama, T. Invariant natural killer T cell-based immunotherapy for cancer. Immunotherapy. 1 (1), 73 (2017).
  24. Jung, S., et al. The requirement of natural killer T-cells in tolerogenic APCs-mediated suppression of collagen-induced arthritis. Experimental and Molecular Medicine. 42 (8), 547-554 (2010).
  25. Luc, V. K., Lan, W. Therapeutic Potential of Invariant Natural Killer T Cells in Autoimmunity. Frontiers in Immunology. 9, 519-526 (2018).
  26. Chiba, A., et al. Suppression of collagen-induced arthritis by natural killer T cell activation with OCH, a sphingosine-truncated analog of α-galactosylceramide. Arthritis, Rheumatism. 50 (1), 305-313 (2004).
  27. Tudhope, S. J., Delwig, A. V., Falconer, J., Pratt, A., Ng, W. F. Profound invariant natural killer t-cell deficiency in inflammatory arthritis. Annals of the Rheumatic Diseases. 69 (10), 1873-1879 (2010).
  28. Bruns, L., et al. Immunization with an immunodominant self-peptide derived from glucose-6-phosphate isomerase induces arthritis in DBA/1 mice. Arthritis Research, Therapy. 11 (4), (2009).
  29. Parietti, V., et al. Rituximab treatment overcomes reduction of regulatory iNKT cells in patients with rheumatoid arthritis. Clinical Immunology. 134 (3), 331-339 (2010).
  30. Yoshida, Y., et al. Functional mechanism(s) of the inhibition of disease progression by combination treatment with fingolimod plus pathogenic antigen in a glucose-6-phosphate isomerase peptide-induced arthritis mouse model. Biological, Pharmaceutical Bulletin. 38 (8), 1120-1125 (2015).
  31. Chen, D., et al. Study of the adoptive immunotherapy on rheumatoid arthritis with Thymus-derived invariant natural killer T cells. International Immunopharmacology. 67, 427-440 (2019).

Play Video

Citar este artículo
Meng, M., Chen, S., Gao, X., Liu, H., Wang, Y., Zhang, J., Dou, H., Li, W., Chen, D. Adoptive Immunotherapy of iNKT Cells in Glucose-6-Phosphate Isomerase (G6PI)-Induced RA Mice. J. Vis. Exp. (155), e60048, doi:10.3791/60048 (2020).

View Video