Vi viser en metode til nekropsy og dissektion af mus prostatacancer modeller, med fokus på prostata tumor dissektion. En trin-for-trin protokol til generering af mus prostata tumor organoider er også præsenteret.
Metoder baseret på homologe rekombination til at ændre gener har væsentligt fremmet biologisk forskning. Gensplejsede musemodeller (Gemm’er) er en stringent metode til at studere mammalan udvikling og sygdom. Vores laboratorium har udviklet flere gemmer af prostatacancer (PCa), der mangler udtryk for en eller flere tumor suppressor gener ved hjælp af den site-specifikke CRE-loxP rekombinase system og en prostata-specifik promotor. I denne artikel beskriver vi vores metode til nekropsy af disse PCa GEMMs, primært med fokus på dissektion af mus prostata tumorer. Nye metoder udviklet i løbet af de sidste ti år har lettet kulturen af epiteliale-afledte celler til model orgel systemer in vitro i tre dimensioner. Vi også detaljer en 3D cellekultur metode til at generere tumor organoider fra mus PCa GEMMs. Præklinisk kræftforskning har været domineret af 2D cellekultur og celle line-afledte eller patient-afledte xenograft modeller. Disse metoder mangler tumor mikromiljø, en begrænsning af brugen af disse teknikker i præ-kliniske undersøgelser. Gemmer er mere fysiologisk relevante for forståelsen af tumor og cancer progression. Tumor organoid kultur er en in vitro model system, der rekapitulerer tumor arkitektur og celle Lineage egenskaber. Desuden, 3D cellekultur metoder giver mulighed for vækst af normale celler til sammenligning med tumor cellekulturer, sjældent muligt ved hjælp af 2D cellekultur teknikker. I kombination, brug af gemmer og 3D cellekultur i præ-kliniske undersøgelser har potentiale til at forbedre vores forståelse af kræft biologi.
Siden slutningen af 1980 ‘ erne, evnen til at ændre gener ved homologe rekombination har i høj grad fremskreden studiet af biologiske systemer1. Inducerbare, vævs-eller celle specifikke promotor-systemer og site-specifikke rekombinaser, såsom CRE-loxp, har avancerede genetiske undersøgelser ved at lette kontrollen med genetiske modifikationer både timeligt og rumligt2,3, 4. Kombinationen af disse genetiske strategier har skabt en bred vifte af eksperimentelle modelsystemer5,6,7.
Genetisk modificerede musemodeller (Gemm’er) er et integreret redskab til at vurdere, hvordan individuelle gener eller grupper af gener påvirker pattedyrs udvikling og sygdom. I præ-klinisk kræftforskning, GEMMs er den mest fysiologisk-relevant og stringent metode til at studere kræft udvikling, progression, og behandling8. Vores laboratorium har specialiseret sig i at generere og karakterisere kræft GEMMs.
Den mest højt diagnosticerede ikke-kutane kræft blandt mænd i USA er prostatacancer (PCa). Størstedelen af patienterne med PCa har lav-risiko sygdom og høj sandsynlighed for overlevelse, men overlevelsesraten falder drastisk, når sygdommen diagnosticeres på avancerede stadier, eller hvis målrettet hormonel terapi inducerer progression til aggressive, ikke-helbredelig PCa undertyper9,10. Vores laboratorium har udviklet gemmer, der udnytter floxed alleler af en eller flere tumor suppressor gener. Rekombination og tab af tumor suppressor genekspression forekommer specifikt i prostata, fordi vi har introduceret et Trans gen med CRE rekombinase nedstrøms for probasin promotoren aktiveret kun i prostata epiteliale celler11, 12. vi har også opdrættet vores gemmer til at indeholde en CRE reporter transgen kaldet MT/mG, som inducerer tomat fluorescerende protein udtryk i celler, der mangler CRE og grønt fluorescerende protein (gfp) udtryk i celler med CRE13. Mens præsentationen af denne metode og vores repræsentative resultater viser GEMMs vi studere i vores laboratorium, denne protokol kan bruges til at generere prostatacancer organoider fra enhver musemodel. Men, som diskuteret i detaljer i vores repræsentative resultater sektion, vi har observeret, at visse tumorkarakteristika er optimale for prostatacancer organoid generation.
I det sidste årti har nye metoder til dyrkning af celler fra væv af epitelial oprindelse ført til betydelige fremskridt i vores evne til at modellere orgel systemer in vitro14,15. Udtrykket “3D-cellekultur” er blevet tilskrevet de teknikker, der er involveret i etablering og vedligeholdelse af organoider, som generelt kan defineres som strukturer, der består af celler, som samler sekundær arkitektur drevet af organspecifik cellelinje Karakteristik16. Disse nye metoder adskiller sig fra klassisk 2D-cellekultur i, at cellerne ikke kræver transformation eller immortalization for langsigtet vækst; således kan 3D-kulturer af normale celler sammenlignes med syge celler. Dette er især værdifuldt i kræftforskning, hvor normale celle kontrol kulturer har typisk ikke været tilgængelige. Desuden danner organoider spontant sekundære vævs arkitekturer med passende differentierede celletyper, hvilket gør dem til et bedre model system til at forstå kræft in vitro end 2D cellelinjer17. Vores laboratorium har skabt 3D organoid linjer fra tumor problem isoleret fra vores PCa GEMMs at supplere vores in vivo data og udføre eksperimenter, som ikke ville være muligt i GEMMs.
I denne artikel præsenterer vi skriftlige og visuelle protokoller for den komplette nekropsy af PCa GEMMs, herunder dissektion af forskellige mus prostata lapper og metastatiske læsioner. Vi beskriver og viser en trin-for-trin metode til generering af organoider fra mus prostata tumorer baseret på en protokol, der tidligere blev offentliggjort af Drost et al. for at udlede organoider fra normal mus prostata epitelial væv18.
Kritiske trin i protokollen for prostata tumor dissektion og organoid generation
Fjernelse af ikke-prostata væv og fine dissektion af musen prostata tumor er afgørende for den optimale generation af kræft organoider, da både ikke-prostata epiteliale celler og normale prostata epitelceller vil generere organoider. For solide prostata tumorer specifikt, det er afgørende at isolere områder af levedygtig tumor til at fjerne forurening med nekrotisk væv, der ville reducere antallet af levedygtige ce…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne vil gerne takke Calvin Kuo Laboratory på Stanford University for at levere HEK293 celler stabilt transficeret med enten ha-Mouse Noggin-FC eller ha-Mouse Rspo1-FC. Vi vil også gerne takke Dr. Dean tang for at give os adgang til fluorescerende dissektion mikroskop i hans laboratorium. Dette arbejde blev støttet af CA179907 til D.W.G. fra National Cancer Institute. Delte ressourcer på Roswell Park Comprehensive Cancer Center blev støttet af nationale institutter for Health Cancer Center support Grant CA016056.
0.25 % Trypsin+2.21 mM EDTA | Sigma | 25-053 | |
1 1/4 in, 23 gauge, disposable syringe needles | Becton Dickinson | Z192430 | |
10 % neutral buffered formalin | Sigma | HT501128 | |
32 % paraformaldehyde | Electron Microscopy Services | 15714 | |
A83-01 | MedChemExpress | HY-10432 | |
Advanced DMEM/F12+++ | Gibco | 12634 | |
Analytical balance | Mettler Toledo | 30216623 | |
B27 (50X) | Gibco | 17504044 | |
Collagenase II | Gibco | 17101015 | |
Dissecting Board | Thermo-Fisher | 36-1 | |
EHS Sarcoma matrix, Pathclear Lot#19814A10 | Manufactured by Trevigen | Requistitioned from the National Cancer Institute at the Frederick National Laboratory | Holder of grants from the National Cancer Institute can request matrix |
HEPES (1M) | Sigma | 25-060 | |
human recombinant Epidermal growth factor (EGF) | PeproTech | AF-100-15 | |
L-glutamine (200 mM) | Sigma | 25-005 | |
N-Acetyl-L-Cysteine | Sigma | A9165 | |
Penicillin-Streptomycin | Sigma | P4333 | |
Precision balance | Mettler Toledo | 30216561 | |
Scalpel #23 | World Precision Instruments | 504176 | |
Scalpel Handle #7, 16 cm | World Precision Instruments | 500238 | |
Single-edge carbon razor blade | Fisherbrand | 12-640 | |
Stainless steel dissecting scissors, 10 cm, straight | World Precision Instruments | 14393 | |
Stainless steel Iris forceps, 10 cm, curved tip, serrated | World Precision Instruments | 15915 | |
Stainless steel Nugent utility forceps, straight tip, serrated | World Precision Instruments | 504489 | |
Y-276632 (Rock Inhibitor) | APExBIO | A3008 |