Summary

Generation af tumor Organoider fra genetisk manipulerede musemodeller af prostata cancer

Published: June 13, 2019
doi:

Summary

Vi viser en metode til nekropsy og dissektion af mus prostatacancer modeller, med fokus på prostata tumor dissektion. En trin-for-trin protokol til generering af mus prostata tumor organoider er også præsenteret.

Abstract

Metoder baseret på homologe rekombination til at ændre gener har væsentligt fremmet biologisk forskning. Gensplejsede musemodeller (Gemm’er) er en stringent metode til at studere mammalan udvikling og sygdom. Vores laboratorium har udviklet flere gemmer af prostatacancer (PCa), der mangler udtryk for en eller flere tumor suppressor gener ved hjælp af den site-specifikke CRE-loxP rekombinase system og en prostata-specifik promotor. I denne artikel beskriver vi vores metode til nekropsy af disse PCa GEMMs, primært med fokus på dissektion af mus prostata tumorer. Nye metoder udviklet i løbet af de sidste ti år har lettet kulturen af epiteliale-afledte celler til model orgel systemer in vitro i tre dimensioner. Vi også detaljer en 3D cellekultur metode til at generere tumor organoider fra mus PCa GEMMs. Præklinisk kræftforskning har været domineret af 2D cellekultur og celle line-afledte eller patient-afledte xenograft modeller. Disse metoder mangler tumor mikromiljø, en begrænsning af brugen af disse teknikker i præ-kliniske undersøgelser. Gemmer er mere fysiologisk relevante for forståelsen af tumor og cancer progression. Tumor organoid kultur er en in vitro model system, der rekapitulerer tumor arkitektur og celle Lineage egenskaber. Desuden, 3D cellekultur metoder giver mulighed for vækst af normale celler til sammenligning med tumor cellekulturer, sjældent muligt ved hjælp af 2D cellekultur teknikker. I kombination, brug af gemmer og 3D cellekultur i præ-kliniske undersøgelser har potentiale til at forbedre vores forståelse af kræft biologi.

Introduction

Siden slutningen af 1980 ‘ erne, evnen til at ændre gener ved homologe rekombination har i høj grad fremskreden studiet af biologiske systemer1. Inducerbare, vævs-eller celle specifikke promotor-systemer og site-specifikke rekombinaser, såsom CRE-loxp, har avancerede genetiske undersøgelser ved at lette kontrollen med genetiske modifikationer både timeligt og rumligt2,3, 4. Kombinationen af disse genetiske strategier har skabt en bred vifte af eksperimentelle modelsystemer5,6,7.

Genetisk modificerede musemodeller (Gemm’er) er et integreret redskab til at vurdere, hvordan individuelle gener eller grupper af gener påvirker pattedyrs udvikling og sygdom. I præ-klinisk kræftforskning, GEMMs er den mest fysiologisk-relevant og stringent metode til at studere kræft udvikling, progression, og behandling8. Vores laboratorium har specialiseret sig i at generere og karakterisere kræft GEMMs.

Den mest højt diagnosticerede ikke-kutane kræft blandt mænd i USA er prostatacancer (PCa). Størstedelen af patienterne med PCa har lav-risiko sygdom og høj sandsynlighed for overlevelse, men overlevelsesraten falder drastisk, når sygdommen diagnosticeres på avancerede stadier, eller hvis målrettet hormonel terapi inducerer progression til aggressive, ikke-helbredelig PCa undertyper9,10. Vores laboratorium har udviklet gemmer, der udnytter floxed alleler af en eller flere tumor suppressor gener. Rekombination og tab af tumor suppressor genekspression forekommer specifikt i prostata, fordi vi har introduceret et Trans gen med CRE rekombinase nedstrøms for probasin promotoren aktiveret kun i prostata epiteliale celler11, 12. vi har også opdrættet vores gemmer til at indeholde en CRE reporter transgen kaldet MT/mG, som inducerer tomat fluorescerende protein udtryk i celler, der mangler CRE og grønt fluorescerende protein (gfp) udtryk i celler med CRE13. Mens præsentationen af denne metode og vores repræsentative resultater viser GEMMs vi studere i vores laboratorium, denne protokol kan bruges til at generere prostatacancer organoider fra enhver musemodel. Men, som diskuteret i detaljer i vores repræsentative resultater sektion, vi har observeret, at visse tumorkarakteristika er optimale for prostatacancer organoid generation.

I det sidste årti har nye metoder til dyrkning af celler fra væv af epitelial oprindelse ført til betydelige fremskridt i vores evne til at modellere orgel systemer in vitro14,15. Udtrykket “3D-cellekultur” er blevet tilskrevet de teknikker, der er involveret i etablering og vedligeholdelse af organoider, som generelt kan defineres som strukturer, der består af celler, som samler sekundær arkitektur drevet af organspecifik cellelinje Karakteristik16. Disse nye metoder adskiller sig fra klassisk 2D-cellekultur i, at cellerne ikke kræver transformation eller immortalization for langsigtet vækst; således kan 3D-kulturer af normale celler sammenlignes med syge celler. Dette er især værdifuldt i kræftforskning, hvor normale celle kontrol kulturer har typisk ikke været tilgængelige. Desuden danner organoider spontant sekundære vævs arkitekturer med passende differentierede celletyper, hvilket gør dem til et bedre model system til at forstå kræft in vitro end 2D cellelinjer17. Vores laboratorium har skabt 3D organoid linjer fra tumor problem isoleret fra vores PCa GEMMs at supplere vores in vivo data og udføre eksperimenter, som ikke ville være muligt i GEMMs.

I denne artikel præsenterer vi skriftlige og visuelle protokoller for den komplette nekropsy af PCa GEMMs, herunder dissektion af forskellige mus prostata lapper og metastatiske læsioner. Vi beskriver og viser en trin-for-trin metode til generering af organoider fra mus prostata tumorer baseret på en protokol, der tidligere blev offentliggjort af Drost et al. for at udlede organoider fra normal mus prostata epitelial væv18.

Protocol

De dyre procedurer, der er beskrevet her, blev udført med godkendelse af Udvalget for institutionel dyrepleje og-anvendelse (IACUC) på Institut for Laboratoriedyrs ressourcer, Roswell Park Comprehensive Cancer Center, Buffalo, New York. Bemærk: Mandlige mus, der skal dissekeres for at isolere prostater eller prostata tumorer til generation af organoider bør have mindst nået en alder af seksuel modenhed — omkring 8-10 uger af alder. Specifikke aldre af mus kan variere bl…

Representative Results

Repræsentative nekropsy billeder af en mus med en stor væskefyldt primær prostata tumor i den forreste prostata region er vist i figur 2a. I modsætning hertil, figur 2B, viser repræsentative nekropsy billeder af en mus med en stor solid primær prostata tumor, som individuelle prostata regioner er umulig at skelne. Fluorescerende dissektion billeder viser den samme solide prostata tumor fra figur 2</str…

Discussion

Kritiske trin i protokollen for prostata tumor dissektion og organoid generation
Fjernelse af ikke-prostata væv og fine dissektion af musen prostata tumor er afgørende for den optimale generation af kræft organoider, da både ikke-prostata epiteliale celler og normale prostata epitelceller vil generere organoider. For solide prostata tumorer specifikt, det er afgørende at isolere områder af levedygtig tumor til at fjerne forurening med nekrotisk væv, der ville reducere antallet af levedygtige ce…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne takke Calvin Kuo Laboratory på Stanford University for at levere HEK293 celler stabilt transficeret med enten ha-Mouse Noggin-FC eller ha-Mouse Rspo1-FC. Vi vil også gerne takke Dr. Dean tang for at give os adgang til fluorescerende dissektion mikroskop i hans laboratorium. Dette arbejde blev støttet af CA179907 til D.W.G. fra National Cancer Institute. Delte ressourcer på Roswell Park Comprehensive Cancer Center blev støttet af nationale institutter for Health Cancer Center support Grant CA016056.

Materials

0.25 % Trypsin+2.21 mM EDTA Sigma 25-053
1 1/4 in, 23 gauge, disposable syringe needles Becton Dickinson Z192430
10 % neutral buffered formalin Sigma HT501128
32 % paraformaldehyde Electron Microscopy Services 15714
A83-01 MedChemExpress HY-10432
Advanced DMEM/F12+++ Gibco 12634
Analytical balance Mettler Toledo 30216623
B27 (50X) Gibco 17504044
Collagenase II Gibco 17101015
Dissecting Board Thermo-Fisher 36-1
EHS Sarcoma matrix, Pathclear Lot#19814A10 Manufactured by Trevigen Requistitioned from the National Cancer Institute at the Frederick National Laboratory Holder of grants from the National Cancer Institute can request matrix
HEPES (1M) Sigma 25-060
human recombinant Epidermal growth factor (EGF) PeproTech AF-100-15
L-glutamine (200 mM) Sigma 25-005
N-Acetyl-L-Cysteine Sigma A9165
Penicillin-Streptomycin Sigma P4333
Precision balance Mettler Toledo 30216561
Scalpel #23 World Precision Instruments 504176
Scalpel Handle #7, 16 cm World Precision Instruments 500238
Single-edge carbon razor blade Fisherbrand 12-640
Stainless steel dissecting scissors, 10 cm, straight World Precision Instruments 14393
Stainless steel Iris forceps, 10 cm, curved tip, serrated World Precision Instruments 15915
Stainless steel Nugent utility forceps, straight tip, serrated World Precision Instruments 504489
Y-276632 (Rock Inhibitor) APExBIO A3008

Referencias

  1. Capecchi, M. R. Altering the genome by homologous recombination. Science. 244 (4910), 1288-1292 (1989).
  2. Furth, P. A., et al. Temporal control of gene expression in transgenic mice by a tetracycline-responsive promoter. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (20), 9302-9306 (1994).
  3. Aranda, M., et al. Altered directionality in the Cre-LoxP site-specific recombination pathway. Journal of Molecular Biology. 311 (3), 453-459 (2001).
  4. Schwenk, F., Kuhn, R., Angrand, P. O., Rajewsky, K., Stewart, A. F. Temporally and spatially regulated somatic mutagenesis in mice. Nucleic Acids Research. 26 (6), 1427-1432 (1998).
  5. Kuhn, R., Schwenk, F., Aguet, M., Rajewsky, K. Inducible gene targeting in mice. Science. 269 (5229), 1427-1429 (1995).
  6. Goodrich, M. M., Talhouk, R., Zhang, X., Goodrich, D. W. An approach for controlling the timing and order of engineered mutations in mice. Genesis. 56 (8), 23242 (2018).
  7. Brocard, J., et al. Spatio-temporally controlled site-specific somatic mutagenesis in the mouse. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94 (26), 14559-14563 (1997).
  8. Day, C. P., Merlino, G., Van Dyke, T. Preclinical mouse cancer models: a maze of opportunities and challenges. Cell. 163 (1), 39-53 (2015).
  9. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2019. CA: A Cancer Journal for Clinicians. , (2019).
  10. Bluemn, E. G., et al. Androgen Receptor Pathway-Independent Prostate Cancer Is Sustained through FGF Signaling. Cancer Cell. 32 (4), 474-489 (2017).
  11. Zhou, Z., et al. Synergy of p53 and Rb deficiency in a conditional mouse model for metastatic prostate cancer. Investigación sobre el cáncer. 66 (16), 7889-7898 (2006).
  12. Ku, S. Y., et al. Rb1 and Trp53 cooperate to suppress prostate cancer lineage plasticity, metastasis, and antiandrogen resistance. Science. 355 (6320), 78-83 (2017).
  13. Muzumdar, M. D., Tasic, B., Miyamichi, K., Li, L., Luo, L. A global double-fluorescent Cre reporter mouse. Genesis. 45 (9), 593-605 (2007).
  14. Sato, T., et al. Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche. Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).
  15. Simian, M., Bissell, M. J. Organoids: A historical perspective of thinking in three dimensions. Journal of Cell Biology. 216 (1), 31-40 (2017).
  16. Clevers, H. Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  17. Weiswald, L. B., Bellet, D., Dangles-Marie, V. Spherical cancer models in tumor biology. Neoplasia. 17 (1), 1-15 (2015).
  18. Drost, J., et al. Organoid culture systems for prostate epithelial and cancer tissue. Nature Protocols. 11 (2), 347-358 (2016).
  19. Oliveira, D. S., et al. The mouse prostate: a basic anatomical and histological guideline. Bosnian Journal of Basic Medical Sciences. 16 (1), 8-13 (2016).
  20. Callis, G., Sterchi, D. Decalcification of Bone: Literature Review and Practical Study of Various Decalcifying Agents, Methods, and Their Effects on Bone Histology. The Journal of Histotechnology. (21), 49-58 (1998).
  21. Dardenne, E., et al. N-Myc Induces an EZH2-Mediated Transcriptional Program Driving Neuroendocrine Prostate Cancer. Cancer Cell. 30 (4), 563-577 (2016).
  22. Blattner, M., et al. SPOP Mutation Drives Prostate Tumorigenesis In Vivo through Coordinate Regulation of PI3K/mTOR and AR Signaling. Cancer Cell. 31 (3), 436-451 (2017).
  23. Agarwal, S., et al. Identification of Different Classes of Luminal Progenitor Cells within Prostate Tumors. Cell Reports. 13 (10), 2147-2158 (2015).

Play Video

Citar este artículo
Wadosky, K. M., Wang, Y., Zhang, X., Goodrich, D. W. Generation of Tumor Organoids from Genetically Engineered Mouse Models of Prostate Cancer. J. Vis. Exp. (148), e59710, doi:10.3791/59710 (2019).

View Video