Tumor microenvironment is een essentieel onderdeel van kankergroei en invasie. Om kanker progressie na te bootsen, is een biologisch relevante menselijke matrix nodig. Dit protocol introduceert een verbetering voor de drie-dimensionale sferoïde invasie assay in vitro door het toepassen van een menselijke leiomyoma-gebaseerde matrix. Het protocol introduceert ook een computer-based cel invasie analyse.
Twee-dimensionale cel op cultuur gebaseerde assays worden vaak gebruikt in in vitro kankeronderzoek. Nochtans, missen zij verscheidene basiselementen die de tumor microenvironment vormen. Om meer betrouwbare in vitro resultaten te verkrijgen, zijn er verschillende driedimensionale (3D) Cell cultuur assays geïntroduceerd. Deze tests kunnen kankercellen om te interageren met de extracellulaire matrix. Deze interactie beïnvloedt het gedrag van cellen, zoals proliferatie en invasie, maar ook de morfologie van de cel. Bovendien, deze interactie kan induceren of onderdrukken van de expressie van verschillende Pro-en anti-tumorigenic moleculen. Sferoïde invasie assay werd ontwikkeld om een geschikte 3D in vitro methode te bieden om kankercellen invasie te bestuderen. Op dit moment, dierlijke-afgeleide matrices, zoals de muis Sarcoom-afgeleide matrix (MSDM) en rat staart type I collageen, worden voornamelijk gebruikt in de sferoïde invasie assays. Rekening houdend met de verschillen tussen de menselijke tumor microenvironment en dierlijke-afgeleide matrices, een menselijke myoma-afgeleide matrix (HMDM) werd ontwikkeld uit goedaardige baarmoeder leiomyoma weefsel. Het is aangetoond dat HMDM induceert migratie en invasie van carcinoom cellen beter dan MSDM. Dit protocol verstrekte een eenvoudige, reproduceerbare, en betrouwbaar 3D menselijke tumor-gebaseerde sferoïde invasie assay gebruikend de HMDM/fibrine matrijs. Het bevat ook gedetailleerde instructies over beeldvorming en analyse. De sferoïden groeien in een U-vormige ultra-lage bevestigingsplaat binnen de HMDM/fibrinematrix en binnenvallen er doorheen. De invasie wordt dagelijks afgebeeld, gemeten en geanalyseerd met behulp van ilastik en Fiji ImageJ software. De assay platform werd aangetoond met behulp van menselijke keel primaire en gemetastaseerde plaveiselcel cel carcinoom cellen lijnen. Echter, het protocol is ook geschikt voor andere vaste kankercellen lijnen.
Conventionele twee-dimensionale (2D) cel cultuurstudies hebben aanzienlijk bijgedragen aan het onderzoek naar kanker. Momenteel zijn onderzoekers verschuiven meer naar drie-dimensionale (3D) cel cultuur assays beter na te bootsen de in vivo voorwaarden1. De 3D-kanker cel cultuur nauwkeuriger weerspiegelt de complexe tumor micromilieu in termen van cel-cel en cel-matrix interacties, genexpressie profielen, gevoeligheid van de drug, en signalering pathway activiteit2,3.
Verscheidene 3D de cultuur modellen van de cel worden gebruikt in kankeronderzoek zoals tumorweefsel explant, tumor op een spaander, en multicellulaire tumor sferoïden3,4. Multicellulaire tumor sferoïden worden nu wijd gebruikt, aangezien zij verscheidene eigenschappen van de in vivo voorwaarden in menselijke tumors1,5nabootsen. Wanneer de sferoïde diameter groter is dan 500 μm, heeft het zelfs hypoxische gebieden en een necrotic centrum, dat zo de in vivo tumor situatie vertegenwoordigt2.
Veel synthetische (bijv. Polydimethylsiloxaan) en dierlijke-afgeleide (bijv. rat staart type I collageen en muis Sarcoom-afgeleide matrix, Matrigel, aangeduid als MSDM) matrices zijn ontwikkeld voor 3D-cel cultuur assays3,6, 7,8. Tot nu toe zijn geen van de in de handel verkrijgbare matrices afkomstig van menselijk tumorweefsel. Daarom hebben ze niet de kenmerken van de menselijke tumor microenvironment, die significante effecten heeft op kanker cel invasie processen8.
Myogel (menselijke myoma-afgeleide matrijs, die als HMDM wordt bedoeld) wordt gehaald uit menselijke baarmoeder leiomyoma tumorweefsel9. Het is aangetoond dat het eiwitgehalte van HMDM aanzienlijk verschilt van die van MSDM. In feite, 66% van HMDM eiwitten zijn verschillend van MSDM eiwitten. Aan de andere kant, sommige eiwitten, zoals laminin, type IV collageen, heparan sulfaat proteoglycanen, nidogen, en epidermale groeifactor, aanwezig zijn in beide matrices10. Bovendien, verschilt de muis van de mens in enzym inhoud, met mensen die 78 minder proteasen dan muizen11hebben.
Fibrine is op grote schaal gebruikt alleen of in combinatie met andere materialen als een steigermateriaal12. In 3D de cultuur analyses van de cel, worden de commercieel beschikbare menselijke fibrinogeen en trombine gecombineerd om een fibrine hydrogel12te vormen.
Dit protocol beschrijft een verbetering van de eerder geïntroduceerde 3D tumor sferoïde invasie assay7. Dit nieuwe protocol is van toepassing menselijke tumor-afgeleide matrix in plaats van muis-afgeleide tumor matrix. Het gaat ook om Imaging en analysetechnieken met behulp van ilastik en Fiji ImageJ software. Dit protocol kan worden gebruikt voor sferoïde assay van verschillende vaste kankercellen lijnen. Het biedt een biologisch relevant instrument om nieuwe anti-kankertherapieën te ontwikkelen en om de effecten van specifieke moleculen op de invasie van kankercellen te bestuderen.
De gepresenteerde methode biedt een 3D menselijke tumor-gebaseerde assay om de invasieve van kankercellen te evalueren binnen de menselijke tumor microenvironment nabootsen matrix. Kanker cel invasie kan gemakkelijk worden gemeten door de dagelijkse beeldvorming met een standaard Microscoop en met behulp van beeldanalyse software. De methode toont cel invasie in plaats van alleen proliferatie.
In tegenstelling tot MSDM, de HMDM/fibrinematrix vereist geen temperatuurregeling. Deze methode is eenvoudig uit te voeren, in het bijzonder zonder de noodzaak om de sferoïden van de ene plaat naar de andere. Het heeft slechts één technisch gevoelige stap, de toevoeging van fibrinogeen aan de matrijs. Sinds fibrinogeen begint te gel na een paar minuten, het toevoegen van fibrinogeen vereist robuuste pipetten en de behandeling van slechts een paar putten tegelijk. Er is ook een risico van het verstoren van de sferoïde en het verplaatsen van de centrale positie in de U-vormig goed als pipetten wordt gedaan op een hoge druk manier. Dislocatie van de sferoïde kan compliceren beeldvorming en uiteindelijk de analyse.
De assay kan gewijzigd worden door de concentratie van HMDM of fibrinogeen te veranderen. De cellen kunnen ook worden vastgesteld en gekleurd voor latere moleculaire studies. Hoewel deze methode kan worden aangepast aan een volledig geautomatiseerde vorm, kan het ook worden uitgevoerd met een normale Microscoop en twee open source software, met geen behoefte aan dure apparatuur.
In vergelijking met de traditionele MSDM-gebaseerde 3D-assays, kan deze analyse weer te geven beter de cel invasie eigenschappen. Sferoïden geteeld in een kelder membraan-bevattende laminin-rijke matrix, zoals MSDM, zou kunnen hebben meer proliferatie van kankercellen dan de werkelijke invasie, waardoor het ongeschikt voor invasie-analyses in verschillende kankercellen lijnen als gevolg van hun lage invasie capaciteit. Een andere vaak gebruikte matrijs, type I collageen, neigt om van de randen tijdens 3D cultuur te krimpen, die sferoïde localisatie en weergave van de putten beïnvloedt. Daarnaast zijn de verschillen tussen de intrinsieke invasieve eigenschappen van de meer (hulp-3) en minder (SCC-25) agressieve tong carcinoom cellen lijnen zijn aangetoond met behulp van menselijke tumor microenvironment nabootsen modellen (myoma schijven en de oplosbare vorm matrijs)10,13.
De assay is ook meer ethisch dan het gebruik van MSDM sinds HMDM wordt gewonnen uit het overgebleven materiaal van de menselijke leiomyoma tumor. Momenteel, HMDM is de enige beschikbare menselijke tumor-afgeleide ECM-product dat lijkt te zijn geschikt voor veel kanker-gerelateerde in vitro assays8,10. In de toekomst, dierlijke weefsel-afgeleide matrices kunnen worden vervangen door menselijke tumor-gebaseerde matrices om de noodzaak om dieren te offeren voor matrix productie te verminderen.
Vervanging van 2D-cel cultuur assays met 3D-methoden biedt meer accurate informatie over kankercellen gedrag. Momenteel zijn er verschillende 3D-modellen en commerciële matrices, maar helaas, geen zijn geschikt voor alle kankercellen lijnen. Onderzoekers moeten kiezen voor de meest geschikte matrix voor hun specifieke assay. Optimale matching van de assay en matrix kan worden uitdagend, maar het kan een aanzienlijke verhoging van de betrouwbaarheid van de resultaten.
The authors have nothing to disclose.
De auteurs bedanken de financiers van deze studie: de Sigrid Jusélius Foundation, de Cancer Society van Finland, en Helsinki University Central Hospital onderzoekfondsen. De auteurs erkennen de Biomedicum Imaging Unit aan de Universiteit van Helsinki voor technische hulp.
Amphotericin B solution | Merck | A2942 | |
Aprotinin from bovine lung | Merck | A6279 | Measure the protein concentration before use. |
Ascorbic acid | Applichem | A1052 | |
BioLite Cell Culture Treated Flasks | Thermo Scientific | 130190 | |
DMEM/F-12 | Gibco by Life Technologies | 31330-038 | |
DS-Fi2 Digital Camera | Nikon Instruments | ||
DS-U3 Digital Camera Controller | Nikon Instruments | ||
Eclipse TS100 Inverted Microscope | Nikon Instruments | ||
Fetal bovine serum (FBS) | Gibco by Life Technologies | 10270106 | Heat inactivate for 30 min at 56°C in waterbath before use. |
Fibrinogen, Plasminogen-Depleted, Human Plasma | Merck | 341578 | Solubility: 25 mg/ml in H₂O. Warm the H₂O and the fibrinogen to 37°C prior to dissolution. Do not disturb until the fibrinogen is completely solubilized. Stock solutions stored at -70°C should be thawed in a water bath maintained at 37°C. |
Fiji ImageJ 1.51 image processing program | Freeware, NIH | ||
Hydrocortisone | Merck | H0888 | |
Ilastik software for image classification and segmentation | Freeware | ||
IncuCyte Zoom Live-Cell Analysis System | Essen BioScience | ||
Myogel | Lab made | ||
Penicillin-Streptomycin | Gibco by Life Technologies | 15140-122 | |
Phosphate buffered saline (PBS) | Lab made | ||
Scepter 2.0 Cell Counter | Merck | PHCC20040 | |
Scepter Cell Counter Sensors, 60 µm | Merck | PHCC60050 | |
Thrombin from human plasma | Merck | T6884-100UN | |
Trypsin-EDTA (0.5%) 10X, no phenol red | Gibco by Life Technologies | 15400054 | |
Ultra-Low Attachment 96-Well Plate | Corning | 7007 | |
UT-SCC-42A and UT-SCC-42-B cell lines | The cell lines were established at the Department of Otorhinolaryngology-Head and Neck Surgery, Turku University Hospital (Turku, Finland). |