Beskrivs här är en metod för att analysera bakteriell genuttryck i djurvävnader på cellnivå. Denna metod ger en resurs för att studera den fenotypiska mångfald som inträffar inom en bakteriepopulation svar på vävnad miljön under en infektion.
Bakteriella virulensgener är ofta reglerade på transkriptionell nivå av flera faktorer som svarar på olika Miljösignaler. Vissa faktorer verkar direkt på virulensgener; andra styr patogenes genom att justera uttrycket av nedströms tillsynsmyndigheter eller ansamling av signaler som påverkar aktiviteten av regulator. Medan förordning har studerats ingående under in vitro- tillväxt, är relativt lite känt om hur genuttrycket justeras under infektion. Sådan information är viktigt när en särskild gen produkt är en kandidat för terapeutisk intervention. Transkriptionell metoder som kvantitativa, real-time RT-PCR och RNA-Seq är kraftfulla sätt att undersöka genuttryck på global nivå men lider många tekniska utmaningar inklusive låg överflöd av bakteriell RNA jämfört värd RNA, och prov nedbrytning av RNaser. Utvärdera förordning med hjälp av fluorescerande reportrar är relativt lätt och kan vara multiplexade med fluorescerande proteiner med unika spektrala egenskaper. Metoden möjliggör encelliga, spatiotemporal analys av genuttryck i vävnader som uppvisar komplexa tredimensionella arkitektur och fysiokemiska övertoningar som påverkar bakteriella regulatoriska nätverk. Sådan information går förlorad när data är i genomsnitt under bulk befolkningen. Häri, beskriver vi en metod för att kvantifiera genuttryck i bakteriella patogener i situ. Metoden bygger på enkla vävnad behandling och direkt observation av fluorescens från reporter proteiner. Vi visar nyttan av detta system genom att undersöka uttrycket av Staphylococcus aureus thermonuclease (nuc), vars gen produkt krävs för immun skatteflykt och full virulens ex vivo och in vivo. Vi visar att nuc-gfp är starkt uttryckt i nedsatt bölder och avslöja heterogena genuttryck på grund delvis skenbara rumsliga förordning nuc arrangören aktivitet i bölder engagerade med immunsvaret. Metoden kan tillämpas på någon bakterie med en manipulatable genetiska system och någon infektion modell, att ge värdefull information för prekliniska studier och läkemedelsutveckling.
Bakterier reagera på förändrade fysiologiska förhållanden och förändringar i den näringsmässiga delstaten sin omgivning genom att differentially uttrycka gener som krävs för anpassning och överlevnad. Exempelvis kolonisera opportunistiska patogener kropp ytor vid relativt låga tätheter, och är ofta ofarliga. Men när bakterien har trängt in fysiska och kemiska hinder, måste det brottas med värd immunceller Counter försvar och begränsade näringsämnen tillgänglighet1. Som ett exempel, Staphylococcus aureus colonizes ungefär en tredjedel av befolkningen asymptomatiskt men är också orsaken till förödande hud och mjukdelsinfektioner, osteomyelit, endokardit och bakteriemi2. Framgången för S. aureus som en patogen är ofta tillskrivas dess metaboliska flexibilitet samt en arsenal av surface-associerade och utsöndrade virulensfaktorer som gör att bakterien att fly i blodomloppet och replikera i perifera vävnader 3,4,5. Eftersom värd dödsfall på grund av staphylococcal sjukdom är en evolutionär återvändsgränd och gränser överföring till nya värdar6, måste åtagandet att virulens factor produktion kontrolleras noga.
Ett komplext regulatoriska nätverk av proteiner och icke-kodande RNAs svarar på en mängd stimuli från omgivningen, inklusive cell densiteten, tillväxtfas, neutrofila-associerade faktorer och näringsämnen tillgänglighet, att säkerställa att virulensgener uttrycks på den exakt tid och plats inom värd vävnader7,8,9,10,11,12,13. Exempelvis reglerar SaeR/S tvåkomponentssystem (TCS) uttryck för flera virulensfaktorer via den sensorn kinase (SAE: er) och svar regulator (SaeR)14. Kapacitetsminskningen är autophosphorylated på ett bevarat histidin rester i svar till värd signaler (t.ex., humana neutrofila peptider [HNPs], calprotectin)8,15,16. Phosphorylen gruppen överförs sedan till en aspartat rester på SaeR, aktivera den som en DNA-bindande protein (SaeR ~ P)17. SaeR/S TCS reglerar över 20 gener som bidrar till patogenes inklusive Fibronektin bindande proteiner (FnBPs), leukocidins och koagulas14,18,19,20. Mål kan klassificeras till hög affinitet och låg affinitet gen mål, vilket sannolikt induceras som nivån på SaeR ~ P stiger när de utsätts för sina ledtrådar21. SaeR/S verksamhet styrs av andra regulatorer av genuttryck som Agr quorum sensing systemet, repressor gifter proteinkälla (röta), och den alternativa sigma faktor B (SigB)22,23,24.
NUC är en Sae-beroende virulens gen i Staphylococcus aureus och kodar thermonuclease (Nuc), som är nödvändig för att fly från neutrophilic extracellular trappar (nät) och för spridning under de Kursen infektion25,26. Uttrycket av nuc är också starkt indirekt förträngas av CodY i närvaro av grenade aminosyror och GTP27, och direkt förträngas av proteinet staphylococcal tillbehöret regulator SarA28,29 , vars verksamhet påverkas av syre (redox staten) och pH30. Med tanke på att sae och nuc mutanter är försvagade i musmodeller av infektion, finns det intresse att utveckla kemiska interventioner som hämmar deras motsvarande aktiviteter26,31. Trots detta finns det ingen information angående deras reglering under infektion.
Fluorescerande reportrar har använts för att övervaka och kvantifiera genuttryck på enstaka cellnivå. Häri, presenterar vi en metod för att kvantifiera S. aureus genuttryck under infektion som, när det paras ihop med in vitro-transkriptom analys och kraftfulla avbildningstekniker som magnetisk resonanstomografi (MRT) och magnetisk resonans spektroskopi (MRS), kan avslöja hur bakteriell fysiologi är reglerade i vivo och de relativa förekomsten av näringsämnen i vissa nischer. Metoden kan tillämpas på alla bakteriella patogener med ett fogligt genetiska system.
Översikt av genomet integrativ vektorn.
Den genomet integrativ vektor pRB4 innehåller 500 baspar varje från uppströms och nedströms regioner av det S. aureus USA300 SAUSA300_0087 pseudogene att underlätta homolog rekombination. pRB4 härstammar från temperaturkänsliga pMAD vector ryggraden som innehåller erytromycin resistance kassett (ermC) och termostabila beta-galaktosidas gen bgaB blå/vit screening av rekombinanter32. Den bakåtkompilerade reporter konstruktionen innehåller kloramfenikol motstånd markör (katt) för urval efter genomet integration och plasmid eliminering, liksom mina och Bruno platser till säkring regionen föreskrivande av intresse för superfolder grön fluorescerande protein (sGFP) (figur 1). Det är känt att valet av Ribosomen bindningsstället (RBS) påverkar aktiviteten av reportern, och kräver ofta empiriska optimering33. Således tillhandahålls en RBS inte. Här webbplatsen infödda ribosom bindning används för att ge för ett mer naturligt mönster av genuttryck, men andra platser får användas.
Bakteriella infektionssjukdomar är ett ökande hälsoproblem över hela världen på grund av förvärvet av antibiotikaresistens bestämningsfaktorer46. Eftersom anpassning till värdmiljöer är viktigt för tillväxt och överlevnad under infektion, strategier inriktning gen uttryck program som ökar patogen fitness kan visa sig användbar terapeutiskt. Ett sådant program är uppsättningen av gener som kontrolleras av den SaeR/S tvåkomponentssystem (TCS), visat tidigare att spela en viktig …
The authors have nothing to disclose.
Vi tackar Alexander Horswill för gåvan av PsarAP1– tdTomato fusion och Karen Creswell för hjälp med flödescytometri Flödesanalys. Vi tackar också Alyssa King för råd om statistisk analys. Detta arbete finansierades delvis av en NIH undersökande/utvecklings Research Award (grant AI123708) och start fakultetsmedel till SRB. Finansiärerna hade ingen roll i studiedesign, datainsamling och tolkning eller beslutet att lämna arbetet för publikation.
5% sheep blood | Hardy Diagnostics (Santa Maria, CA) | A10 | |
5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside (X-Gal) | ThermoScientific | R0402 | |
Ampicillin | Fisher Scientific | BP1760-25 | |
C57Bl/6 Mice | Charles River | NA | |
Chloramphenicol | Sigma-Aldrich | C-0378 | |
confocal laser scanning microscope | Zeiss | NA | |
cryostat microtome | Thermo Scientific | NA | |
Culture, Cap | VWR International | 2005-02512 | |
D+2:25NA Oligo | Integrated DNA Technologies (Coralville, Iowa) | NA | |
DNA Ligase | New England Biolabs | M0202S | |
Erythromycin | Sigma-Aldrich | E5389 | |
Flow Analyzer | Becton Dickinson | NA | |
glass beads | Sigma | Z273627 | |
Miniprep, plasmid | Promega | A1220 | |
orbital shaking water bath | New Brunswick Innova | NA | |
PCR purification | QIagen | 28106 | |
Phosphate Buffer Saline (PBS) | Cellgrow | 46-013-CM | |
Plate reader | Tecan | NA | |
Precellys 24 homogenizer | Bertin Laboratories | NA | |
pUC57-Kan | GenScript (Piscataway, NJ) | NA | |
Q5 Taq DNA Polymerase | New England Biolabs (Ipswich, MA) | M0491S | |
Restriction Enzymes | New England Biolabs (Ipswich, MA) | R0150S (PvuI), R3136S (BamHI), R0144S (BglII), R3131S (NheI), R0101S (EcoRI), R0141S (SmaI). | |
Reverse transcriptase | New England BioLabs | E6300L | |
Sanger Sequencing | Genewiz (Germantown, MD) | NA | |
Sub Xero clear tissue freezing medium | Mercedes Medical | MER5000 | |
Superfrost Plus microscope slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
superloop | GE Lifesciences | 18111382 | |
Syringe, Filter | VWR International | 28145-481 | |
Syto 40 | Thermo Fisher Scientific | S11351 | Membrane permeant nucleic acid stain |
Tetracycline | Sigma-Aldrich | T7660 | |
Tryptic Soy Broth | VWR | 90000-376 | |
UV-visible spectrophotometer | Beckman Coulter-DU350 | NA | |
Vectashield Antifade Mounting medium with DAPI | Vector Laboratories | H-1500 |