Summary

Nettstedet-rettet mutagenese for In Vitro og Vivo eksperimenter eksemplifisert med RNA samhandling i Escherichia Coli

Published: February 05, 2019
doi:

Summary

Nettstedet-rettet mutagenese er en teknikk som brukes til å introdusere spesifikke mutasjoner i deoksyribonukleinsyre (DNA). Denne protokollen beskriver hvordan området-rettet mutagenese med en 2-trinns og 3-trinns polymerasekjedereaksjons (PCR) basert tilnærming som gjelder for alle DNA del av interesse.

Abstract

Nettstedet-rettet mutagenese er en teknikk som brukes til å introdusere spesifikke mutasjoner i DNA å undersøke samspillet mellom små ikke-koding ribonukleinsyre (sRNA) molekyler og målet messenger RNAs (mRNAs). I tillegg brukes nettstedet-rettet mutagenese til å tilordne bestemte protein bindende områder til RNA. En 2-trinns og 3-trinns PCR basert innføring av mutasjoner er beskrevet. Tilnærmingen er relevant for alle protein-RNA og RNA-RNA samhandling studier. Kort sagt, avhengig teknikken designe primere med den ønskede mutation(s), og gjennom 2 eller 3 trinnene for PCR syntetisere et PCR produkt med mutasjon. PCR produktet brukes deretter for kloning. Her beskriver vi hvordan du utfører området-rettet mutagenese med både 2 – og 3-trinn tilnærming til å introdusere mutasjoner i sRNA, McaS og mRNA, csgD, å undersøke RNA-RNA og RNA-protein interaksjoner. Vi bruker denne teknikken for å undersøke RNA interaksjoner; teknikken er imidlertid gjelder for alle mutagenese studier (f.eks DNA-protein interaksjoner, aminosyre substitusjon/sletting/tillegg). Det er mulig å innføre noen form for mutasjon bortsett fra ikke-naturlige baser men teknikken gjelder bare hvis et PCR-produkt kan brukes for nedstrøms program (f.eks kloning og mal for ytterligere PCR).

Introduction

DNA er ofte referert til som blåkopi av en levende celle siden alle strukturer av cellen er kodet i sekvensen av sin DNA. Nøyaktig replikering og DNA reparasjon mekanismer sikrer at bare svært lave priser av mutasjoner oppstår, som er avgjørende for å opprettholde riktige funksjonene av kodet gener. Endringer av DNA sekvensen kan påvirke påfølgende funksjoner på ulike nivåer starter med DNA (anerkjennelse av transkripsjonsfaktorer og begrensning enzymer), deretter RNA (base-par komplementaritet og sekundær endringer) og/eller protein (aminosyre Acid erstatninger, sletting, tilleggene eller ramme-Skift). Mens mange mutasjoner ikke påvirker gen funksjon betydelig, kan noen mutasjoner i DNA har enorme implikasjoner. Dermed er området-rettet mutagenese et verdifullt verktøy for å studere betydningen av spesifikke DNA nettsteder på alle nivåer.

Denne protokollen beskriver en målrettet mutagenese tilnærming brukes til å introdusere spesifikke mutasjoner. Protokollen er avhengig av to forskjellige PCR strategier: en 2-trinns eller en 3-trinns PCR. 2-trinns PCR gjelder hvis ønsket mutasjon ligger 5′ slutten eller 3 slutten av DNA av interesse (< 200 base parene (bp) fra slutten) og 3-trinns PCR gjelder i alle tilfeller.

I 2-step PCR tilnærming, 3 primere er utformet som en rekke primere er utviklet for å forsterke DNA av interesse (primere 1 og 3, fremover og bakover, henholdsvis) og en enkelt primer er utformet for å innlemme mutasjon. Mutasjon introdusere grunning (primer 2) bør ha en omvendt retning hvis mutasjon er 5′ slutten og en forover retning hvis mutasjon ligger 3 slutten. I det første trinnet PCR forsterker primer 1 + 2 eller 2 + 3 et lite fragment nær 5′ slutten eller 3 slutt, henholdsvis. PCR sluttproduktet brukes deretter som en primer i trinn to med primer 1 eller 3, dermed resulterer i et PCR-produkt med en mutasjon i DNA av interesse (figur 1A).

Den 3-trinns PCR, 4 primere er utformet, der ett sett med primere er utviklet for å forsterke DNA av interesse (primere 1 og 4 fremover og bakover, henholdsvis) og en rekke primere er utformet for å omfatte spesifikke mutasjoner med overlappende komplementaritet (primere 2 og 3, snu og videresende, henholdsvis). I trinn en og to, primere 1 + 2 og 3 + 4 forsterke 5′ og 3 slutten. I trinn tre, de resulterende PCR produktene fra trinn en og to er stjernen og forsterket med primere 1 + 4. Dermed er PCR sluttproduktet DNA av interesse med ønsket mutasjon (figur 1B).

Mens mutert DNA kan brukes for alle nedstrøms søknad, beskriver denne protokollen hvordan å kombinere DNA i en kloning vektor. Bruk av kloning vektorer har flere fordeler som brukervennlighet kloning og bestemte eksperimentelle programmer avhengig av funksjoner av vektoren. Denne funksjonen brukes ofte for RNA samhandling studier. En annen teknikk for RNA samhandling studier er strukturelle undersøkelser av RNA i kompleks med en annen RNA1,2 eller protein3,4. Imidlertid utføres strukturelle undersøkelser bare i vitro mens området-rettet mutagenese og påfølgende kloning tillater samhandling studier i vivo.

Nettstedet-rettet mutagenese har vært mye brukt for RNA samhandling studier som presenteres her. Men den viktigste metoden om 2 eller 3-trinn PCR gjelder for ethvert stykke DNA, og dermed ikke bare begrenset til RNA-interaksjon studier.

Du eksemplifiserer teknikken og bruksområdene, brukes karakteristikk av regioner viktig for post-transcriptional regulering av mRNA, csgD, av Escherichia coli (E. coli). E. coli , csgD er rettet av små ikke-koding RNA, McaS, i samarbeid med en protein, Hfq, å undertrykke protein uttrykk CsgD2,4,5. Teknikken brukes til å introdusere mutasjoner base-sammenkobling området mellom csgD og McaS og Hfq binding området av csgD. Innhentet DNA er deretter klonet i en vektor egnet for senere eksperimenter. Nedstrøms programmer av teknikken omfatter både i vivo og in vitro eksperimenter. For illustrasjon, eksempel 1 er preget i vivo bruker en western blot analysen og eksempel 2 er preget i vitro bruker en electrophoretic mobilitet Skift analyse (EMSA). I begge tilfeller er det illustrert hvordan området-rettet mutagenese kan brukes i kombinasjon med andre teknikker for å gjøre biologiske konklusjoner om en genet av interesse.

Protocol

1. vektorvalget Velg en vektor utføre nedstrøms eksperimenter med. Enhver vektor gjelder for denne 2 – og 3-trinns PCR metoden. Basert på valg av vektor, velge riktig begrensning enzymer for kloning. 2. primer design for området regissert mutagenese Velge mellom enten 2-step eller 3-trinns PCR strategien (2-step er bare for mutasjoner < 200 bp fra hver ende av DNA av interesse). For 2-trinns PCR, gå til trinn 2.2 og 3-trinns PCR gå til trinn 2.3. …

Representative Results

Undersøke RNA interaksjoner om post-transcriptional regulering av csgD, en dobbel vektor oppsett ble valgt: en å uttrykke csgD mRNA og en annen for å uttrykke den liten ikke-koding RNA, McaS. csgD ble klonet i pBAD33, som er en arabinose induserbart medium-kopi plasmider chloramphenicol motstand og McaS ble klonet i mini R1 pNDM220, som er en isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) induserbart lav kopi plasmider med Ampicillin motstand. Wild type cs…

Discussion

Nettstedet-rettet mutagenese har en rekke forskjellige programmer, og her, representant resultater fra en in vivo og et i vitro eksperiment ble inkludert som eksempler på hvordan å gjøre biologiske konklusjoner ved hjelp av teknikken. Nettstedet-rettet mutagenese har lenge vært golden standarden for RNA samhandling studier. Styrken på teknikken ligger i kombinasjonen av introdusere relevante mutasjoner nedstrøms analyser og eksperimenter (f.eks western blot eller EMSA) for å trekke konklusjoner om bestemte DNA net…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gjerne takke University of Southern Denmark åpen tilgang politikk tilskudd.

Materials

Anti-GroEL antibody produced in rabbit Merck G6532 Primary antibody
Azure c200 Azure NA Gel imaging workstation
Custom DNA oligo Merck VC00021
DeNovix DS-11 DeNovix NA Spectrophotometer for nucleic acid measurements
DNA Gel Loading Dye (6X) Thermo Scientific R0611
Ethidium bromide solution 1 % Carl Roth 2218.1
GeneJET Gel Extraction Kit Thermo Scientific K0691
GeneRuler DNA Ladder Mix Fermentas SM0333
Gerard GeBAflex-tube Midi Gerard Biotech TO12 Dialysis tubes for electro elution
MEGAscript T7 Transcription Kit Invitrogen AM1334
Mini-Sub Cell GT Cell Bio-Rad 1704406 Horizontal electrophoresis system
Monoclonal ANTI-FLAG M2 antibody produced in mouse Merck F3165 Primary antibody
Mouse Immunoglobulins Dako Cytomation P0447 HRP conjucated secondary antibody
NucleoSpin miRNA Macherey Nagel 740971 RNA purification
NuPAGE 4-12% Bis-Tris Protein Gels Thermo Scientific NP0323BOX Bis-Tris gels for protein separation
Phusion High-Fidelity PCR Master Mix with HF Buffer New England Biolabs M0531S DNA polymerase
PowerPac HC High-Current Power Supply Bio-Rad 1645052
Rabbit Immunoglobulins Dako Cytomation P0448 HRP conjucated secondary antibody
SeaKem LE Agarose Lonza 50004
SigmaPlot Systat Software Inc NA Graph and data analysis software tool
T100 Thermal Cycler Bio-Rad 1861096 PCR machine
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202 Ligase
T4 Polynucleotide Kinase New England Biolabs M0201S
TAE Buffer (Tris-acetate-EDTA) (50X) Thermo Scientific B49

Referencias

  1. Bouvier, M., et al. Small RNA binding to 5′ mRNA coding region inhibits translational initiation. Molecular Cell. 32 (6), 827-837 (2008).
  2. Jorgensen, M. G., et al. Small regulatory RNAs control the multi-cellular adhesive lifestyle of Escherichia coli. Molecular Microbioly. 84 (1), 36-50 (2012).
  3. Antal, M., et al. A small bacterial RNA regulates a putative ABC transporter. The Journal of Biological Chemistry. 280 (9), 7901-7908 (2005).
  4. Andreassen, P. R., et al. sRNA-dependent control of curli biosynthesis in Escherichia coli: McaS directs endonucleolytic cleavage of csgD mRNA. Nucleic Acids Research. , (2018).
  5. Thomason, M. K., et al. A small RNA that regulates motility and biofilm formation in response to changes in nutrient availability in Escherichia coli. Molecular Microbioly. 84 (1), 36-50 (2012).
  6. Lorenz, T. C. Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. Journal of Visualized Experiments. (63), e3998 (2012).
  7. . JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. Molecular Cloning. Journal of Visualized Experiments. , (2018).
  8. . JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. The Western Blot. Journal of Visualized Experiments. , (2018).
  9. . JoVE Science Education Database. Biochemistry. Electrophoretic Mobility Shift Assay (EMSA). Journal of Visualized Experiments. , (2018).
  10. Kunkel, T. A. Rapid and efficient site-specific mutagenesis without phenotypic selection. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 82 (2), 488-492 (1985).
  11. Laible, M., Boonrod, K. Homemade site directed mutagenesis of whole plasmids. Journal of Visualized Experiments. (27), (2009).
  12. Wells, J. A., Vasser, M., Powers, D. B. Cassette mutagenesis: an efficient method for generation of multiple mutations at defined sites. Gene. 34 (2-3), 315-323 (1985).
  13. Cong, L., et al. Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Science. 339 (6121), 819-823 (2013).
  14. Mali, P., et al. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science. 339 (6121), 823-826 (2013).

Play Video

Citar este artículo
Andreassen, P. R., Pettersen, J. S., Jørgensen, M. Site-Directed Mutagenesis for In Vitro and In Vivo Experiments Exemplified with RNA Interactions in Escherichia Coli. J. Vis. Exp. (144), e58996, doi:10.3791/58996 (2019).

View Video