Summary

Raccolta rapida di volatili di fragranze floreali utilizzando una tecnica di raccolta volatile Headspace per il campionamento della postura termica GC-MS

Published: December 10, 2019
doi:

Summary

Qui, presentiamo un protocollo per raccogliere la fragranza floreale volatile dai fiori in fiore, utilizzando una procedura di campionamento non distruttivo.

Abstract

Sono state campionate le fragranze di molte famiglie di fiori e sono stati analizzati i volatili. Conoscere i composti che compongono le fragranze può essere un passo importante per la conservazione dei fiori che sono minacciati o in via di estinzione. Poiché la fragranza floreale è fondamentale per attirare gli impollinatori, questo metodo potrebbe essere utilizzato per comprendere meglio o addirittura migliorare l’impollinazione. Vi presentiamo un protocollo utilizzando un filtro ad aria a carbone portatile e un vuoto per raccogliere le sostanze volatili delle fragranze floreali, che vengono poi analizzate da un GC-MS. Utilizzando questo metodo, i volatili delle fragranze possono essere campionati utilizzando un metodo non distruttivo con una macchina che viene facilmente trasportata. Questa metodologia utilizza una procedura di campionamento rapido, riducendo il tempo di campionamento da 2-3 ore a circa 10 minuti. Utilizzando GC-MS, i composti della fragranza possono essere identificati singolarmente, sulla base di standard autentici. Vengono presentati i passaggi utilizzati per la raccolta dei dati relativi alle fragranze e al controllo, dall’impostazione del materiale alla raccolta dell’output dei dati.

Introduction

I fiori producono tipicamente una fragranza utilizzata per attirare gli impollinatori. Queste fragranze sono costituite da molti composti chimici che agiscono tutti insieme come una miscela floreale1,2,3. Senza queste fragranze, i fiori sarebbero meno propensi a trasmettere le loro informazioni genetiche utilizzando impollinatori. La fragranza floreale è stata documentata in molte famiglie di piante da fiore, con Orchidaceae che è una delle famiglie più comuni studiate4. Per comprendere il ruolo della fragranza floreale nell’impollinazione, è importante raccogliere e analizzare in modo non distruttivo i composti chimici emessi dai fiori in diversi momenti della giornata e durante i diversi giorni o settimane le fioriture dei fiori sono aperte, in quanto la fragranza può variare nel tempo5 .

Un protocollo precoce per questo tipo di campionamento è stato sviluppato da Heath e Manukian6. L’obiettivo dei loro metodi di campionamento era quello di ridurre lo stress sul campione (ad esempio, piante, insetti) studiato. I documenti precedenti documentavano che erano necessarie procedure distruttive per la pianta, come la rimozione dei fiori in fiore al fine di raccogliere la fragranza. Più recenti pubblicazioni di fragranze floreali di Cancino e Damon7,8 utilizzato metodi simili. Questo studio mise i fiori in camere di vetro e passò l’aria purificata su di loro; poi composti profumati dalla camera sono stati assorbiti su adsorbenti polimerici porose in pipette Pasteur chiare. Le fragranze sono state raccolte per almeno due ore durante questo studio. Sadler et al.9 ha effettuato studi sulle fragranze floreali su un’orchidea epifita nel sud della Florida, proprio come lo studio originale10. Anche in questo caso, questo studio ha richiesto che i fiori siano campionati per oltre due ore per raccogliere le sostanze volatili della fragranza, con profumo raccolto sull’adsorbente polimerico poroso. Il documento qui presenta un metodo non distruttivo che consente un campionamento molto più veloce, della durata di soli 10 minuti. Inoltre, invece di utilizzare una camera di vetro forno borse da forno, che consentono un movimento più flessibile della camera e ridurre le probabilità di danni ai fiori. Questi sacchetti sono disponibili in diverse dimensioni permettendo la possibilità di selezionare la dimensione del sacchetto che si adatta facilmente singoli campioni senza danneggiare il campione o il materiale circostante. L’adsorbente utilizzato in questo studio è stato Tenax Porous Polymer Adsorbent. Questo è diverso da Porapak, perché il campione può essere riscaldato sulla colonna GC-MS per l’analisi, eliminando l’uso di un solvente chimico.

I metodi in questo studio forniscono un modo per campionare rapidamente le sostanze volatili delle fragranze prodotte dai fiori e potrebbero essere utilizzati anche per campionare sostanze volatili da altri esemplari, come feromoni di insetti o volatili di funghi. Il tempo ridotto per il campionamento significa che c’è meno stress sul campione e la capacità di raccogliere molti campioni in un breve periodo di tempo. Ad esempio, in Sadler et al.9, il fiore era solo profumato di notte, quindi solo due o tre campioni potevano essere raccolti ogni notte. Con il metodo qui, i campioni potrebbero essere prelevati tutta la notte a intervalli di 15-20 minuti dallo stesso fiore. Inoltre, utilizzando sacchetti al posto delle camere di vetro, lo spazio della testa può essere sospeso più facilmente per il campionamento sul campo per la raccolta in situ su specie vegetali in via di estinzione o minacciate. Utilizzando il metodo qui presentato, siamo stati in grado di assaggiare i fiori a 1,5 a 2 metri da terra. Questi metodi sono incredibilmente utili per la raccolta di fragranze in laboratorio e sul campo e forniscono ai ricercatori una tecnica di campionamento che è veloce e non distruttiva per il campione.

Protocol

NOTA: I profumi o le lozioni profumate e i prodotti non devono essere indossati durante nessuna di queste procedure. 1. Selezione dei fiori NOTA: I fiori utilizzati possono essere naturalmente in crescita nell’ambiente o tenuti in condizioni ambientali artificiali. Temperatura, umidità e livello di luce durante la raccolta possono variare in base alle specie di fiori specifici utilizzate e al tipo di dati raccolti. Ad esempio, i dati sono stati raccolti durante il gi…

Representative Results

I dati rappresentativi del GC-MS sono mostrati come un cromatogramma nella figura 1. Oltre al cromatogramma, viene fornito anche un file di dati dei risultati (Supplementary File 1). Questo file di dati fornisce il tempo di conservazione per ogni picco (RT) e un’identificazione di quale composto è tale picco (Libreria/ID). I picchi tra le 10:00 e le 15:00 minuti sono volatili floreali, a causa del peso molecolare dei composti10. I numeri al di sopra …

Discussion

Anche se questa tecnica è incredibilmente preziosa per la sua velocità di campionamento e portabilità, una limitazione è usarla per le specie epifite, o per quelle che crescono sugli alberi e non da terra. Nello studio originale10, uno dei fiori campionati era epifita. Poiché la macchina è troppo pesante per essere appesa liberamente, per il campionamento deve essere fatta una base stabile ed elevata. Inoltre, la macchina può essere collegata a una presa elettrica o a una batteria alimentat…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

USDA-ARS Research Project numero 6036-22000-028-00D. L’uso di marchi commerciali, ditta o di società in questa pubblicazione è per le informazioni e la convenienza del lettore. Tale utilizzo non costituisce un’approvazione ufficiale o un’approvazione da parte del Dipartimento dell’Agricoltura degli Stati Uniti o del Servizio di Ricerca per l’Agricoltura di qualsiasi prodotto o servizio, ad esclusione di altri che possono essere adatti. Inoltre, il Dipartimento di Biologia dell’Università della Florida-Lewis e la borsa di studio Varina Vaughn in Orchid Biology (2017), e una borsa di ricerca di laurea dell’Università della Florida (2014-2018) ha fornito finanziamenti. Ringraziamo anche Cindy Bennington della Stetson University per la pianta di orchidea utilizzata durante le riprese di questo video.

Materials

Bulkhead Union Cole-Palmer UX-06390-10
FEP tubing Cole-Palmer UX-06407-60
Gas Chromatography Hewlett Packard 6890
Glass Wool, Silanized Sigma-Aldrich 20411
Inlet liner Agilent 5062-3587
Mass Spectrometer Hewlett Packard 5973
Reynolds oven bag Reynolds Consumer Products Turkey size
Tenax Porous Polymer Adsorbent Sigma-Aldrich 11982

Referencias

  1. Knudsen, J. T., Tollsten, L., Bergstrom, L. G. Floral scents- A checklist of volatile compounds isolated by head-space techniques. Phytochemistry. 33, 253-280 (1993).
  2. Dudareva, N. A., Pichersky, E. . Biology of floral scent. , (2006).
  3. Altenburger, R., Matile, P. Rhythms of fragrance emission in flowers. Planta. 174, 242-247 (1988).
  4. Dodson, C. H., Dressler, R. L., Hills, H. G., Adams, R. M., Williams, N. H. Biologically active compounds in orchid fragrances. Science. 164, 1243-1249 (1969).
  5. Theis, N., Raguso, R. A. The effect of pollination on floral fragrance in thistles. Journal of Chemical Ecology. 31 (11), 2581-2600 (2005).
  6. Heath, R. R., Manukian, A. Development and evaluation of systems to collect volatile semiochemicals from insects and plants using a charcoal-infused medium for air purification. Journal of Chemical Ecology. 18, 1209-1226 (1992).
  7. Cancino, A., Damon, A. Comparison of floral fragrance components of species of Encyclia and Prosthechea (Orchidaceae) from Soconusco, southeast Mexico. Lankesteriana. 6, 83-139 (2006).
  8. Cancino, A., Damon, A. Fragrance analysis of euglossine bee pollinated orchids from Soconusco, south-east Mexico. Plant Species Biology. 22, 129-134 (2007).
  9. Sadler, J. J., Smith, J. M., Zettler, L. W., Alborn, H. T., Richardson, L. W. Fragrance composition of Dendrophylax lindenii (Orchidaceae) using a novel technique applied in situ. European Journal of Environmental Science. 1, 137-141 (2011).
  10. Ray, H. A., Stuhl, C. J., Gillett-Kaufman, J. L. Floral fragrance analysis of Prosthechea cochleata (Orchidaceae), an endangered native, epiphytic orchid, in Florida. Plant Signaling and Behavior. , (2018).
  11. . National Institute of Standards and Technology. U.S. Department of Commerce Available from: https://www.nist.gov/ (2019)

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Ray, H. A., Stuhl, C. J., Gillett-Kaufman, J. L. Rapid Collection of Floral Fragrance Volatiles using a Headspace Volatile Collection Technique for GC-MS Thermal Desorption Sampling. J. Vis. Exp. (154), e58928, doi:10.3791/58928 (2019).

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