Цель настоящего Протокола заключается в идентификации населения лимфатический эндотелиальных клеток в печени с помощью описанных маркеров. Мы используем коллагеназы IV и DNase и нежный мясорубки ткани, в сочетании с проточной цитометрии, чтобы определить собственный населения лимфатический эндотелиальных клеток.
В печени лимфатические сосуды находятся в пределах портала триады, и их описывается функция удаление интерстициальной жидкости из печени в лимфатические узлы где можно обследованных сотовой мусора и антигены. Мы очень заинтересованы в понимании, как лимфатический сосудистую могут быть вовлечены в воспаление и функция иммунных клеток в печени. Однако, очень мало был опубликован создание пищеварение протоколов для изоляция лимфатическую эндотелиальных клеток (LECs) из печени или определенных маркеров, которые могут быть использованы для оценки функции печени МГС на основе за клеток. Таким образом мы оптимизированный метод для пищеварения и окрашивание печени с целью оценить LEC населения в печени. Мы убеждены в том, что метод конспектированный здесь будет полезным для выявления и изоляции LECs из печени и укрепит наше понимание как LECs реагировать печень микроокружения.
Не хорошо понимают роль лимфатические сосуды и МГС в печени. В то время как лимфатические сосуды находятся в пределах портала Триада печени1 и расширять во время болезни2, очень мало понимается относительно функции и фенотип МГС в печени. С открытием маркеров, которые находятся главным образом на МГС3важность этих клеток в различных тканей ниши в гомеостаза и болезни будет заполнить значительный пробел в нашем понимании. МГС играют важную роль в поддержании периферийных терпимости в лимфатических узлов и метастатические опухоли, взаимодействуя непосредственно с T клетки4,5,6,,78, 9 , 10 , 11 , 12 , 13. МГС в лимфатических узлов может способствовать защитный иммунитет через их взаимодействие с мигрирующие дендритные клетки14,,1516. Таким образом существует несколько ролей для LECs, которые могут быть специфическими для тканей и взаимодействия, в которых они присутствуют. Однако очень мало понимается как LECs взаимодействуют с иммунных клеток в тканях или как LECs функционируют в различных органов и систем; Таким образом оценки МГС на основе за клеток в печени или других органов может привести к достижения в LECs, как программы ткани конкретных иммунитета. Хотя большая часть литературы, которая сосредотачивается на МГС в печени использует микроскопии для визуализации LECs, используя один или два маркеры и морфология17, очень мало было сделано для конкретно оценить МГС на основе по ячейкам с помощью проточной цитометрии, хотя одно исследование оценить различия между синусоидального эндотелиальных клеток печени (LSECs) и МГС18. Возможность анализировать LEC населения в печени подачей cytometry позволяет для углубленного изучения LEC фенотип во время нормальной гомеостаза или болезни.
Чтобы оценить LECs подачей cytometry, необходимы несколько поверхностных маркеров. Как правило LECs визуализируются выражение связанных с Просперо гомеобокс 1 (Prox-1), лимфатический сосуд эндотелиальной гиалуроновая кислота рецепторов 1 (LYVE1) или Сосудистый эндотелиальный фактор роста рецептор 3 (VEGFR3) с помощью микроскопии. Однако в печени, выражение этих маркеров не ограничивается МГС. Prox-1 широко выражается гепатоцитов во время регенерации печени развития и травмы19, и LYVE1 и VEGFR3 являются выраженные эндотелиальных клеток печени синусоидального18. В лимфоузел, LECs идентифицируются с помощью проточной цитометрии как кластеры дифференциации (CD) CD45 – CD31 + и podoplanin + (PDPN)16. Однако этот подход является слишком минимальной, чтобы изолировать МГС в печени, так как CD45 – CD31 + клетки будет захватить эндотелиальных клеток, а преобладающее население сосудистой эндотелиальных клеток в печени LSECs. Таким образом другие маркеры необходимо различать редких LEC населения с обильным LSEC населения. CD16/32 (выраженные Зрелые LSECs18) и CD146 (общий сосудистый эндотелиальных клеток маркер, преимущественно, выраженные в печени синусоиды20 синусоидального эндотелиальных клеток печени с практически не выражение лимфатической эндотелиальные клетки21) были кандидат маркеров.
Таким образом мы оптимизированный метод для изоляции и визуализации МГС в печени, используя выше маркеров, CD45, CD31, CD146, CD16/32 и PDPN для проточной цитометрии. Мы описывают использование коллагеназы IV, DNase 1 и механического разделения для переваривания ткани печени в одну ячейку подвеска. Мы также описывают использование градиента плотности iodixanol для изоляции не Паренхиматозный клеток (NPC) и ликвидации сотовой мусора. Наконец мы с использованием нескольких маркеров, определить оптимальный поток цитометрии стробирования стратегию для выявления LECs из печени с PDPN как основной маркер.
Общее значение МГС в иммунного гомеостаза и регулирование недавно пришло света25. Большая часть опубликованных лимфатический литературы фокусируется на кожу и лимфатические узлы; Однако лимфатические находятся во всем теле26 и, таким образом, необходимо наше ?…
The authors have nothing to disclose.
Авторы хотели бы поблагодарить GI и печени Innate иммунных программы за финансовую поддержку этого проекта. B.A.J.T. также финансируется R01 AI121209.
Clicks/EHAA media | Irvine Scientific | 9195 | |
Collagenase IV | Worthington Biochemical corporation | LS004188 | |
DNase I | Worthington Biochemical corporation | LS002145 | Deoxyribonuclease 1 |
OptiPrep | Sigma Aldrich | D1556 | Density Gradient Medium |
V450 anti mouse CD146(clone ME-9F1 | BD biosciences | 562232 | |
FITC anti mouse CD146 (clone ME-9F1 | Biolegend | 134706 | Fluorescein isothiocyanate (FITC) |
Pacific Blue anti mouse CD31(clone 390) | Biolegend | 102422 | |
PerCp/Cy5.5 anti mouse CD31( clone 390) | Biolegend | 102420 | Peridinin-chlorophyll proteins-Cyanine 5.5 (PerCP-Cy5.5) |
APC anti mouse PDPN (clone 8.1.1) | Biolegend | 127410 | Allophycocyanin (APC), podoplanin (PDPN) |
APC/Cy7 anti mouse CD45 (clone 30-F11) | Biolegend | 103116 | |
Brilliant Violet 510 anti mouse CD45 (clone 30-F11 | Biolegend | 103138 | |
FITC anti mouse CD16/32 (clone 93) | Biolegend | 101306 | Fluorescein isothiocyanate (FITC) |
PerCp/Cy5.5 anti mouse CD16/32( clone 93) | Biolegend | 101324 | Peridinin-chlorophyll proteins-Cyanine 5.5 (PerCP-Cy5.5) |
ghost red 780 viability dye | TONBO biosceinces | 3-0865-T100 | |
APC syrian hamster IgG (clone SHG-1) | Biolegened | 402102 | |
PerCp/Cy5.5 rat IgG2a (clone RTK2758) | Biolegend | 400531 | |
FITC rat IgG2 (clone eBR2a) | ebioscience | 1-4321-80 | |
Anti mouse LYVE1 (clone 223322) | R&D systems | FAB2125A | |
anti-mouse Cytokeratin(clone EPR17078) | abcam | ab181598 | |
anti-mouse F4/80 (clone Cl:A3-1) | Bio-rad | MCA497 | |
BSA (fraction V) | Fischer | BP1600-100 | Bovine Serum Albumin (BSA) |
Goat serum | Jackson Immunoresearch | 017-000-121 | |
Donkey Serum | Jackson Immunoresearch | 017-000-121 | |
EDTA | VWR | E177 | Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) -for RBC lysis buffer |
Ammonium Chloride | Fischer | A687-500 | for RBC Lysis buffer |
Potassium Bicarbonate | Fischer | P184-500 | for RBC Lysis buffer |
Scalpel | Feather | 2975#21 | |
100um cell strainer | Fischer | 22363549 | |
2.4G2 | in house/ATCC | ATCC HB-197 | FC block to inhibit non-specific binding to Fc gamma + cells -made from hybridoma |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Corning | 21-040-CV | |
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) | Gibco | 14185-052 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Atlanta biologicals | S11550 | |
96 well plate | Corning | 3788 | |
6 well plate | Corning | 3506 | |
50 ml conical | Truline | TR2004 | |
15 ml conical | Falcon | 352196 | |
1 ml Pipete tip | USA scientific | 1111-2721 | |
200 µl pipete tip | USA scientific | 1110-1700 | |
10 µl pipete tip | USA scientific | 1111-3700 | |
seriological 10ml pipete | greiner bio-one | 607107 | |
seriological 5ml pipete | greiner bio-one | 606107 | |
Cell incubator | Fischer | Heracell 160i | |
BD FacsCanto II flow cytometer | BD biosciences | ||
Clinical Centrifuge | Beckman coulter | model X-14R |