Este protocolo descreve a fabricação de dispositivos microfluídicos de MY133-V2000 eliminar artefatos que surgem frequentemente em microcanais devido os índices de refracção incompatível entre estruturas microchannel e uma solução aquosa. Este protocolo utiliza um suporte de acrílico para comprimir o dispositivo encapsulado, melhorando a adesão tanto quimicamente e mecanicamente.
O uso de dispositivos microfluídicos tem emergido como um instrumento decisivo para aplicações biomédicas. Quando combinado com técnicas de microscopia modernas, estes dispositivos podem ser implementados como parte de uma plataforma robusta e capaz de fazer medições complementares simultâneas. O principal desafio criado pela combinação destas duas técnicas é a incompatibilidade no índice de refração entre os materiais tradicionalmente usados para fazer dispositivos microfluídicos e as soluções aquosas, normalmente usadas em biomedicina. Essa incompatibilidade pode criar artefatos ópticos perto das bordas do canal ou dispositivo. Uma solução é reduzir o índice de refração do material usado para fabricar o dispositivo usando um polímero fluorado, tais como MY133-V2000 cujo índice de refração é semelhante da água (n = 1,33). Aqui, a construção de um dispositivo microfluidic feito de MY133-V2000 usando técnicas de litografia macia é demonstrada, usando plasma de O2 em conjunto com um suporte de acrílico para aumentar a adesão entre o dispositivo MY133-V2000 fabricado e o substrato de polidimetilsiloxano (PDMS). O dispositivo é então testado incubando-lo preenchido com meio de cultura celular para 24 h demonstrar a capacidade do dispositivo para manter as condições de cultura celular no decurso de uma típica experiência de imagem. Finalmente, microscopia de fase quantitativa (QPM) é usada para medir a distribuição de massa no interior das células aderentes ao vivo no microchannel. Desta forma, a maior precisão, habilitado por fabricar o dispositivo a partir de um polímero de baixo índice de refração como MY133-V2000 substituem materiais tradicionais litografia macia como PDMS, é demonstrado. Globalmente, esta abordagem para fabricar dispositivos microfluídicos pode ser facilmente integrada os fluxos de trabalho existentes litografia macia para reduzir artefatos ópticos e aumentar a precisão de medição.
O desenvolvimento da tecnologia microfluidic permitiu uma ampla gama de novas técnicas biomédicas que aproveitam a única física da escala microscópica fluxos1,2. Isso inclui as técnicas de diagnósticos construídas em plataformas microfluidic que quantificam biomarcadores clinicamente relevantes, incluindo a célula rigidez3, marcadores de superfície4e crescimento5. Manipulando células únicas, dispositivos microfluídicos também podem ser usados para medir a heterogeneidade de biomarcador, por exemplo como indicador de malignidade6. A habilidade de combinar microfluidic aplicações com microscopia aumentou ainda mais a utilidade destas plataformas, permitindo que dispositivos que medem vários biomarcadores simultaneamente7.
QPM é uma técnica de microscopia que mede a mudança de fase, como a luz atravessa e interage com a matéria dentro de amostras transparentes. A massa de células individuais pode ser calculada a partir de medições de QPM, usando a conhecida relação entre o índice de refração e a densidade de biomassa8,9. Trabalhos anteriores tem mostrado que QPM é capaz de medir parâmetros clinicamente relevantes, tais como célula crescimento10,11 e célula propriedades mecânicas através de força12de desordem. Quando combinado com microfluídica, QPM potencialmente pode ser usado para medir o comportamento da célula em um ambiente altamente controlado em vitro. Um dos principais desafios combinando QPM com microfluídica é o alto índice de refração da maioria dos polímeros utilizados para construir microfluidic canais através de litografia macia13.
Um importante desafio que se coloca a combinação de microfluídica com várias técnicas de microscopia é a incompatibilidade entre o índice de refração do material dispositivo em relação ao índice de refração da água14,15. Um método de resolver isso é através da utilização de um polímero de baixo índice de refração como CYTOP16 ou MY133-V200013. O último é um fluorados ultravioleta (UV)-polímero de acrilato curável que tem um índice de refração semelhante da água (n = 1,33) e é compatível com as técnicas de litografia macia, permitindo uma integração suave em muitos microfluidic estabelecida fluxos de trabalho fabricação de dispositivo. Isso torna o MY133-V2000 não somente apropriado para fabricação de dispositivos microfluídicos, mas também lhe permite ser facilmente combinado com QPM e outras abordagens de microscopia, para medir o comportamento da célula na colônia e em uma escala de célula única. MY133-V2000 elimina artefatos devido à fase de desembrulhar, produzindo pouco, se houver, mudança de fase como a luz passa através da interface água-MY133.
Apesar de eliminar a incompatibilidade no índice de refração, um grande desafio associado com os dispositivos fabricados a partir de polímeros fluorados, tais como MY133-V2000, é a baixa aderência a outros materiais como o vidro ou PDMS. O presente trabalho demonstra a fabricação de um dispositivo de MY133-V2000 microfluidic usando litografia macia. Usando o plasma de2 O para tratar a superfície de ambos o canal e o PDMS substrato combinado com um suporte de acrílico personalizado-fabricadas garante que o dispositivo adota o substrato, criando um canal fechado. Este dispositivo é adequado para cultura de células e QPM, para medir a massa de células no canal, que tem aplicações importantes para medir o crescimento de células vivas e o transporte intracelular de biomassa celular, ambos os quais têm relevância clínica no diagnóstico descoberta de medicamentos e drogas.
MY133-V2000 pode ser usado como uma alternativa aos materiais de fabricação tradicional litografia macia como PDMS. Trabalhos anteriores mostraram que materiais com um alto índice de refração, como PDMS, introduzir artefatos significativos perto das paredes do canal devido as descasamento índices de refração entre o material de fabricação e a solução aquosa dentro do canal 13. MY133-V2000 permite combinar o índice de refração do dispositivo microfluidic às soluções aquosas, comum…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pela Universidade de Utah, escritório do Vice-Presidente de pesquisa, bem como pelos fundos em conjunto com conceder P30 CA042014 atribuído ao Instituto de câncer Huntsman e o programa de CRR no Instituto de câncer Huntsman.
MY133-V2000 | MY Polymers | MY133-V2000 | |
Sylgard 184 | Ellsworth Adhesives | 184 SIL ELAST KIT 0.5KG | |
Fisher Premium microscope slides | Fisher Scientific | 12-544-4 | |
.118"(3.0mm) x 12" x 12" Acrylic Sheet | United States Plastic Corp | 44290 | |
.060"(1.5mm) x 12" x 12" Acrylic Sheet | United States Plastic Corp | 44200 | |
SCIGRIP 3 Very Fast Set Acrylic Cement | United States Plastic Corp | 45735 | |
Standard Aluminum Foil (.6 mm thick) | VWR | 89107-726 | |
Kim Wipes | Fisher Scientific | 06-666 | |
Insta-Cure+ Super Glue | Bob Smith Industries | BSI-109 | |
1/8" PVC tubing | McMaster Carr | 5231K55 | |
McCormick Food Coloring | Target | 13353207 | |
X-Acto #1 Precision Knife | X-Acto | X3201 | |
X-Acto #18 Heavyweight wood chiseling blade | X-Acto | X218 | |
VWR Razor Blades | VWR | 55411-055 | |
Surface Treated Cell Culture Dishes | Fisher Scientific | FBO12922 | |
Fibronectin Human Plasma | Sigma-Aldritch | F0895-1MG | |
Trypsin-EDTA 10x | Fisher Scientific | 15-400-054 | |
Corning Dulbecco's Phosphate Buffered Saline | Fisher Scientific | MT21030CM | |
Gibco Penicillin-Streptomycin | Fisher Scientific | 15-140-148 | |
HyClone Nonessential Amino Acids 100x | Fisher Scientific | SH3023801 | |
Fetal Bovine Serum | Omega Scientific | FB-12 | |
Corning DMEM with L-glutamine and glucose | Fisher Scientific | MT10013CV | |
Trichloro(1H,1H,2H,2H-perfluorooctyl)silane | Sigma-Aldritch | 448931 | Reacts violently with water |
Ethanol, 200 proof Decon Labs | Fisher Scientific | 04-355-223 | |
Acetone | Fisher Scientific | A18P-4 | |
Bel-Art 42025 Plastic Dessicator | Cole-Parmer | EW-06514-30 | |
Epilog Fusion Laser Cutter, 120 W | Epilog Laser | Epilog Fusion M2 32 Laser | |
Isotemp Stirring Hotplate | Fisher Scientific | SP88850200 | |
Ateco 14111 1.5 inch stainless steel cutter | Ateco | 14111 | |
Pyrex Glass Cell Culture Dish | Fisher Scientific | 08-747B | |
Radio Frequency Plasma Cleaner | Harrick Plasma | PDC-32G | Used with Oxygen gas |
Black Hole Laboratories Digivac | Black Hole Laboratories | Model 215 | |
Intelli-Ray Ultraviolet Oven | Uvitron | UVO338 | |
Compact Spin Coater | MTI Corporation | VTC-100A | |
Fisher Brand Isotemp Oven | Fisher Scientific | 15-103-0510 | Forced Air Convection |
Gilson Positive Displacement Pipette P1000 | Fisher Scientific | FD10006G | |
HeraCell VIOS 160i | Fisher Scientific | 13 998 212PM |