Efferocytosis, фагоцитарной удаление apoptotic клеток, необходимых для поддержания гомеостаза и облегчается рецепторов и сигнальных путей, которые позволяют для распознавания, поглощения и интернализация apoptotic клеток. Здесь мы представляем протокол микроскопии флуоресцирования для количественной оценки efferocytosis и активность efferocytic сигнальные пути.
Изучение правил efferocytosis требует методы, которые способны точно подсчитать поглощение apoptotic клеток и датчик сигнализации и клеточных процессов, которые управляют efferocytosis. Эта количественная оценка может быть трудным для выполнения как apoptotic клетки часто efferocytosed по частям, таким образом создавая необходимость методы, которые можно точно описать между efferocytosed часть целевого объекта apoptotic против остаточного unengulfed сотовых фрагменты. Подход, изложенный в настоящем документе использует двойной маркировки подходы к точно количественно оценить динамику развития потенциала efferocytosis и efferocytic efferocytes, такие как макрофаги. Помечены цитозоль клетки apoptotic клетки отслеживания краситель, чтобы включить мониторинг всех apoptotic клеток, полученных материалов, в то время как поверхности biotinylation apoptotic клетки позволяет для дифференциации между внутренним и не учитываются apoptotic клеток дробей. Объем efferocytic efferocytes определяется принимая флуоресцентного изображения клеток живых или фиксированной и количественной количество связанного против внутренней цели, как дифференцированные по окрашиванию стрептавидина. Этот подход обеспечивает несколько преимуществ над методы, такие как проточной цитометрии, а именно точное разграничение не efferocytosed против efferocytosed apoptotic клеток фракций, возможность измерения динамики efferocytic, микроскопия живой клетки и способность выполнять исследования клеточной сигнализации в клетках, выражая дневно меченых трансгенов. Комбинированные, методы, изложенные в настоящем Протоколе служат основой для гибкого экспериментальный подход, который может использоваться для точного количественного определения efferocytic активности и допросить сотовой сигнальных путей, активные во время efferocytosis.
Apoptosis или запрограммированная смерть клетки, является высоко регулируется физиологический процесс, который происходит в большинстве многоклеточных организмов и имеет решающее значение для их развития и гомеостаза1. Помимо участия в нормальной клетки оборота и эмбрионального развития, апоптоз позволяет ликвидации зараженных или поврежденных клеток тканей и может срабатывать в ответ на инфекции, воспаления, рак, а также медицинских вмешательств Например, лучевой терапии или стероидов1. Apoptotic клетки разоблачить «едят-me» сигналы на их поверхности клетки, которые признаны рецепторов на широкий спектр профессиональных и непрофессиональных фагоцитов, именуемые далее «efferocytes». Участие этих рецепторов вызывает поглощения и деградации apoptotic клетки, efferocyte через процесс, известный как efferocytosis2,3. Фосфатидилсерин лучше всего характеризуется едят-мне сигнал вождения efferocytosis. Обычно ограничивается внутренним листовка плазматической мембраны, с apoptosis, активация скрамблаза липидов, которая нарушает этой асимметрии мембраны, тем самым подвергая Фосфатидилсерин на поверхности клеток4. Фосфатидилсерин находится на поверхности внеклеточного-apoptotic клеток, таких как зрелые макрофаги и активации тромбоцитов. Однако эти клетки являются не efferocytosed из-за присутствия «не ешь меня» сигналов, таких как CD47, на их клеток поверхности5,6,7. Подвергаются Фосфатидилсерин признается массив efferocytic рецепторов, выраженную efferocytes. Связывание этих рецепторов к Фосфатидилсерин, либо непосредственно, либо через помощи опсонины, активирует сигнальных путей, способствующих сплошным apoptotic клеток в вакуоль мембраны прыгните называют efferosome8, 9 , 10 , 11 , 12. efferosome предохранители последовательно с endosomes и лизосомы, которые доставляют молекулярный механизм, необходимый для подкислять efferosome и ухудшить apoptotic клетки грузов13,14. После того, как деградация, apoptotic клеток производные материалы продаются в утилизации endosome — процесс, который ограничивает иммунных реакций к apoptotic клеток антигены, и которая может позволить для восстановления питательных веществ из клетки apoptotic13, 15. Неудача в efferocytosis результаты в нарушение Распродажа apoptotic клеток; в конечном итоге эти необезвреженные клетки претерпевают вторичные некрозы. Отмершие клетки релиз про воспалительных цитозольной содержимое, патогенов и autoantigens в внеклеточной окружение, таким образом, движущей широкий спектр инфекционный, воспалительных и аутоиммунных заболеваний16,17. Вместе, апоптоз и efferocytosis облегчить удаление мертвых и умирающих клеток и для поддержания гомеостаза ткани.
Изучение молекулярных механизмов лежащих в основе efferocytosis требует методы, которые обеспечивают четкую количественную оценку apoptotic клеток поглощения. Эта количественная оценка осложняется тем, что в отличие от других поглощения таких механизмов, как эндоцитоза и фагоцитоз18,19, efferocytosis не может привести к сплошным нетронутыми целевой ячейки, в результате частичного поглощения apoptotic клетки efferocyte20. Протокол, описываемые описывает в пробирке efferocytosis assay который обеспечивает точное разграничение интернализированных против-внутреннюю часть индивидуальных apoptotic клеток и могут быть объединены с целым рядом-клеток и микроскопия живой клетки подходы. Традиционные фагоцитоза анализов добавить антитела специфические фагоцитарной цели в конце эксперимента для того, чтобы называть не учитываются цели, где наш метод отличается маркировки apoptotic цель с ковалентно связан биотина21 , 22. в то время как apoptotic клеток специфические антитела могут использоваться в этом assay, biotinylation подход позволяет для любого целевого белка подшипник быть помечены и избегает потенциальных проблем с перекрестной реактивности вторичные антитела, если выполняется иммуноокрашивания . В частности мы наметим подготовки apoptotic клеток Jurkat, которые были двойной окрашенных клеток отслеживания красителя и биотин. Ячейка, отслеживания краситель позволяет для apoptotic клеток, полученных материалов быть считано во время efferocytosis, тогда как поверхности biotinylation позволяет для дискриминации внутреннюю от-внутреннюю часть efferocytosed apoptotic клеток. Мы также описывают культуру и подготовка J774.2 и THP-1 клеточных линий для использования в качестве мышиных и человеческого efferocytes, моноцитарных м2 макрофагов в качестве примера главной ячейки efferocytosis, и Jurkat клетки для использования как efferocytic целей. Эти методы легко может применяться для других клеточных линий или первичной клетки, клетки-мишени любой форме клеточной смерти (например апоптоза, некроз и necroptosis) и имитирует микронного размера, имитирующие apoptotic клетки через липидного покрытия или покрытие с лигандами, специфичные для efferocytic рецептор интерес.
Метод, изложенные в настоящем Протоколе имеет ряд преимуществ над методами цитометрии на основе потока, широко используется в области23,24. Непосредственно визуализации фагоцитарной apoptotic клеток взаимодействия, в сочетании с четкой маркировки как общая и не учитываются apoptotic клеток материала, можно сделать количественные показатели efferocytosis. Кроме того использование рН нечувствительным флуорофоров ограничивает отягощающих факторов, таких, как подавление FITC и GFP флуоресценции в лизосомальных рН, который смешивает некоторые альтернативные методы25. И наконец, хотя не подробно, эти методы могут быть использованы с помощью efferocytes, выражая дневно меченых трансгенов, или с иммуноокрашивания после фиксации, для количественной оценки сигнальные молекулы деятельность и мониторинг клеточные процессы во время efferocytosis.
Методы, изложенные в настоящем Протоколе позволяют изображений и количественной оценки процесса динамического efferocytic, используя подходы в-клеток и клеток. Эти подходы предлагают несколько преимуществ над обычно занятых потока методы на основе цитометрии23,<sup class="xref"…
The authors have nothing to disclose.
Это исследование финансировалось Канадским институтов медицинских исследований (КНИИЗ) действующих грантов СС-123419, естественных наук и инженерных исследований Совет из Канады обнаружения Грант 418194 и Онтарио Министерство исследований и инноваций ранних исследований премии для BH. DGW способствовали некоторые из изображений, представленных, оптимизации протоколов и написания манускрипта; Он финансировался насоса грунтование грант от Ливерпульского университета. CY финансируется Ванье Магистратура стипендии и КНИИЗ MD/PhD студенчества. Финансирующие учреждения имели никакой роли в дизайн исследования, сбор данных и анализ, решение опубликовать или подготовка рукописи.
RPMI 1640 Media | Wisent | 3500-000-EL | |
DMEM Media | Wisent | 319-005-CL | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Wisent | 080-150 | |
PBS | Wisent | 311-010-CL | |
18 mm circular glass coverslips #1.5 thickness | Electron Microscopy Sciences | 72290-08 | Size and shape of coverslip is not critical, but 18 mm fit into the wells of a standard 12-well plate which simplifies cell culture |
Staurosporine | Cayman Chemical | 81590 | Dissolve in DMSO at 1 mM (1,000x stock solution) |
Annexin V-Alexa 488 | ThermoFisher | R37174 | |
EZ-Link NHS-Biotin | ThermoFisher | 20217 | Store in a dessicator. Do not prepare a stock solution. |
DMSO | Sigma-Aldrich | D2650 | |
CellTrace FarRed | ThermoFisher | C34572 | |
CellTrace Orange | ThermoFisher | C34851 | |
Hoescht 33342 | ThermoFisher | 62249 | |
FITC-Streptavadin | ThermoFisher | SA1001 | |
Lympholyte-poly cell sepration medium | Cedarlane Labs | CL5071 | |
Recombinant Human M-CSF | Peprotech | 200-04 | |
Recombinant Human IL-4 | Peprotech | 300-25 | |
J774.2 Macrophage Cell Line | Sigma-Aldrich | 85011428-1VL | |
THP-1 Human Monocyte Cell Line | ATCC | TIB-202 | |
Jurkat T Cell Line | ATCC | TIB-152 |